Tải bản đầy đủ (.pdf) (23 trang)

BÁO cáo môn THÍ NGHIỆM hóa SINH tên bài ĐỊNH LƯỢNG NITƠ TỔNG BẰNG PHƯƠNG PHÁP KJENDAHL

Bạn đang xem bản rút gọn của tài liệu. Xem và tải ngay bản đầy đủ của tài liệu tại đây (832.4 KB, 23 trang )

TRƯỜNG ĐẠI HỌC TÔN ĐỨC THẮNG
KHOA KHOA HỌC ỨNG DỤNG – Bm CƠNG NGHỆ SINH HỌC

BÁO CÁO MƠN THÍ NGHIỆM HĨA SINH

Người hướng dẫn: Ph.D Trần Thị Tuyết Nhung
Lớp: 20060302
Nhóm: S4-N2
1. Hoàng Trần Thảo Như

MSSV: 62001024

2. Trần Thị Kim Huyền

MSSV: 62000991

3. Nguyễn Thị Tâm Thanh

MSSV: 62001047

4.Huỳnh Võ Trường Giang

MSSV: 62000973

Tp. Hồ Chí Minh, tháng 7 năm 2022



Bài số 3
Tên bài: ĐỊNH LƯỢNG NITƠ TỔNG BẰNG PHƯƠNG
PHÁP KJENDAHL


Ngày thí nghiệm: 29/06/2022
I.
Ngun tắc

Điểm

Qua 2 giai đoạn:


Giai đoạn vơ cơ hoá:

Nitơ tổng số là tất cả các dạng nitơ có trong mẫu. Khi đót nóng mẫu cần phân
tích với H2SO4 đậm đặc có mặt của chất xúc tác, nitơ tất cả các dạng đạm có
trong mẫu đều biến thành dạng vơ cơ (NH4)2SO4 tan trong dung dịch.


Giai đoạn cất đạm:

Sau khi vơ cơ hố. Ta đuổi NH3 ra khỏi dung dịch bằng NaOH. Lượng NH3 được
lôi cuốn bằng máy Parnas và được dẫn đến một erlen có chứa một lượng thừa
H2SO4 đã biết chính xác nồng độ.
Định lượng H2SO4 cịn lại bằng NaOH, qua đó tính được nitơ có trong mẫu.
H2SO4dư + NaOH = Na2SO4 + H2O
II.

(4)

Cách tiến hành:

II.2.1. Rửa sạch bình Parnas-Wagner

• Cho nước vào bình A khoảng nửa bình, thêm vài giọt methyl đỏ; thêm dung
dịch H2SO4 2N cho đến khi nước trong bình hóa đỏ, khóa van (1).
• Cho nước qua ống sinh hàn D, khóa van (2) và (3).
• Đun cho A sơi đều, cho vào C một ít nước cất, mở van (2) cho nước chảy nitơ
xuống B (lưu ý: không bao giờ cho nƣớc chảy xuống hết mà giữ lại một ít để hệ
thống ln ln kín). Hơi nước ở A sẽ từ từ qua E, để như vậy cho tới khi E được
khoảng 5 ml. Tắt bếp ở A, hơi nước trong máy sẽ nguội làm giảm áp suất ở A và
B do đó nƣớc ở B sẽ rút qua G. Khi nước rút hết thêm nước vào C, mở van (2)
nước sẽ bị rút hết qua G. Ta có thể làm như vậy vài ba lần. Nếu nước ở G đầy,
mở van (3) xả hết. Xong khóa van (1), (2), (3). Chú ý: khi để erlen E vào hoặc
lấy ra không được để hệ thống bị hở, đặc biệt là các vị trí nối 4,5,6.
II.2.2 Cất đạm


Cho vào ống Kjendahl 2mL nước mắm và lắp vào thiết bị vơ
cơ hố mẫu.

Bổ sung từ từ 15 mL dung dịch H2SO4 đậm đặc vào ống
Kjeldahl

Thêm 10mL HClO4 làm xúc tác

Đun khoảng 2h đến dung dịch bình trong suốt

Chuyển dung dịch mẫu vào bình định mức 100mL và định
mức vừa đủ 100mL

Lấy 20mL dung dịch sau pha loãng cho vào bình cầu

Lắp ráp bộ thiết bị và bổ sung 20mL H2SO4 vào erlen


Bổ sung vào bình cầu lượng NaOH đậm đặc dư (khoảng 710mL)

Đun và cất đạm đến khi NH3 giải phóng hồn tồn

Cho 5 giọt phenolphtalein vào bình

Định phân dung dịch H2SO4 dư bằng dd NaOH 0.1N

Tính tốn hàm lượng (%) nitơ có trong mẫu


II.3. Tính tốn:
II.3.1. Tính hệ số hiệu chuẩn F của dung dịch NaOH
• Lấy 10 ml H2SO4 0,1N chuẩn cho vào erlen, định phân bằng NaOH 0,1N.
• Tính nồng độ thực tế của dung dịch NaOH đem định phân.
• F là tỉ số giữa nồng độ thực tế và nồng độ lý thuyết của NaOH.
II.3.2. Tính kết quả
Hàm lượng nitơ trong mẫu được tính theo cơng thức:
X=

(𝑎−𝑏.𝐹).0,0014.100.1000
10.𝑉

Trong đó: X: hàm lượng nitơ tính bằng g/l
a: số ml H2SO4 đem hấp thụ NH3
b: số ml NaOH 0,1N tiêu tốn khi chuẩn độ H2SO4 thừa
V: số ml mẫu đem vơ cơ hóa 0,0014: lượng gam nitơ ứng với 1 ml H2SO4 0,1N
F: hệ số hiệu chỉnh nồng độ dd NaOH 0,1 N.
Tính hàm lượng protein thơ thơng qua hàm lượng nitơ tổng

• Nitơ trong vật liệu sinh học chủ yếu là nitơ protein ngồi ra cịn có một lượng
nhỏ nitơ trong các thành phần khác gọi là nitơ phi protein.
Nitơ tổng = Nitơ protein + Nitơ phi protein
• Hàm lượng protein trong các vật liệu sinh học được tính bằng cách nhân hàm
lượng nitơ protein với một hệ số chuyển đổi xác định do hàm lượng nitơ có tỉ lệ
ổn định từ 15 đến 18% protein, đại đa số protein là 16%.


• Trong các nguyên vật liệu sinh học do hàm lượng nitơ phi protein nhỏ và việc
tách riêng rất phức tạp nên theo quy ước người ta tính hàm lượng protein theo
nitơ tổng và gọi là protein thô hay protein tổng. Cơng thứ tính hàm lượng phần
trăm protein thơ có trong đại đa số các nguyên liệu là:
Protein (%) = Nitơ (%) x 6,25
Riêng ngũ cốc và đậu có hệ số chuyển đổi là 5,7
Sữa có hệ số chuyển đổi là 6,38
III.

Kết quả

III.1. Kết quả thí nghiệm:
Khi chuẩn độ ta thấy dung dịch chuyển sang màu hồng nhạt với thể tích
chuẩn độ là 9.7mL

Hình III.1: Kết quả sau khi chuẩn độ


III.2. Kết quả tính tốn.
III.2.1. Tính hệ số chuẩn F của dung dịch NaOH:
1


2

3

VNaOH(mL)

10,2

10,3

10,3

CN

0,098

0,097

0,097

F

0,98

0,97

0,97

Ta có thể tích chuẩn độ: V=10,3 mL


CN(NaOH) =
Ftrung bình =

CN
n

VH2 SO4 ×n
VNaOH

= 0.097

= 0.97

III.2.2. Tính hàm lượng Nito có trong mẫu.

X=

𝑋=

(𝑎−𝑏.𝐹).0,0014.100.1000
10.𝑉

(20 − 18,53 .0,97).0,0014.100.1000
= 28,36𝑔/𝑚𝑙
10.1

Trong đó:
X: hàm lượng nitơ tính bằng g/l
a: số ml H2SO4 đem hấp thụ NH3
b: số ml NaOH 0,1N tiêu tốn khi chuẩn độ H2SO4 thừa

V: số ml mẫu đem vô cơ hóa
0,0014: lượng gam nitơ ứng với 1 ml H2SO4 0,1N
F: hệ số hiệu chỉnh nông độ dd NaOH 0,1 N.
Hàm lượng protein thô là: Protein (%) = Nitơ (%) x 6,25 = 28,36 x 6.25 = 177,25
%
IV. Biện luận:


IV.1. Giải thích hiện tượng, các cơng đoạn chính các thơng số thí
nghiệm:
-Việc bổ sung từ từ 20mL dung dịch H2SO4 đậm đặc vào ống Kjendahl để vơ cơ
hố mẫu để tránh hiện tượng háo nước nhanh làm bắn nước tung toé. Ta dùng
H2SO4 đậm đặc vì H2SO4 đậm đặc là một chất oxi hoad mạnh không bay hơi ở
nhiệt độ phòng mà chỉ bay hơi ở nhiệt độ 450oC-500oC nên hạn chế việc nhiễm
độc và tránh thất thốt. Ngồi ra H2SO4 là một nguyên liệu dễ kiếm và giá thành
không quá mắc.
- Ta bổ sung HClO4 để làm tăng nhiệt độ sơi của hỗn hợp giúp q trình xảy ra
nhanh hơn.
- Khi ta nhìn thấy bình trong suốt chứng tỏ sản phẩm đã vơ cơ hố hồn tồn tạo
ra muối (NH4)2SO4. Vì đay là q trình phân tích và cũng như tiết kiệm hoá chất
nên ta chỉ pha dung dịch mẫu với nước và lấy một lượng nhỏ để phân tích. Sau
đó ta thêm NaOH đậm đặc và đun nóng để đuổi NH3 trong muối (NH4)2SO4 ra
ngồi.
- Ta định phân dung dịch bằng NaOH 0.1N. Trước đó dung dịch có bổ sung vài
giọt phenolphtalein để biết điểm dừng định phân. Khi dung dịch vừa chuyền sang
màu hồng nhạt bền vững thì q trình này hồn tất.
IV.2. Nhận xét:
- Kết quả thí nghiệm thu được nhỏ hơn số liệu mà sản phẩm cung cấp.
- Đánh giá kết quả: chấp nhận được nếu có do kết quả bị ảnh hưởng bởi nhiều
yếu tố khách quan.

-Nguyên nhân ảnh hướng đến kết quả thí nghiệm:
• Do phương pháp đo: phương pháp kjendahl có mức độ sai số nhất định.


• Do dụng cụ đo: mỗi dụng cụ đo có một mức độ sai số khác nhau, nếu sai
số của thiết bị lớn thì kết quả bị ảnh hướng nhiều.
• Do cách tiến hành đo: các thao tác tiến hành do người thực hiện nên quá
trình đong vẫn chưa đạt đến độ chính xác cao, các thao tác sẽ bị hạn chế
nhất định.
-Các phương pháp giảm thiểu sai số:
• Sử dụng các phương pháp khác có độ chính xác cao hơn.
• Sử dụng các dụng cụ đong đo chính xác hươn nếu có kinh phí có thể đầu
tư các loại máy tự động giúp con người giảm thao tác trực tiếp vào thí
nghiệm.
• Nâng cao tay nghề của người thực hiện bằng việc luyện tập nhiều lần.
-Mở rộng vấn đề: thực tế phương pháp kjendahl đo lượng nitơ tổng khá chính xác
và được áp dụng khác phổ biến trong phịng thí nghiệm. Một sooss phương pháp
khác cũng được áp dụng nhiều trong việc xác định nitơ tổng là phương pháp
Dumas, phương pháp Biuret, phương pháp Lowly.


Bài số 8

Điểm

Tên bài: ĐỊNH LƯỢNG VITAMIN C VÀ KHẢO SÁT
CÁC ENZYME HƠ HẤP
Ngày thí nghiệm: 29/06/2022

I. ĐỊNH LƯỢNG VITAMIN C:

I.1. Nguyên tắc:
- Acid ascorbic (vitamin C) là một hợp chất chưa no có chứa nhóm endiol. Acid
ascorbic bị phá hủy rất nhanh dưới tác dụng của các chất oxy hóa và bền trong
mơi
trường acid.
- Phương pháp dựa trên ngun tắc acid ascorbic có khả năng oxy hóa thuận
nghịch nhờ trong phân tử của nó có nhóm endiol – C(OH) = (OH)C – . Ta xác
định acid ascorbic bằng phương pháp chuẩn độ KIO3/KI theo các phản ứng sau

-

Lượng iod tạo ra ở phương trình (1) sẽ oxy hóa acid ascorbic thành acid
dehydroascorbic, phương trình (2). Khi hết acid ascorbic, iod thừa sẽ làm
chỉ thị hồ tinh bột hóa xanh.
I.2. Cách tiến hành:

I.2.1. Chuẩn bị mẫu:
+ Nếu mẫu rắn: cân m (g) mẫu (sao cho trong 10ml dịch chiết dùng định phân
chứa từ 0,15 – 0,20 mg vitamin C, các nguyên liệu giàu vitamin C như chanh,
ớt, khoai tây... cân 3 – 5g, rau quả khác cân 10 – 50g; sản phẩm đóng hộp
cân 5 – 10g tùy loại). Cho mẫu vào cối, đổ HCl 1% ngập mẫu, khi lấy mẫu


tránh dùng dụng cũ bằng sắt hoặc đồng. Nghiền mẫu (khơng q 10 phút),
lọc chuyển vào bình định mức, định phân đến vạch bằng HCl 15.
+ Nếu mẫu lỏng, chuyển thẳng vào bình định mức, định phân đến vạch bằng
HCl 1%.
I.2.2. Tiến hành:
+ Hút 10ml dịch chứa vitamin C từ bình định mức vào erlen 100ml, thêm vào
vài giọt hồ tinh bột 1% rồi định phân bằng KIO3/KI 0,01N cho đến khi xuất

hiện màu xanh (định phân 3 lần, kết quả định phân không sai lệch quá
0,03ml)
+ Tiến hành song song các mẫu kiểm chứng, thay dịch chứa vitamin C bằng
dung dịch HCl 1%.
I.3. Kết quả:
I.3.1. Kết quả thí nghiệm:
Định phân lần 1, lần 2 và lần 3: Đều xuất hiện màu xanh với chỉ thị hồ tinh bột ở
0,3ml KIO3/KI.
Định phân mẫu kiểm chứng

Mẫu định phân

Mẫu kiểm chứng

Hình I.3.1. Kết quả mẫu sau khi định phân và mẫu kiểm chứng
I.3.2. Kết quả tính tốn:

a = 0,3 ml
b = 0,1 ml


VDM = 50 ml
V = 10 ml
(𝑎 − 𝑏) × 0,88 × 100 × 𝑉𝐷𝑀
10 × 𝑉( ℎ𝑎𝑦 𝑚)

𝑋=

=


(0,3−0,1)×0,88×100×50
10×10

= 8,8 mg/50 ml

II. CÁC ENZYME HÔ HẤP
II.1. Dehydrogenase:
`

II.1.1 Nguyên tắc:
Dehydrogenase là nhóm các enzyme oxi hóa khử xúc tác cho phản ứng tách

H trực tiếp từ cơ chất ở giai đoạn đầu của chuỗi hơ hấp. Có vai trị quan trọng
trong quá trình sinh tổng hợp

II.1.2. Cách tiến hành:
Bước 1: Cho vào ống nghiệm vài lát củ cải đã cắt mỏng cỡ 2x2x1mm (dài x rộng
x dày) đến 1/3 ống nghiệm.
Bước 2: Thêm dung dịch xanh Methylene 0,01% cho đến khi ngập củ cải 1 cm.
Bước 3: Đổ lên trên một lớp dầu lửa để cho kín khí. Để Dehydrogenase khơng
tác dụng với O2 trong khơng khí.
Bước 4: Đặt ống nghiệm vào nước ấm 40°C trong 30 phút.


Bước 5: Làm ống kiểm chứng không chứa củ cải.
Bước 6: Quán sát kết quả, nhận xét và giải thích.
II.1.3. Kết quả:
II.1.3.1 Kết quả thí nghiệm

Hình II.1.3.1 Kết quả thu được của thí nghiệm

Chú thích:
+ Ống thí nghiệm bên trái: sau 30 phút, khơng có thấy hiện tượng xảy ra
+ Ống thí nghiệm bên phải: sau 30 phút, thấy hiện tượng dung dịch Methylene bị
mất màu và chuyển từ màu xanh sang màu xanh trắng
II.1.4. Bàn luận:
+ Ống thí nghiệm bên phải: chứa củ cải dung dịch có nhạt màu hơn. Vì
Dehydrogenase oxi hóa khử màu xanh của Methylene và do quá trình sinh tổng
hợp của enzyme Dehydrogenase trong củ cải.
+ Ống thí nghiệm bên trái: khơng chứa củ cải thì khơng có hiện tượng xảy ra.


II.2. Catalase
II.2.1. Nguyên tắc
Catalase là loại enzyme Hemoprotein. Ở tế bào thực vật catalase chứa một nhóm
Hem, khi enzyme xúc tác Fe nhóm ngoại khơng thay đổi hóa trị.
II.2.2. Cách tiến hành
• Nghiền kỹ 10g khoai tây.
• Thêm 10ml nước cất nghiền đều → Lọc vào ống nghiệm
• Hút 0,5ml dịch lọc cho vào một ống nghiệm đã có chứa 2ml H2O2 1%, lắc
nhẹ.
II.2.3: Kết quả thí nghiệm:

Hình II.2.3.1: Hình khoai tây sau khi đã lọc

Hình II.2.3.2: Sau khi cho H2O2 1%
vào thì xuất hiện sủi bọt khí

II.4. Bàn luận:
- Có hiện tượng sủi bọt và sủi bọt khí càng nhiều khi lắc nhiều là do khí
oxi bay lên trong quá trình khoai tây phản ứng với H2O2 1%




Bài số 4:

Điểm

Tên bài: ĐỊNH TÍNH VÀ ĐỊNH LƯỢNG NITƠ ACID
AMIN
Ngày thí nghiệm: 29/06/2022
ĐỊNH TÍNH ACID AMIN BẰNG NINHYDRIN

I.

I.1. Ngun tắc:
Khi phản ứng với ninhydrin ở nhiệt độ cao các acid amin bị dezamin hóa, oxy
hóa nhóm COOH tạo thành NH3 và aldehyde tương ứng ninhydrin bị khử tạo
hydidren.

Sau đó diceto oxyhydidren, NH3 mới tạo thành tiếp tục phản ứng với phân tử
ninhydrin thứ hai tạo phức hợp có màu xanh tím.

I.2. Cách tiến hành:
Lấy 2 ống nghiệm rồi tiến hành như sau:


Ống nghiệm Protein trứng Ninhydrin

Gia nhiệt


1

1ml

1ml

Đun nhẹ (hấp cách thủy)

2

1ml

1ml

Không đun

I.3. Kết quả:
I.3.1. Kết quả thí nghiệm:

Hình I.3.1: Hai ống nghiệm ban đầu

Hình I.3.2: Kết quả ống nghiệm sau khi đun

I.4. Bàn luận:
Ta có thể thấy sau khi ống nghiệm đem đi đun nóng

một thời gian thì dung

dịch tạo phức có màu xanh tím và có kết tủa lắng xuống đáy ống nghiệm.
Có xuất hiện kết tủa là do protein trứng khi ở nhiệt độ cao sẽ có hiện tượng đông

tụ tạo thành tủa.
Do ninhydrin ở nhiệt độ cao các acid amin bị dezamin hóa. Oxy hóa nhóm COOH
tạo thành NH3 và aldehyde tương ứng ninhydrin bị khử tạo thành diceto
oxyhydidren. NH3 mới tạo thành tiếp tục phản ứng với phân tử ninhydrin thứ hai
tạo phức hợp có màu xanh tím.


ĐỊNH LƯỢNG NITƠ ACID AMIN THEO PHƯƠNG PHÁP

II.

SORENSEN
II.1. Nguyên tắc:
Dưới tác dụng của formaldehyde (formol) các nhóm amin bị methylene hóa tạo
thành các dẫn xuất methylene của các acid amin. (Còn gọi là phương pháp chuẩn
độ formol)
R─CH─COOH + HCHO →
NH2

R─CH─COOH
N=CH2

Các hợp chất tạo thành là những acid mạnh hơn các acid amin tự do, dễ dàng
định phân bằng kiềm qua đó gián tiếp tính được lượng nitơ amin của các acid
amin có trong nguyên liệu.
R─CH─COOH + NaOH →
N=CH2

R─CH─COONa + H2O
N=CH2


Khi dùng phương pháp này cần chú ý những điểm sau:
❖ Để cho phản ứng tạo dẫn xuất methylene tiến hành hồn tồn, cần có
dư một ít dung dịch formaldehyde và phản ứng trung hịa hồn tồn
các nhóm cacboxyl được thực hiện khi pH môi trường đạt tới 9,2 – 9,5.
❖ Arginin khơng phản ứng với formaldehyde cho nên khơng tính khi
chuẩn bằng kiềm.
❖ Tirozin cho kết quả cao hơn vì ngồi nhóm cacboxyl, nhóm phenol
cũng có tác dụng với kiềm. Một số acid amin cho kết quả ít hơn như
prolin.
❖ Nếu trong dung dịch có chứa nhiều NH3, nhất là trong các dịch thủy
phân protein thì phải loại bỏ NH3 trước trong chân không ở nhiệt độ
40°C.


❖ Các muối amon như NH4Cl, (NH4)2SO4 cũng tác dụng với
formaldehyde tạo thành hexamethylene tetramin và acid. Acid này sau
đó được trung hòa bởi kiềm:
2(NH4)2SO4 + 6CH2O
4NH4Cl + 6CH2O

→ (CH2)6N4 + 2H2SO4 + 6H2O

→ (CH2)6N4 + 4HCl + 6H2O

❖ Dung dịch nghiên cứu có màu đậm phải pha thật lỗng vì nếu màu
đậm thì rất khó nhận biết sự thay đổi màu khi chuẩn độ.
❖ Dùng phương pháp này thì kết quả chỉ thật đúng với trường hợp acid
monoamino monocacboxylic. Để kết quả đúng hơn với mọi trường
hợp (khi trong dung dịch ngồi các acid monoamino monocacboxylic

ra cịn có chứa các acid monoamino dicacboxylic và diamino
monocacboxylic) cần phải trung hòa dung dịch đến pH 7 trước khi
phân tích.
❖ Để xác định điểm bắt đầu (pH 7) và điểm kết thúc (pH 9,2), người ta
dùng phương pháp so màu. Tạo ra hai thang màu chuẩn ở pH 7 và pH
9,2 rồi đưa pH của mẫu về 7(so sánh màu với màu chuẩn pH 7) sau đó
định phân đến pH 9,2 (so sánh màu với màu với pH 9,2).
II.2. Cách tiến hành:
II.2.1. Chuẩn bị thang màu có pH 7 và pH 9,2:
Lấy 2 bình erlen có dung tích như nhau.
Cho vào bình thứ nhất: 20mL dung dịch có pH 7 và 5 giọt Bromthymol Blue
0.04%.


Cho vào bình thứ 2: 20mL dung dịch có pH 9,2; 5 giọt Bromthymol Blue 0.04%
và 3 giọt phenolphtalein 0.5%.

Bình thứ hai
pH 9.2

Bình thứ nhất
pH7

Hình II.2.1. Hai bình erlen sau khi pha mẫu
Khi đó dung dịch trong bình thứ nhất có màu xanh lục nhạt, dung dịch trong bình
2 có màu tím xanh.
II.2.2. Chuẩn bị dung dịch formol trung tính
Cho vào erlen một luợng formol cần dùng, cho vào 3 giọt phenolphtalein 0.5%.;
nhỏ từ từ dung dịch NaOH cho đến khi màu hồng nhạt xuất hiện. Đậy nắp erlen.
Lưu ý tránh formol xộc vào mũi, mắt.


Hình II.2.2. Dung dịch formol sau khi pha


II.3. Tiến hành địnnh phân mẫu:
Xác định lượng nitơ amin trong nước mắm. Nước mắm là một dung dịch thủy
phân protein có thể định lượng bằng phương pháp chuẩn độ formol.
Pha loãng 100 lần 1ml nước mắm bằng nước cất

Lấy vào erlen 20ml mẫu pha loãng
Thêm 5 giọt Bromthymol Blue

Nếu dung dịch có màu xanh dương: thêm từng giọt HCl hay H2SO4 0.05N
Nếu dung dịch có màu vàng: thêm từng giọt NaOH 0.05N

Dung dịch có màu ứng với màu bình 1 (pH 7)
Thêm 5 giọt phenolphtalein 0.5% + 5 mL formol trung tính

Hình II. 3.1. Kết quả theo pH 7


Chuẩn độ bằng NaOH cho đến khi dung dịch
có màu ứng với màu của bình 2 (pH 9,2).

Hình II. 3.2. Kết quả theo pH 9,2
• Mẫu kiểm chứng: Thay mẫu nước mắm pha lỗng bằng mẫu nước cất

Hình II. 3.3. Kết quả mẫu kiểm chứng pH 7

Hình II.3.4. Kết quả mẫu kiểm chứng pH 9,2


Hình

Hình

II.4. Kết quả:
𝑋=

(𝑎 − 𝑏) × 𝑇 × 0.0007 × 𝑉𝐷𝑀 × 1000
20 × 𝑉

Trong đó: x: lượng gam Nitơ acid amin có trong 1L nước mắm.
a: số mL NaOH 0.05N dùng để chuẩn dung dịch thí nghiệm.
b: số mL NaOH 0.05N dùng để chuẩn dung dịch kiểm chứng.
T: hệ số hiệu chỉnh nồng độ của dung dịch NaOH đem dùng so với nồng độ
chuẩn.


VDM: thể tích bình định mức.
V: số mL nước mắm cho vào bình định mức.
0,0007: số gam Nitơ ứng với 1mL NaOH 0.05N
II.4.1. Kết quả tính tốn
• Mẫu nước mắm:
a1 = 3.4mL

a2 = 3.4mL

a3 = 3.4mL

=> a = 3.4mL

• Mẫu kiểm chứng: b = 0.25
• Hệ số hệ số hiệu chỉnh nồng độ của dung dịch NaOH đem dùng so với
nồng độ chuẩn: T =

0.1
0.05

=2

Số gam Nitơ acid amin có trong 1 lít nước mắm:
𝑋=

=

(𝑎 − 𝑏) × 𝑇 × 0.0007 × 𝑉𝐷𝑀 × 1000
20 × 𝑉

(3.4 − 0.25) × 2 × 0.0007 × 100 × 1000
= 22,05𝑔
20 × 1

Kết luận: có 22,05g Nitơ acid amin có trong 1 lít nước mắm.



×