Bạn đang xem bản rút gọn của tài liệu. Xem và tải ngay bản đầy đủ của tài liệu tại đây (1.89 MB, 16 trang )
<span class="text_page_counter">Trang 1</span><div class="page_container" data-page="1">
<b>Hình: Tế bào virus Feline Panleukopenia (FPV)<sup>Hình: Hình ảnh mèo bị nhiễm virus FPV</sup></b>
<i><b>Hình: Quy trình nanoPCR. (a) DNA trộn với MPN; (b) chiếu đèn xanh lên MPN; (c) enzyme DNA polymerase được </b></i>
<i>thêm vào hỗn hợp; (d), (e), (f), (g) DNA theo cấp số nhân qua nhiều chu kỳ; (h), (i), (k), (l) nam châm được sử dụng tách MPN khỏi mẫu.; (m) tổng quan bên ngoài của máy nanoPCR</i>
</div><span class="text_page_counter">Trang 9</span><div class="page_container" data-page="9"><i><b>Hình: Kết quả khi kiểm tra bằng Kit test nhanh. (a) Dương tính với FPV; (b) Kết </b></i>
<i>quả nghi ngờ; (c) Âm tính với FPV.</i>
</div><span class="text_page_counter">Trang 10</span><div class="page_container" data-page="10"><i><b>Hình: Kết quả phản ứng nanoPCR. Giếng 2 giếng 4: Mẫu test dương tính với FPV bằng Kit test nhanh; Giếng 5 </b></i>
<i>-giếng 7: Mẫu nghi ngờ FPV bằng Kit test nhanh; Giếng 8 - -giếng 10: mẫu âm tính với FPV bằng Kit test nhanh; Giếng 11: Đối chứng dương (DNA từ vacxin); Giếng 12: Đối chứng âm (free water DNA).</i>
1. Ikeda, Y.; Shinozuka, J.; Miyazawa, T.; Kurosawa, K.; Izumiya, Y.; Nishimura, Y.; Nakamura, K.; Cai, J.; Fujita, K.; Doi, K.; et al. Apoptosis in feline
<i><b>panleukopenia virus-infected lymphocytes. J. Virol. 1998, 72, 6932–6936. [Google Scholar] [CrossRef] [</b></i><b>PubMed][Green Version]</b>
<i><b>2. Johnson, R.H. Feline panleucopaenia. I. Identification of a virus associated with the syndrome. Res. Vet. Sci. 1965, 6, 466–471. [</b></i><b>Google Scholar</b>] [
<i>3. Steinel, A.; Munson, L.; Vuuren, M.V.; Truyen, U. Genetic characterization of feline parvovirus sequences from various carnivores. J. Gen. </i>
<i><b>Virol. 2000, 81, 345–350. [</b></i><b>Google Scholar</b>] [<b>CrossRef</b>]
4. Garigliany, M.; Gilliaux, G.; Jolly, S.; Casanova, T.; Bayrou, C.; Gommeren, K.; Fett, T.; Mauroy, A.; Lévy, E.; Cassart, D.; et al. Feline panleukopenia
<i><b>virus in cerebral neurons of young and adult cats. BMC Vet. Res. 2016, 12, 28. [</b></i><b>Google Scholar</b>] [<b>CrossRef</b>]
<i><b>5. Reed, A.P.; Jones, E.V.; Miller, T.J. Nucleotide sequence and genome organization of canine parvovirus. J. Virol. 1988, 62, 266–276. [</b></i>
6. Christensen, J.; Tattersall, P. Parvovirus initiator protein NS1 and RPA coordinate replication fork progression in a reconstituted DNA replication
<i><b>system. J. Virol. 2002, 76, 6518–6531. [</b></i><b>Google Scholar] [CrossRef][Green Version]</b>
7. Kariatsumari, T.; Horiuchi, M.; Hama, E.; Yaguchi, K.; Ishigurio, N.; Goto, H.; Shinagawa, M. Construction and nucleotide sequence analysis of an
<i><b>infectious DNA clone of the autonomous parvovirus, mink enteritis virus. J. Gen. Virol. 1991, 72 Pt 4, 867–875. [</b></i><b>Google Scholar] [CrossRef]</b>
8. Govindasamy, L.; Hueffer, K.; Parrish, C.R.; Agbandje-McKenna, M. Structures of host range-controlling regions of the capsids of canine and feline
<i><b>parvoviruses and mutants. J. Virol. 2003, 77, 12211–12221. [</b></i><b>Google Scholar] [CrossRef][Green Version]</b>
9. Mani, B.; Baltzer, C.; Valle, N.; Almendral, J.M.; Kempf, C.; Ros, C. Low pH-dependent endosomal processing of the incoming parvovirus minute virus
<i>of mice virion leads to externalization of the VP1 N-terminal sequence (N-VP1), N-VP2 cleavage, and uncoating of the full-length genome. J. </i>
<i><b>Virol. 2006, 80, 1015–1024. [</b></i><b>Google Scholar] [CrossRef][Green Version]</b>
10. 10.Mullis, K.; Faloona, F.; Scharf, S.; Saiki, R.; Horn, G.; Erlich, H. Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: The polymerase chain
<i><b>reaction. Cold Spring Harb. Symp. Quant. Biol. 1986, 51 Pt 1, 263–273. [</b></i><b>Google Scholar</b>] [<b>CrossRef][Green Version]</b>
<i><b>11. Green, M.R.; Sambrook, J. Nested Polymerase Chain Reaction (PCR). Cold Spring Harb. Protoc. 2019, 2019, 436–456. [</b></i><b>Google Scholar</b>] [
12. Wang, S.; Yang, F.; Li, D.; Qin, J.; Hou, W.; Jiang, L.; Kong, M.; Wu, Y.; Zhang, Y.; Zhao, F.; et al. Clinical application of a multiplex genetic
<i><b>pathogen detection system remaps the aetiology of diarrhoeal infections in Shanghai. Gut Pathog. 2018, 10, 37. [</b></i><b>Google Scholar</b>] [<b>CrossRef</b>]
<i><b>13. Harshitha, R.; Arunraj, D.R. Real-time quantitative PCR: A tool for absolute and relative quantification. Biochem. Mol. Biol. Educ. 2021, 49, 800–</b></i>
812. [<b>Google Scholar</b>] [<b>CrossRef</b>]
14. Liu, Y.; Wu, H.; Zhou, Q.; Song, Q.; Rui, J.; Zou, B.; Zhou, G. Digital quantification of gene methylation in stool DNA by emulsion-PCR coupled
<i><b>with hydrogel immobilized bead-array. Biosens. Bioelectron. 2017, 92, 596–601. [</b></i><b>Google Scholar</b>] [<b>CrossRef</b>]
15. Wanzhe, Y.; Jianuan, L.; Peng, L.; Jiguo, S.; Ligong, C.; Juxiang, L. Development of a nano-particle-assisted PCR assay for detection of duck
<i><b>tembusu virus. Lett. Appl. Microbiol. 2016, 62, 63–67. [</b></i><b>Google Scholar] [CrossRef][Green Version]</b>
16. Hsieh, M.J.; Yang, W.C. A Field-Deployable Insulated Isothermal PCR (iiPCR) for the Global Surveillance of Toxoplasma gondii Infection in
<i><b>Cetaceans. Animals 2022, 12, 506. [</b></i><b>Google Scholar</b>] [<b>CrossRef</b>]
17. Song, S.; Liu, Z.; Abubaker, M.A.; Ding, L.; Zhang, J.; Yang, S.; Fan, Z. Antibacterial polyvinyl alcohol/bacterial cellulose/nano-silver hydrogels
<i><b>that effectively promote wound healing. Mater. Sci. Eng. C Mater. Biol. Appl. 2021, 126, 112171. [</b></i><b>Google Scholar] [CrossRef] [PubMed]</b>
18. Liu, M.; Liu, T.; Chen, X.; Yang, J.; Deng, J.; He, W.; Zhang, X.; Lei, Q.; Hu, X.; Luo, G.; et al. Nano-silver-incorporated biomimetic
<i>polydopamine coating on a thermoplastic polyurethane porous nanocomposite as an efficient antibacterial wound dressing. J. </i>
<i><b>Nanobiotechnol. 2018, 16, 89. [</b></i><b>Google Scholar</b>] [<b>CrossRef</b>]
19. Abram, S.L.; Fromm, K.M. Handling (Nano)Silver as Antimicrobial Agent: Therapeutic Window, Dissolution Dynamics, Detection Methods and
<i><b>Molecular Interactions. Chem. Eur. J. 2020, 26, 10948–10971. [</b></i><b>Google Scholar] [CrossRef] [PubMed]</b>
20. Kumar, A.; Hosseindoust, A.; Kim, M.; Kim, K.; Choi, Y.; Lee, S.; Lee, S.; Lee, J.; Cho, H.; Kang, W.S.; et al. Nano-sized Zinc in Broiler
<i><b>Chickens: Effects on Growth Performance, Zinc Concentration in Organs, and Intestinal Morphology. J. Poult. Sci. 2021, 58, 21–29. [</b></i>
21. Swain, P.S.; Rao, S.B.N.; Rajendran, D.; Dominic, G.; Selvaraju, S. Nano zinc, an alternative to conventional zinc as animal feed supplement: A
<i><b>review. Anim. Nutr. (Zhongguo Xu Mu Shou Yi Xue Hui) 2016, 2, 134–141. [</b></i><b>Google Scholar</b>] [<b>CrossRef</b>]
<i><b>22. Li, M.; Lin, Y.C.; Wu, C.C.; Liu, H.S. Enhancing the efficiency of a PCR using gold nanoparticles. Nucleic Acids Res. 2005, 33, e184. [</b></i>
<i>23. Rudramurthy, G.R.; Swamy, M.K. Potential applications of engineered nanoparticles in medicine and biology: An update. JBIC J. Biol. Inorg. </i>
<i><b>Chem. 2018, 23, 1185–1204. [</b></i><b>Google Scholar</b>] [<b>CrossRef</b>]
<i>24. Li, H.; Rothberg, L. Colorimetric detection of DNA sequences based on electrostatic interactions with unmodified gold nanoparticles. Proc. Natl. </i>
<i><b>Acad. Sci. USA 2004, 101, 14036–14039. [</b></i><b>Google Scholar] [CrossRef] [PubMed]</b>