Giáo trình CN nuôi cấy mô tế bào thực vật - Phần 2 chương 3 pps

336

Giáo trình nuôi cấy mô tế bào thực vật
Chương 3. CHUYỂN GEN TRONG THỰC TẾ TRỒNG TRỌT
3.1. Tình hình cây trồng chuyển gen trên thế giới
Năm 2006, diện tích toàn cầu cây trồng chuyển gen tiếp tục tăng cao vượt ngưỡng
100 triệu ha , khi lần đầu tiên hơn 10 triệu nông dân (10,3 triệu) tại 22 nước canh tác cây
chuyển gen, cao hơn so với 90 triệu ha và 8,5 triệu nông dân tại 21 nước năm 2005.
Diện tích cây chuyển gen tòan cầu tăng hơn 60 lần trong 11 năm đầu tiên thương
mại hóa, làm cho cây trồng chuyển gen được coi là kỹ thuật cây trồng được chấp nhận
nhanh nhất trong lịch sử
hiện đại. Diện tích cây chuyển gen toàn thề giới năm 2006 là
102 triệu ha, tương đương 250 triệu mẫu Anh, cao hơn so với 90 triệu ha hay 220 triệu
mẫu Anh năm 2005. Sự gia tăng 12 triệu ha hay 30 triệu mẫu Anh giữa năm 2005 và
2006, là sự gia tăng cao thứ hai trong 5 năm trở lại đây, tương đương với tỷ lệ tăng
trưởng hàng năm là 13% trong năm 2006. Đáng ghi nhận là hơn một nửa (55% hay 3,5 tỷ
ngườ
i) dân số của 6,5 tỷ người sống tại 22 nước có canh tác cây chuyển gen trong năm
2006 đã tạo ra lợi nhuận một cách đáng kể. Cũng hơn một nửa (52% hay 776 triệu ha của
1,5 tỷ ha) diện tích đất trồng trên thế giới tại 22 nước năm 2006 đã canh tác cây chuyển
gen.
Năm 2006, 22 nước trồng cây chuyển gen, có 11 nước đang phát triển và 15 nước
công nghiệp, trong đó nếu tính theo thứ tự về diệ
n tích, thì Hoa kỳ dẫn đầu, tiếp đến
Achentina, Brazil, Canada, Ấn độ, Trung Quốc, Paraguay, Nam phi, Uruguay, Philippin,
Úc, Rumani, Mê hi cô, Tây Ban nha, Côlômbia, Pháp, Iran, Honduras, Cộng hòa Czech,
Bồ đào nha, Đức và Sloavakia.
Năm 2006, đứng sau Hoa kỳ là Achentina, Brazil, Canada, Ấn độ và Trung quốc
là 6 nước chấp nhận trồng cây chuyển gen rộng rãi, với Ấn độ lần đầu tiên thay Trung
quốc ở vị trí số 5 trên thế giới về cây bông BT. Hoa kỳ vẫn giữ vị trí dẫn đầu với 54,6
triệu ha (chiếm 53% diện tích cây chuy

ển gen tòan cầu), tiếp theo là Achentina với 18,0
triệu ha, Brazil – 11,5 triệu ha, Ấn độ - 3,8 triệu ha và Trung quốc 3,5 triệu ha.
Cây đậu nành chuyển gen vẫn giữ là cây chuyền gen chủ yếu năm 2005, đạt 58,6
triệu ha (chiếm 57% diện tích cây chuyển gen toàn cầu), tiếp theo là cây bắp (25,2 triệu
ha – 25%), cây bông (13,4 triệu ha – 13%) và cây cải dầu (4,8 triệu ha – 5%). Giống cỏ
alfafa kháng thuốc trừ cỏ, là lọai cây chuyển gen lâu năm đầu tiên được đưa vào trồng với
diện tích 80.000 ha ở Hoa kỳ
và giống bông kháng thuốc trừ cỏ RR@ Flex được đưa ra
với diện tích 800.000 ha ở Hoa kỳ và Úc. Giống đu đủ kháng
virus, là lọai cây ăn quả
được Ủy ban An tòan Sinh học quốc gia Trung quốc khuyến cáo thương mại hóa vào quý
337

Giáo trình nuôi cấy mô tế bào thực vật
IV/2006.
Năm 2006, các giống đậu nành, bắp, cải dầu và cỏ alfalfa kháng thuốc trừ cỏ tiếp
tục chiếm ưu thế với 68% hay 69,9 triệu ha, tiếp theo là giống kháng sâu BT với 19,0
triệu ha (19%) và các giống cây chuyển gen xếp chồng (chịu được cả thuốc trừ cỏ và
kháng sâu chiếm 13,1 triệu ha (13%). Các giống chuyển gen xếp chồng là nhóm giống
tăng trưởng nhanh nhất tới 30% giữa năm 2005 và 2006, so với 17% đối với nhóm kháng
sâu và 10%
đối với nhóm kháng thuốc trừ cỏ.
Cây chuyển gen được trồng bởi 10,3 triệu nông dân tại 22 nước năm 2006, so với
8,5 triệu nông dân tại 21 nước năm 2005. Đặc biệt là 90% hay 9,3 triệu nông dân nghèo
từ các nước đang phát triển, đã tăng được thu nhập từ cây chuyển gen. Trong đó chủ yếu
từ Trung Quốc – 6,8 triệu nông dân và Ấn Độ - 2,3 triệu. Trong giai đọan 1996 đến 2006,
tỷ lệ diện tích trồng cây chuyển gen ở các n
ước đang phát triển tăng hàng năm. Hơn 1/3
diện tích (40%) cây chuyển gen năm 2006, tương đương với 40,9 triệu ha là tại các nước
đang phát triển. Sư tăng trưởng giữa năm 2005 và 2006 là 7,0 triệu ha hay 20% tăng

trưởng ở các nước này cao hơn so với các nước công nghiệp – 5,0 triệu ha hay 9% tăng
trưởng.
Sự tác động tích lũy toàn cầu của cây chuyển gen từ năm 1996 đến 2005 đã đem
lại lợi nhuận thu
ần cho nông dân trồng cây chuyển gen là 27 tỷ USD ( 13 tỷ USD đối với
các nước đang phát triển và 14 tỷ USD đối với các nước công nghiệp. Đã làm giảm tổng
lượng thuốc trừ sâu từ năm 1996 đến 2005 là 224.000 tấn họat chất, tương đương với
việc giảm 15% trong tác động môi trường xung quanh của sử dụng thuốc trừ sâu đối với
các lọai cây trồng trên.
3.2. Chuyển gen ở các cây trồng chính
3.2.1. Cây ngô
Cây ngô biến nạp gen đầu tiên tái sinh từ protoplast được biến nạp bằng xung điện
đã bất thụ (Rhodes và cs 1988). Có thể dùng phôi ngô trong nuôi cấy dịch huyền phù phát
sinh phôi để tái sinh các cây hữu thụ mang gen biến nạp, sử dụng phương pháp bắn gen
và chọn lọc bằng chất diệt cỏ “bialaphos” đã cho kết quả là mô callus phát sinh các phôi
được biến nạp gen. Các cây biến nạp gen hữu thụ đã được tái sinh, ổn định di truyền và
biểu hiệ
n gen bar (kháng chất diệt cỏ glufosinate không chọn lọc) cùng với hoạt tính
chức năng của enzyme phosphinothricin acetyltransferase quan sát được trong những thế
hệ sau. Hiện nay, biến nạp gen ở ngô bằng phương pháp bắn gen được sử dụng rộng rãi.
Gần đây, các kết quả biến nạp gen gián tiếp ở ngô nhờ
Agrobacterium cũng đã được
thông báo. Các thể biến nạp gen của dòng ngô lai gần (inbredline) A188 đã được tái sinh
338

Giáo trình nuôi cấy mô tế bào thực vật
sau khi nuôi cấy chung (cocultivation) giữa vector “super-binary” với phôi non. Tần số
được thông báo ở dòng A188 là khoảng 5-30%. Các thể lai thế hệ thứ nhất giữa dòng
A188 và 5 dòng lai gần khác được biến nạp với tần số khoảng 0,4-5,3% (tính theo số cây
biến nạp gen độc lập/phôi).

Bảng 3.1. Các cây trồng chính đã được biến nạp gen

Stt Loài Phương pháp
biến nạp gen
Thử nghiệm trên đồng ruộng
1 Chuối Bắn
gen/
Agrobacterium
-
2 Luá mạch Bắn gen Kháng vi rus
3 Đậu tây Bắn gen -
4 Canola Bắn
gen/
Agrobacterium
Chống chịu chất diệt cỏ, điều
khiển sự thụ phấn
5 Sắn Bắn
gen/
Agrobacterium
-
6 Ngô Bắn
gen/
Agrobacterium
Kháng côn trùng, chống chịu
chất diệt cỏ
7 Bông Bắn
gen/
Agrobacterium
Kháng côn trùng, chống chịu

chất diệt cỏ
8 Đu đủ Bắn
gen/
Agrobacterium
Kháng virus
9 Đậu phụng Bắn
gen/
Agrobacterium
Kháng virus
10 Bạch dương Bắn
gen/
Agrobacterium
Chống chịu chất diệt cỏ
11 Khoai tây
Agrobacterium
Kháng côn trùng, kháng
virus, chống chịu chất diệt cỏ
12 Lúa Bắn Chống chịu chất diệt cỏ
339

Giáo trình nuôi cấy mô tế bào thực vật
gen/Agrobacterium
13 Đậu tương Bắn
gen/
Agrobacterium
Chống chịu chất diệt cỏ
14 Bí Bắn
gen/
Agrobacterium
Kháng virus

15 Củ cải
đường
Agrobacterium
Chống chịu chất diệt cỏ
16 Mía Bắn gen -
17 Hướng
dương
Bắn gen -
18 Cà chua
Agrobacterium
Quả chín muộn, kháng
virus
19 Lúa mì Bắn gen -


3.2.2. Cây lúa
Phương pháp bắn gen
cho phép thực hiện biến nạp
gen hiệu quả ở lúa trong các
kiểu gen độc lập, và hiện nay
hơn 40 giống đã được biến nạp
gen thành công. Mẫu vật sử
dụng là phôi non và các callus
có nguồn gốc từ hạt trưởng
thành. Hygromycin B là marker
chọn lọc thường được dùng cho
lúa. Tần số biến nạp có thể cao
tới 50% (tính theo số cây biến
nạp gen có nguồn gốc độc
l

ập/số mẫu được bắn gen).

Hình 3.1. Chọn lọc giống lúa chịu hạn bằng cách chuyển gen chịu hạn cho lúa
340

Giáo trình nuôi cấy mô tế bào thực vật
Gần đây, kỹ thuật biến nạp gen ở lúa thông qua Agrobacterium cũng đã có những cải tiến
quan trọng có hiệu quả tương đương với kỹ thuật bắn gen.
3.2.3. Cây lúa mì
Phương pháp bắn gen cũng được sử dụng để biến nạp gen ở lúa mì. DNA ngoại
lai được bắn vào trong các vảy nhỏ (scutellum) của phôi non của hai giống mùa xuân và
một giống mùa đông. Các callus chống chịu được chọn lọc bằng phosphinothricin hoặc
các nhân tố ức chế trao đổi chất tương tự như basta, bialaphos hoặc glufosinate amonium.
Chọn lọc bằng các hợp chất như thế không hiệu quả lắm và kết qu
ả là một số lớn cây thất
thoát. Phân tích di truyền và phân tử đã xác nhận sự hợp nhất ổn định của các gen biến
nạp. Nói chung, công nghệ di truyền lúa mì vẫn còn tập trung ở một hoặc hai giống đặc
trưng có khả năng tái sinh cây nhanh, thích hợp với phương pháp bắn gen.
3.2.4. Cây lúa mạch
Wan và Lemaux (1994), đã tái sinh một số lượng lớn các cây lúa mạch biến nạp
gen độc lập, tự thụ phấn. Các phôi hợp tử non, các callus mới hình thành và các phôi có
nguồn gốc từ tiểu bào tử hạt phấn đã được dùng để bắn gen với plasmid mang gen
bar và
gusA đơn độc hoặc phối hợp với plasmid khác mang gen protein vỏ của virus gây bệnh
lùn vàng ở lúa mạch. Kiểm tra khả năng nảy mầm của phôi non để phân lập các cây biểu
hiện hoạt tính
bar bằng môi trường chứa bialaphos, mặc dù đây chưa phải là một chất chỉ
thị tốt cho sự có mặt hoặc không của gen.
3.2.5. Cây đậu tương
Kết quả đầu tiên ở đậu tương là phục hồi thành công cây biến nạp gen nhờ

Agrobacterium. Phương thức này dựa vào sự phát sinh chồi từ lá mầm của giống Peking
chọn lọc cho tính mẫn cảm với
Agrobacterium. Các mẫu lá mầm được xâm nhiễm với
Agrobacterium mang plasmid kháng kanamycin và có hoạt tính gusA, hoặc kháng
kanamycin và chống chịu glyphosate. Có thể biến nạp gen hiệu quả vào protoplast đậu
tương bằng các phương thức thông dụng nhưng rất khó tái sinh được cây.
Để biến nạp gen vào các giống đậu tương khác nhau người ta đã phối hợp hai yếu
tố: genotype đơn giản - phương thức tái sinh cây độc lập (dựa trên cơ sở sự tăng sinh của
cụm chồi từ vùng chung quanh mô phân sinh của trụ phôi) với sự
tăng gia tốc của vi đạn
(particle) có phóng điện để phân phối DNA ngoại lai. Hàng trăm cây đậu tương có nguồn
gốc độc lập đã thu được và kết quả biến nạp đã cho nhiều phenotype khác nhau. Nói
chung, ở các dòng đậu tương biến nạp gen có nhiều bản sao của các gen biến nạp (số bản
sao khoảng từ 1-50 nhưng thường thay đổi từ 2-10). Phân tích DNA (southern blot) ở thế
341

Giáo trình nuôi cấy mô tế bào thực vật
hệ sau của các bản sao gen phức cho thấy tất cả các bản sao cùng tách rời, như thế mỗi
thể biến nạp sơ cấp chỉ hiện diện một kết quả biến nạp độc lập và có thể sự tái tổ hợp
thống nhất đã không xuất hiện thường xuyên.
3.2.6. Cây bông
Phương thức biến nạp gián tiếp thông qua Agrobacterium tumefaciens là kỹ thuật
đầu tiên được sử dụng để biến nạp gen vào cây bông giống Coker 312 (Umbeck 1987).
Cây bông biến nạp gen cũng của giống trên đã được phục hồi sau khi bắn gen vào dịch
huyền phù nuôi cấy phát sinh phôi (Finer và McMullen 1990). Hầu hết các giống bông có
giá trị kinh tế khác không thể tái sinh cây từ giai đoạn callus. Một số ít các giống đó có
thể tái sinh cây nhưng quá trình này thiên về biến dị dòng vô tính.
3.3. Triển vọng và hướng phát triển
Hiện nay ở nước ta lĩnh vực nghiên cứu tạo sinh vật biến đổi gen, nghiên cứu
chuyển gen vào cây trồng (GM) đang được tiếp cận, đầu tư và triển khai nghiên cứu, ứng

dụng với sự chú trọng đặc biệt. Nhiều gen quý có giá trị ứng dụng như năng suất, chất
lượng, khả năng chống chịu đã được phân lập và nghiên cứu nhằm chuyển vào cây trồng
để
tạo nên những giống lý tưởng. Nhiều phương pháp chuyển gen khác nhau như phương
pháp bắn gen, phương pháp sử dụng vi khuẩn. A.tumefaciens đã được áp dụng thành
công trên hàng loạt cây trồng quan trọng như lúa, cà chua, cà tím, đậu xanh, cà-phê,
thuốc lá, khoai lang. Những vấn đề thiết kế vector cũng như hoàn thiện các quy trình tái
sinh cây khởi đầu cho nghiên cứu chuyển gen cũng nhận được sự quan tâm của nhiều nhà
khoa học.
Các nhà khoa học đã tiến hành thu nhập và phân lập
được nhiều nguồn gen quý có
giá trị nông nghiệp như gen chịu hạn, lạnh ở lúa; gen cry, gen mã hóa protein bất hoạt
hóa ở cây mướp đắng và gen mã hóa của cây đậu cô ve có hoạt tính diệt côn trùng; gen
kháng bọ, hà khoai lang của vi khuẩn Bt; gen mã hóa protein vỏ của
virus gây bệnh đốm
vòng ở cây đu đủ Hiện các nhà sinh học Việt Nam đang tiếp tục nghiên cứu để chuyển
gen vào cây hoa, cây bông và cây lâm nghiệp, nhằm nâng cao sức chống chịu với sâu
bệnh và điều kiện ngoại cảnh bất lợi.

Những nghiên cứu tăng cường tính chịu hạn và chịu mặn ở cây lúa bằng công
nghệ GM, chuyển gen kháng
virus đốm vòng vào cây đu đủ, chuyển gen chịu hạn vào
cây bông cũng đang được triển khai hiệu quả với một số loài cây GM.

342

Giáo trình nuôi cấy mô tế bào thực vật
Nhà nước ta đã xác định công nghệ sinh học là một ngành khoa học quan trọng.
Từ năm 1990, Chương trình công nghệ sinh học quốc gia đã được cấp kinh phí cho các
dự án nghiên cứu ứng dụng công nghệ sinh học, đặc biệt trong cải tiến giống cây trồng.

Từ năm 2001, Chính phủ đã đầu tư nhiều dự án, đề tài nghiên cứu GM liên quan đến
nhiều cây trồng quan trọng của Việt Nam. Một số phòng thí nghiệm công ngh
ệ sinh học
đã và đang được Nhà nước đầu tư trang thiết bị hiện đại và triển khai các kỹ thuật cơ bản
của công nghệ gen như phân lập và xác định trình tự gen, thiết kế và biến nạp gen vào tế
bào vi sinh vật, động vật, nghiên cứu biểu hiện gen Nhờ các biện pháp và chính sách
khuyến khích, đầu tư hiệu quả đó, công nghệ sinh học ở nước ta vài năm gần đây
đã có
những bước phát triển mạnh mẽ.
Công nghệ di truyền thực vật là một bước ngoặt quyết định. Một số cây trồng
quan trọng đã được biến nạp gen; một vài vấn đề kỹ thuật vẫn đang còn tồn tại, nhưng
chúng đang dần dần được giải quyết. Để có kết quả cần phải thay đổi dần dần sang một
ph
ạm vi khác, như là phát hiện và tạo dòng các gen mang các tính trạng đa gen
(multigenic traits). Một điều không thể quên là vấn đề nhận thức của xã hội và dự báo
nguy cơ tác động xấu đến môi trường do các sản phẩm có nguồn gốc từ công nghệ tái tổ
hợp DNA mang lại.
Cây biến nạp gen đầu tiên thu được vào năm 1983. Điều này cho phép nhận xét
rằng mới chỉ hơn hai thập niên, các công cụ của công nghệ DNA tái tổ h
ợp và sinh học tế
bào đã giúp ích rất nhiều cho các nhà tạo giống thực vật. Việc lựa chọn phương thức sử
dụng các cây trồng thu được từ công nghệ DNA tái tổ hợp có thể cung cấp thêm nguồn
tài nguyên mới cho công nghiệp và người tiêu dùng, như vậy có thể mở rộng cơ sở kinh
tế ở cả các nước công nghiệp lẫn các nước đang phát triển.
3.4. Thực hành chuyển gen vào cây thuốc lá bằng Agrobacterium tumefaciens
3.4.1. Dụng cụ
- Bình tam giác (250 ml), ống nghiệm có nắp vặn
- Giấy thấm vô trùng
- Forceps, kéo, dao mổ
- Que cấy vi sinh

- Đĩa petri (plastic và thủy tinh) vô trùng
- Giấy parafilm
- Giấy nhôm
343

Giáo trình nuôi cấy mô tế bào thực vật
- Tube eppendorf (1,5-2 ml)
- Cốc chịu nhiệt, ống đong, micropipette
3.4.2. Thiết bị
- Nồi khử trùng
- Tủ sấy
- Laminar
- Tủ lạnh
- Microwave
- Cân phân tích 10
-4
g
- Cân kỹ thuật 10
-2
g
- Máy cất nước 2 lần
- Máy ly tâm lạnh (14000 rpm) cho tube 1,5-2 ml
3.4.3. Hóa chất
- Môi trường cơ bản MS
- Môi trường nuôi cấy vi khuẩn LB
- Các loại kháng sinh: kanamycin, rifampicin và cefotaxim
- Agar
- MgSO
4
10mM

- Dung dịch stock các chất kích thích sinh trưởng: NAA và BAP
- Cồn 90%
- Nước cất vô trùng
3.4.4. Phương pháp tiến hành
3.4.4.1. Nguyên liệu
- E. coli chủng TOP 10 có mang pRK 2013 (helper plasmid)
-
E. coli chủng TOP 10 có mang vector pBI 121+ insert DNA (gen ngoại lai mang
tính trạng mong muốn)
-
Agrobacterium tumenfaciens chủng LBA 4404.
- Cây thuốc lá
in vitro.
344

Giáo trình nuôi cấy mô tế bào thực vật
3.4.4.2. Chuẩn bị môi trường
*Môi trường LB
- Bacto-tryptone 3 g
- Yeast-Extract 1,5 g
- NaCl 3 g
- Nước cất đến đủ 300mL.
* Môi trường LB đặc
Môi trường LB bổ sung 1,5 % agar/100 mL.

* Môi trường LB-R
Môi trường LB bổ sung 100 µg/mL rifampicin.

* Môi trường LB-K
Môi trường LB bổ sung 50 µg/mL kanamycin.

* Môi trường LB-RK
Môi trường LB bổ sung 100 µg/mL rifampicin và 50 µg/mL kanamycin.
* Môi trường MSO
- MS đầy đủ
- Agar 0,8 %
- Saccharose 3 %
- pH
môi trường
~ 5,8
* Môi trường nuôi cấy (MS 104)
- MS đầy đủ
- Agar 0,8 %
- Saccharose 3 %
- BAP 2 mg/mL
- NAA 0,2 mg/mL
- pH
môi trường
~ 5,8
* Môi trường chọn lọc (MS SEL)
- MS đầy đủ
345

Giáo trình nuôi cấy mô tế bào thực vật
- Agar 0,8 %
- Saccharose 3 %
- BAP 2 mg/mL
- NAA 0,2 mg/mL
- Kanamycin 1,5 mL
- Cefotaxim 2 mL

- pH
môi trường
~ 5,8
* Môi trường tạo rễ (MSR)
- MS đầy đủ
- Agar 0,8 %
- Saccharose 3 %
- Kanamyin 1,5 mL
- Cefotaxim 2 mL
- pH
môi trường
~ 5,8
Môi trường có bổ sung cefotaxim cần được bảo quản trong điều kiện không có
ánh sáng. Chất kháng sinh được bổ sung sau khi đã khử trùng môi trường (để nhiệt độ
môi trường hạ xuống khoảng 55-60
o
C) ở điều kiện vô trùng của laminar.
3.4.5. Tiến hành
3.4.5.1. Triparental mating (giao phối bộ ba)
* Nuôi cấy vi khuẩn
Các môi trường LB lỏng được chuẩn bị trong các ống nghiệm có nắp vặn, khử
trùng để tiến hành nuôi cấy các vi khuẩn. Các bước như sau:
à Nuôi A. tumenfaciens trong môi trường LB-R trong tổi, ở 28
o
C, thời gian 48 giờ
(nuôi trước khi tiến hành triparental mating 2 ngày).
à Nuôi E. coli có mang plasmid helper (pRK 2013) và E. coli có mang vector pBI
121 + insert DNA trong môi trường LB-K (nuôi trước khi tiến hành lai bộ ba 1 ngày).
* Nuôi cấy chung 3 loại vi khuẩn
Các bước tiến hành:

à Lấy mỗi ống nghiệm nuôi các loại vi khuẩn 1 mL, ly tâm tốc độ khoảng 10.000
rpm, trong 5 giây.
à Loại bỏ thể nổi, thêm 1 mL môi trường LB, lắc nhẹ để trộn (để loại bỏ chất
346

Giáo trình nuôi cấy mô tế bào thực vật
kháng sinh).
à Lập lại 2 bước trên 2 lần. Thêm 300 µl môi trường LB.
à 3 loại vi khuẩn trên được cấy lên mặt đĩa chứa môi trường LB đặc (đã được
chuẩn bị trước các đĩa petri chứa môi trường LB bổ sung 1,5 % agar) không bổ sung chất
kháng sinh, mỗi loại vi khuẩn lấy 100 µl. Dàn đều trên bề mặt môi trường đến khi khô
hoàn toàn.
Nuôi cấy từ 1-2 ngày tại 26-28
o
C, đến khi các “thảm” vi khuẩn được hình thành.
* Chọn lọc vi khuẩn nuôi cấy bằng cách trộn 3 loại vi khuẩn, sử dụng chất kháng
sinh
Các bước tiến hành:
à Lấy 5 mL MgSO
4
10 mM cho lên đĩa petri mới, lấy một ít vi khuẩn trong
“thảm” đã nuôi cấy ở trên cho vào để có một dịch lỏng.
à Chuẩn bị 4 tube eppendorf vô trùng, cho vào mỗi tube 900 µL MgSO
4
10 mM.
à Tiến hành pha loãng vi khuẩn thành các nồng độ pha loãng: 10
-1
, 10
-2
, 10

-3
, 10
-4
.
à Lấy 100 µl mỗi loại vi khuẩn đã pha loãng dàn đều lên 5 đĩa petri chứa môi
trường LB-RK bổ sung 2 % agar.
à Nuôi trong 2-3 ngày tại 26-28
o
C trong điều kiện tối để phát triển khuẩn lạc.
à Nuôi cấy 1 khuẩn lạc trong 5 mL môi trường LB-RK tại 26-28
o
C từ 1-2 ngày để
thu được sinh khối
E. coli, xác định Agrobacterium đã được chuyển gen (nếu chưa sử
dụng ngay, thêm vào 15% glycerin và bảo quản ở -70
o
C).

3.4.5.2. Chuyển gen vào cây thuốc lá thông qua Agrobacterium
Các bước tiến hành:
à Lấy 1 khuẩn lạc ở trên cấy chuyển vào 5 mL môi trường LB-K lỏng, nuôi cấy
lắc ở điều kiện tối, nhiệt độ từ 27-28
o
C trong 2-3 ngày.
à Thu tất cả các tế bào đã nuôi cấy ở trên bằng cách cho môi trường LB-K lỏng
chứa khuẩn lạc vào tube eppendorf, ly tâm từ 0,5-1 phút, tốc độ 12.000 rpm. Lặp lại
nhiều lần.
à Loại bỏ môi trường LB ở phía trên, các tế bào thu được hòa tan trong 1 mL môi
trường MSO lỏng.
à Chuẩn bị 20 mL môi trường MSO trên đĩa petri.

à Lá thuốc lá in vitro cắt thành các mảnh lá có kích thước ước chừng khoảng 0,5-
347

Giáo trình nuôi cấy mô tế bào thực vật
0,7 cm × 0,5-0,7 cm (loại bỏ các gân lá), chuyển lên đĩa petri chứa môi trường MSO.
à Tế bào Agrobacterium hòa trong 1 mL môi trường MSO được cấy chuyển sang
môi trường MSO có chứa các mảnh lá, lắc nhẹ bằng tay và ủ trong 10 phút.
à Sau khi đồng nuôi cấy, làm khô các mảnh lá bằng cách chuyển chúng lên giấy
lọc vô trùng trong 0,5-1 phút. Các mảnh lá đó được nuôi trên môi trường nuôi cấy (MS
104) trong 2 ngày trong tối.
à Các mảnh lá sau đó được cấy chuyển sang môi trường chọn lọc (MS SEL) và
nuôi cấy trong 3 tuần để tái sinh chồi ở điều kiện chiếu sáng.
à Các chồi tạo thành được cấy chuyển lên môi trường MSR để tạo rễ. Các cây
hoàn chỉnh được chuyển sang nuôi cấy trong các bình. Các cây này là các cây đã được
tiến hành chuyển gen. Để biết việc chuyển gen có thành công hay không cần phải tiến
hành các thí nghiệm kiểm tra (tách chiết DNA của
Agrobacterium, chạy PCR với cặp
primer đặc hiệu cho insert DNA và điện di sản phẩm PCR trên agarose gel 1 %).

348

Giáo trình nuôi cấy mô tế bào thực vật
TÀI LIỆU THAM KHẢO
Tài liệu tiếng việt:
1.
Đái Duy Ban, 1998, Công nghệ ADN trong điều trị gen và các bệnh hiểm
nghèo, Nhà xuất bản y học
2.
Đái Duy Ban, 2004, Công nghệ gen, Nhà xuất bản Khoa học và Kỹ thuật
3.

Nguyễn Bá, 2006, Hình thái học thực vật, Nhà xuất bản Giáo dục.
4.
Hồ Huỳnh Thùy Dương, 1996, Sinh học phân tử, Nhà xuất bản giáo dục
5.
Nguyễn Đình Huyên, 1998, Sinh học phân tử ADN, Nhà xuất bản khoa học kĩ
thuật
6.
Lê Văn Hoàng, 2004,Các quá trình và thiết bị Công nghệ sinh học trong Công
nghiệp, Nhà xuất bản Khoa học và Kỹ thuật Hà Nội
7.
Phạm Thành Hổ, 2000, Di truyền học, Nhà xuất bản giáo dục
8.
Nguyễn Như Hiền.2002. Di truyền và Công nghệ tế bào xoma. Nhà xuất bản
Khoa học và Kỹ thuật
9.
Võ Thị Hương Lan, 2002, Sinh học phân tử, Nhà xuất bản Đại học quốc gia Hà
Nội
10.
Nguyễn Thị Lang, 2002, Phương pháp cơ bản trong nghiên cứu công nghệ sinh
học, Nhà xuất bản nông nghiệp
11.
Lê Đình Lương, 1994, Cơ sở di truyền học, Nhà xuất bản giáo dục
12.
Nguyễn Đức Lượng, Lê Thị Thủy Tiên,2002, Công nghệ tế bào, Nhà xuất bản
ĐHQG TP HCM
13.
Trần Văn Minh, 1999, Công nghệ tế bào thực vật, Đại học quốc gia thành phố
Hồ Chí Minh- Trường ĐH Nông Lâm.
14.
Phan Cử Nhân, 1998, Sinh học đại cương, Nhà xuất bản Đại học quốc gia Hà

Nội
15.
Nguyễn Đức Thành, 2000, Nuôi cấy mô tế bào thực vật nghiên cứu và ứng
dụng, Nhà xuất bản nông nghiệp Hà Nội
16.
Lê Ngọc Tú, Đỗ Ngọc Liên, Đặng Thị Thu, 2002, Tế bào và các quá trình sinh
học, Nhà xuất bản khoa học kĩ thuật Hà Nội
17.
Khuất Hữu Thanh, 2003, Cơ sở di truyền phân tử và kĩ thuật gen, Nhà xuất bản
khoa học kĩ thuật
18.
Đặng Thị Thu, Lê Ngọc Tú, Tố kim Anh, Phạm Thu Thủy, Nguyễn Xuân Sâm,
2003, Công nghệ Enzym. Nhà xuất bản Khoa học và Kỹ thuật
19.
Quyền Đình Thi. 2005, Những kỹ thuật cơ bản trong phân tích DNA, Nhà xuất
Bản Khoa học và Kỹ thuật
20.
Trần Thị Xô, Nguyễn Thị Lan, 2004, Cơ sở di truyền và công nghệ gen, Nhà
xuất bản Khoa học và Kỹ thuật
21.
Vũ Văn Vụ, Nguyễn Mộng Hùng, Lê Hồng Điệp,2005, Công Nghệ Sinh Học,
Tập Hai
Công Nghệ Sinh Học Tế Bào, Nhà xuất bản Giáo Dục,.
22.
Vũ Văn Vụ, Vũ Thành Tâm, Hoàng Minh Tấn, 2001, Sinh Lý Học Thực Vật,
Nhà xuất bản Giáo Dục
23.
Đỗ Năng Vịnh. Công nghệ sinh học cây trồng,2002, Nhà xuất bản Nông Nghiệp
24.
Nguyễn Văn Uyển,1995-1996, Những phương pháp công nghệ sinh học thực

vật
. Tập 1 (1995), Tập 2 (1996), Nhà xuất bản Nông nghiệp, TP Hồ Chí Minh

349

Giáo trình nuôi cấy mô tế bào thực vật

Tài liệu tiếng anh:

25.
Ammirato PV, Evans DA, Sharp WR and Bajaj YPS. 1990. Handbook of plant
cell culture
. Vol.5, McGraw-Hill Publishing Company.
26.
Chrispeels MJ and Sadava DE., 2003, Plants, genes, and crop biotechnology.
2
nd
. Jones and Bartlett Publishers, Sudbury, Massachusetts.
27.
Dodds J.H và Robert L.W., 1999, Experiment in plant tissue culture. Cambridge
University Press,
28.
Gamborg OL. Kumar AS, Hanning GE and Nabors MW. ,1989, Tissue culture
and biotechnology applied to stress tolerance in plants. In: Proceedings of the
International Confrence on
in vitro Selection and Propagation of Economic
Plants. Univ. of Peshawar, Pakistan.
29.
Hartmann HT, Kester DE, Davies FT, 993, Plant propagation: Principles and
Practices

. 5
th
Edition. Pretice-Hall of India Private Limited, New Delhi.
30.
Heywood V.H., 1985. Flowering plants of the word, Croom Helm, London
&Sydney.
31.
James C. "Global Review of Commercializied Transgenic Crops 2001", ISAAA
Briefs N'24
32.
Jain SM, Gupta PK, Newton RJ, 1994, Somatic embryogenesis in woody plants.
Vol 3. Forestry Sciences 44, Kluwer Academic Publishers.
33.
Razan MK ., 1994, An introduction to plant tissue culture. Oxford & IBH
Publishing Co. Pvt. Ltd. New Delhi.
34.
Russell GE., 1988, Biotechnology of higher plants. Intercept Ltd. Wimborne,
Dorset, England.
35.
Ting I.P., 1985. Plant physiology. University of California.
36.
Thomas E. Barman. Enzyme handbook. Supplement I Springer - Verlag Berlin
Heidelberg NewYork, 1974
37.
Trigiano R.N và Gray D.J., 1999, Plant tissue culture concept and laboratory
exercises. CRC Press.Florida, America,.
38.
Trigiano RN and Gray DJ., 2000, Plant tissue culture concepts and laboratory
exercises
. CRC Press, New York.

39.
Razan MK. 1994. An introduction to plant tissue culture. Oxford & IBH
Publishing Co. Pvt. Ltd. New Delhi.