Nghiên cứu thành phần hóa học và một số hoạt tính sinh học của loài xuyên tâm liên (andrographis paniculata (burm f ) nees) và loài vân mộc hương (saussurea costus (falc ) lipsch ) ở việt nam TT

BỘ GIÁO DỤC VÀ ĐÀO TẠO
TRƯỜNG ĐẠI HỌC BÁCH KHOA HÀ NỘI

NGUYỄN THỊ THÙY MỴ

NGHIÊN CỨU THÀNH PHẦN HÓA HỌC VÀ
MỘT SỐ HOẠT TÍNH SINH HỌC CỦA LỒI XUN TÂM LIÊN
(ANDROGRAPHIS PANICULATA (BURM.F.) NEES) VÀ LOÀI
VÂN MỘC HƯƠNG (SAUSSUREA COSTUS (FALC.) LIPSCH.)
Ở VIỆT NAM

Ngành: Hóa học
Mã số: 9440112

TĨM TẮT LUẬN ÁN TIẾN SĨ HÓA HỌC

Hà Nội – 2021


Cơng trình được hồn thành tại:
Trường Đại học Bách khoa Hà Nội

Người hướng dẫn khoa học:
1. GS. VS. Châu Văn Minh
2. PGS.TS. Trần Thu Hương

Phản biện 1:
Phản biện 2:
Phản biện 3:

Luận án được bảo vệ trước Hội đồng đánh giá luận án tiến sĩ cấp

Trường họp tại Trường Đại học Bách khoa Hà Nội
Vào hồi …….. giờ, ngày ………. Tháng ……… năm ……..

Có thể tìm hiểu luận án tại thư viện:
1. Thư viện Tạ Quang Bửu – Trường ĐHBK Hà Nội
2. Thư viện Quốc gia Việt Nam


GIỚI THIỆU LUẬN ÁN
Tính cấp thiết của luận án
Theo Tổ chức Y tế Thế giới (WHO), có khoảng 80% dân số sử
dụng y học cổ truyền, đặc biệt là dược liệu chăm sóc sức khỏe ban
đầu. Trong q trình nghiên cứu và phát triển thuốc, kinh nghiệm sử
dụng thuốc trong dân gian là một trong những yếu tố quan trọng làm
tăng tỷ lệ thành cơng trong tìm kiếm các hợp chất dẫn đường (lead
compounds) để tổng hợp thuốc thông qua việc giảm thời gian, tiết
kiệm chi phí và ít độc hại với cơ thể sống. Do đó, cây dược liệu vẫn là
đối tượng thu hút mạnh mẽ sự quan tâm của các nhà khoa học trên thế
giới trong nghiên cứu tìm kiếm các hoạt chất mới.
Theo Từ điển cây thuốc Việt Nam, loài xuyên tâm liên
(Andrographis paniculata (Burm. f.) Nees) được sử dụng làm thuốc
chữa các bệnh như: viêm đường tiết niệu, viêm phổi, huyết áp cao
…Trong khi đó, lồi vân mộc hương (Saussurea costus (Falc.)
Lipsch.) được dùng để trị các bệnh như: đau mỏi xương khớp, trúng
độc, tiểu tiện bế tắc... Các nghiên cứu về thành phần hóa học cho thấy
hai loài này chứa nhiều lớp chất đáng quan tâm như: terpenoid,
flavonoid, iridoid, steroid, alkaloid, anthraquinone, lignan…Các
nghiên cứu hoạt tính sinh học cho thấy dịch chiết và các hợp chất phân
lập từ hai lồi này có các hoạt tính quan trọng như: gây độc tế bào ung
thư, kháng viêm, kháng khuẩn, chống oxi hóa, bảo vệ gan,…

Do đó, chúng tơi lựa chọn đề tài: “Nghiên cứu thành phần hóa
học và một số hoạt tính sinh học của lồi Xun tâm liên
(Andrographis paniculata (Burm. f.) Nees) và loài Vân mộc hương
(Saussurea costus (Falc.) Lipsch.) ở Việt Nam”.
Mục tiêu của luận án
1. Nghiên cứu thành phần hóa học của hai lồi xuyên tâm liên
(A. paniculata) và vân mộc hương (S. costus).
2. Đánh giá một số hoạt tính sinh học của các hợp chất phân lập
được để tìm kiếm các hoạt chất tiềm năng.
Nội dung của luận án
1. Nghiên cứu phân lập các hợp chất từ phần trên mặt đất loài
xuyên tâm liên và rễ loài vân mộc hương ở Việt Nam
2. Xác định cấu trúc hóa học của các hợp chất phân lập được
3. Đánh giá hoạt tính ức chế sản sinh NO của một số hợp chất
phân lập được
1


4. Đánh giá hoạt tính gây độc tế bào của một số hợp chất phân
lập được
5. Đánh giá hoạt tính kháng vi sinh vật kiểm định của dịch chiết
loài vân mộc hương và lồi xun tâm liên
Những đóng góp mới của luận án
Đây là nghiên cứu về thành phần hóa học và hoạt tính sinh học
lồi Xun tâm liên (A. paniculata) và Vân mộc hương (S. costus) ở
Việt Nam với các kết quả nghiên cứu mới như sau:
• Từ dịch chiết phần trên mặt đất cây xuyên tâm liên, 16 hợp
chất sạch (APT1-APT16) đã được phân lập và xác định cấu trúc, trong
đó có 04 hợp chất mới là APT1, APT2, APT7 và APT12; hợp chất
APT15 lần đầu tiên được phân lập từ lồi xun tâm liên ở Việt Nam.

• Từ dịch chiết rễ cây vân mộc hương, 16 hợp chất sạch (SAL116) đã được phân lập và xác định cấu trúc, trong đó có 02 hợp chất
mới là SAL1, SAL2. Các hợp chất SAL4, 5, 10 lần đầu tiên được phân
lập từ chi Saussurea DC ở Việt Nam. Các hợp chất SAL8, SAL11-13,
SAL15 lần đầu tiên được phân lập từ lồi vân mộc hương ở Việt Nam.
• Đã tiến hành đánh giá hoạt tính ức chế sản sinh NO trên tế bào
RAW264.7 kích thích bởi LPS của 30 hợp chất (SAL1-16, APT1-8,
APT11-16) phân lập được. Kết quả là, các hợp chất SAL2, 3, 6, 9, 10,
12-16 và APT11 có biểu hiện hoạt tính, trong đó, các hợp chất SAL6,
10, 16 có hoạt tính mạnh nhất với IC50 = 7,08 ± 0,34; 2,40 ± 0,06 và
5,55 ± 0,24 μM; các hợp chất SAL3, 12, 14, 15 có hoạt tính trung bình
với IC50= 14,79 ± 1,09 đến 27,29 ± 1,03 μM; các hợp chất SAL2, 9,
13 có hoạt tính yếu với IC50 = 33,88 ± 1,02 đến 64,57 ± 1,86 μM. Hợp
chất APT11 có hoạt tính ức chế tốt với IC50 = 13,41 ± 0,57 μM.
• Đã tiến hành đánh giá hoạt tính gây độc tế bào trên 05 dịng
tế bào ung thư người: tuyến tiền liệt (LNCaP), gan (HepG2), biểu mô
(KB), vú (MCF7) và da (SK-Mel-2) của 14 hợp chất (APT1-8,
APT11-16). Kết quả là, hợp chất APT11 có hoạt tính trung bình trên
tất cả 05 dịng tế bào thử nghiệm với IC50 từ 31,76 ± 2,42 μM đến
45,95 ± 2,92 μM.
• Đã tiến hành thử hoạt tính kháng vi sinh vật kiểm định của
dịch chiết SAL, APT trên 5 chủng vi khuẩn gram (-), 3 chủng vi khuẩn
gram (+) và 1 chủng nấm ở dải nồng độ 50-200 mg/mL. Kết quả là:
dịch chiết SAL, APT có hoạt tính kháng khuẩn M. luteus cao hơn đối
chứng dương và có hoạt tính kháng khuẩn S. aureus thấp hơn đối
2


chứng dương (Gentamicin 200 μg/mL). Dịch chiết SAL có hoạt tính
kháng nấm C. ablicans thấp hơn đối chứng dương (Ciclopirox olamine
10 μg/mL), dịch chiết APT khơng có hoạt tính. Dịch chiết SAL và

APT khơng có hoạt tính kháng khuẩn E. coli, B. subtilis, P. vulgaris,
P. mirabilis, P. aeruginosa và S. typhi.
Bố cục của luận án
Luận án gồm 137 trang với 48 bảng số liệu, 87 hình và sơ đồ, 149
tài liệu tham khảo cập nhật đến năn 2020. Bố cục luận án gồm: Mở
đầu (2 trang); Chương 1. Tổng quan về lĩnh vực nghiên cứu (28 trang);
Chương 2. Đối tượng và phương pháp nghiên cứu (7 trang); Chương
3. Thực nghiệm (11 trang); Chương 4. Kết quả và thảo luận (86 trang);
Kết luận và kiến nghị (3 trang); Danh mục các cơng trình đã cơng bố
của luận án (1 trang); Tài liệu tham khảo (12 trang).
NỘI DUNG CỦA LUẬN ÁN
MỞ ĐẦU
Phần này đề cập đến ý nghĩa khoa học, mục tiêu và nội dung
nghiên cứu của luận án.
CHƯƠNG 1: TỔNG QUAN VỀ LĨNH VỰC NGHIÊN CỨU
Phần trình bày tổng quan các nghiên cứu trong nước và quốc tế về
thành phần hóa học và hoạt tính sinh học của lồi xun tâm liên và
loài vân mộc hương.
CHƯƠNG 2: ĐỐI TƯỢNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU
2.1. Đối tượng nghiên cứu
Phần trên mặt đất của loài xuyên tâm liên thu hái tại Văn Lâm,
Văn Giang, Hưng Yên, Việt Nam vào tháng 4/2016.
Rễ của loài vân mộc hương thu hái tại Sapa, Lào Cai, Việt Nam
vào tháng 5/2018.
Tên khoa học được TS. Nguyễn Thế Cường - Viện Sinh thái và
Tài nguyên Sinh vật – VAST định tên.
2.2. Phương pháp nghiên cứu
2.2.1. Phương pháp phân lập các hợp chất
Phối hợp các phương pháp sắc ký: sắc ký lớp mỏng (TLC), sắc ký
cột (CC), sắc ký lỏng trung áp (MPLC) để phân lập các hợp chất sạch.

2.2.2. Phương pháp xác định cấu trúc hóa học các hợp chất
Các phương pháp vật lý hiện đại được sử dụng để xác định cấu
trúc các hợp chất phân lập được từ các đối tượng nghiên cứu, bao gồm
phổ khối phân giải cao (HR-ESI-MS, HR-QTOF-MS), phổ cộng
hưởng từ hạt nhân (1D, 2D NMR) kết hợp với đo độ quay cực ([α]D).
3


2.2.3. Phương pháp đánh giá hoạt tính sinh học
Phần này trình bày các phương pháp: thử hoạt tính gây độc tế bào
bằng phương pháp MTT, thử hoạt tính ức chế sản sinh NO trên dịng
tế bào RAW264.7 được kích thích bởi LPS và thử hoạt tính kháng vi
sinh vật kiểm định trên 8 chủng vi khuẩn và 1 chủng nấm.
CHƯƠNG 3. THỰC NGHIỆM
3.1. Phân lập các chất từ loài Xuyên tâm liên (A. paniculata)
3.1.1. Phân lập các hợp chất
Phần này trình bày cụ thể các bước ngâm chiết và phân lập các
chất từ phần trên mặt đất của loài xuyên tâm liên (Hình 3.1.1).
3.1.2. Thơng số vật lý và dữ liệu phổ của các hợp chất phân lập từ
loài Xuyên tâm liên (A. paniculata)
Phần này trình bày thơng số vật lý và dữ kiện phổ của 16 hợp chất
sạch (APT1-APT16) phân lập được từ lồi xun tâm liên, trong đó
có 04 hợp chất mới (APT1, APT2, APT7, APT12) (Hình 3.1.1).

Hình 3.1.1. Sơ đồ phân lập các hợp chất sạch từ lồi xun tâm liên
• Hợp chất Andropanioside A (APT1)
Chất bột, màu trắng, độ quay cực [𝛼]25
𝐷 : -15,25 (c = 0,05; MeOH),
HR-ESI-MS: m/z 519,2568 [M+Na]+, 1H NMR (CD3OD, 500MHz): δ
(ppm) 0,93 (3H, s, H-20); 1,00 (3H, s, H-18); 1,20 (1H, dd, J = 3,0;

14,5 Hz, Ha-3); 1,40 (3H, m, Ha-1/H-5/Ha-6); 1,69 (2H, m, H-9/Ha11); 2,20 (1H, dd, J = 1,5; 14,0 Hz, Hb-1); 2,30 (1H, dd, J = 2,5; 14,5
4


Hz, Hb-3); 3,17 (1H, dd, J = 8,0; 9,0 Hz, H-2'); 3,23 (1H, d, J = 11,0
Hz, Ha-19); 3,27 (1H, d, J = 9,0 Hz, H-4'); 3,33 (2H, m, H-3'/H-5');
3,65 (1H, dd, J = 6,0; 12,0 Hz, Ha-6'); 3,88 (1H, dd, J = 2,0; 12,0 Hz,
Hb-6'); 4,12 (1H, t, J = 3,5 Hz, H-2); 4,17 (1H, d, J = 11,0 Hz, Hb-19);
4,67 (1H, s, Ha-17); 4,91 (1H, s, Hb-17); 4,34 (1H, d, J = 8,0 Hz, H1'); 7,36 (1H, s, H-14). 13C NMR (CD3OD, 125 MHz): δ (ppm) 176,9
(C-16); 148,8 (C-8); 147,6 (C-14); 134,8 (C-13); 107,8 (C-17); 104,9
(C-1'); 78,7 (C-2); 78,2 (C-5'); 77,9 (C-3'); 75,5 (C-2'); 72,1 (C-15);
71,8 (C-4'); 66,4 (C-19); 62,7 (C-6'); 58,4 (C-9); 43,5 (C-1); 56,5 (C5); 40,0 (C-10); 39,6 (C-4); 39,5 (C-3); 39,5 (C-7); 28,1 (C-18); 25,5
(C-12); 25,1 (C-6); 23,3 (C-11); 17,5 (C-20).
• Hợp chất Andropanioside B (APT2)
Chất bột, màu trắng, độ quay cực [𝛼]25
𝐷 : -31,7 (c = 0,1; MeOH),
HR-ESI-MS: m/z 521,2718 [M+Na]+, 1H NMR (500 MHz, CD3OD):
 (ppm) 0,85 (3H, s, H-20);1,04 (3H, s, H-18); 3,19 (1H, dd, J = 8,0;
9,0 Hz, H-2'); 3,26-3,35 (3H, m, H-3',4',5');3,26 (1H, d, J = 9,5 Hz,
Ha-19); 3,46 (1H, dd, J = 5,5; 12,0 Hz, Ha-17); 3,69 (1H, dd, J = 3,5;
12,0 Hz, Hb-17); 3,70 (1H, dd, J = 5,5; 12,0 Hz, Ha-6'); 3,87 (1H, dd,
J = 2,0; 12,0 Hz, Hb-6'); 4,12 (1H, d, J = 9,5 Hz, Hb-19); 4,20 (1H, d,
J = 8,0 Hz, H-1'); 7,36 (1H, t, J = 1,5 Hz, H-14). 13C NMR (125MHz,
CD3OD):  (ppm) 177,0 (C-16); 147,7 (C-14); 134,7 (C-13); 105,1 (C1'); 78,3 (C-5'); 77,8 (C-3'); 75,3 (C-2'); 73,7 (C-19); 72,1 (C-15); 71,7
(C-4'); 66,3 (C-17); 62,8 (C-6'); 57,3 (C-5); 53,8 (C-9); 43,2 (C-8);
40,1 (C-1);39,3 (C-4); 39,1 (C-10); 37,3 (C-3); 32,5 (C-7); 28,1 (C11); 28,1 (C-12); 28,1 (C-18); 22,5 (C-6); 19,4 (C-2); 15,4 (C-20).
• Hợp chất Andrographic acid methyl ester (APT7)
Chất dầu, không màu, độ quay cực [𝛼]26
𝐷 : -36,9 (c = 0,04; MeOH),
HR-ESI-MS: m/z 401,1931 [M+Na]+, 1H NMR (CD3OD, 500MHz): δ

(ppm) 0,83 (3H, s, H-20); 1,19 (1H, dt, J = 5,0; 13,5 Hz, Ha-1); 1,20
(3H, s, H-18); 1,25 (1H, dd, J = 2,5; 13,0 Hz, H-5); 1,40 (1H, m, Ha6); 1,60 (1H, dt, J = 3,5; 13,5 Hz, Hb-1); 1,72 (1H, m, H-2); 2,08 (1H,
td, J = 5,0; 13,0 Hz, Ha-7); 2,43 (1H, m, H-9); 3,37 (1H, d, J = 11,0
Hz, Hb-19); 3,41 (1H, m, H-3); 3,70 (3H, s, 15-OMe); 4,14 (1H, d, J
= 11,0 Hz, Ha-19); 4,57 (1H, d, J = 1,5 Hz, Ha-17); 4,75 (1H, d, J =
1,5 Hz, Hb-17); 5,47 (1H, s, H-14); 6,11 (1H, d, J = 16,0 Hz, H-12);
6,31 (1H, dd, J = 10,0; 16,0 Hz, H-11). 13C NMR (CD3OD, 125 MHz):
δ (ppm) 175,2 (C-16); 168,4 (C-15);157,8 (C-13); 149,7 (C-8); 140,6
5


(C-11); 132,3 (C-12); 113,0 (C-14); 109,6 (C-17); 81,3 (C-3); 65,0 (C19); 62,4 (C-9); 55,9 (C-5); 51,7 (15-OMe); 43,8 (C-4); 39,9 (C-10);
39,4 (C-1); 37,8 (C-7); 28,9 (C-2); 24,4 (C-6);23,3 (C-18);16,3 (C-20)
• Hợp chất Pashanone glucoside (APT12)
Chất bột, màu vàng, độ quay cực [𝛼]26
𝐷 : -51,25 (c = 0,08; MeOH),
HR-ESI-MS: m/z 485,1414 [M+Na]+, 1H NMR (500 MHz, CD3OD):
 (ppm) 3,96 (3H, s, 7-OMe); 3,79 (3H, s, 6-OMe); 5,19 (1H, d, J =
7,0 Hz, H-1'); 6,58 (1H, s, H-8); 7,41 (1H, t, J = 9,0 Hz, H-4''); 7,42
(2H, dd, J = 2,0; 9,0 Hz, H-2'', H-6''); 7,74 (1H, d, J = 15,5 Hz, H-2);
7,76 (2H, t, J = 9,0 Hz, H-3'', H-5''); 8,12 (1H, d, J = 15,5 Hz, H-3).
13
C NMR (125MHz, CD3OD):  (ppm) 195,3 (C-4); 159,5 (C-7);
158,0 (C-5); 157,2 (C-9); 144,3 (C-2); 136,8 (C-1''); 129,1 (C-3);
132,8 (C-6); 131,3 (C-4''); 130,0 (C- 5''); 130,0 (C-3''); 129,9 (C-2'');
129,9 (C- 6''); 109,3 (C-10); 102,8 (C-1'); 92,8 (C-8); 78,9 (C-5'); 75,1
(C-2');78,5 (C-3');71,6(C-4');62,7 (C-6');61,0 (6-OMe);56,7 (7-OMe).
3.2. Phân lập các hợp chất từ loài Vân mộc hương (S. costus)
3.2.1. Phân lập các hợp chất
Phần này trình bày cụ thể các bước ngâm chiết và phân lập các

chất từ rễ của lồi vân mộc hương (Hình 3.2.1).

Hình 3.2.1. Sơ đồ phân lập các hợp chất sạch từ loài vân mộc hương

6


3.1.2. Thông số vật lý và dữ liệu phổ của các hợp chất phân lập từ
loài Vân mộc hương (S. costus)
Phần này trình bày thơng số vật lý và dữ kiện phổ của 16 hợp chất
sạch (SAL1-SAL16) phân lập được từ lồi vân mộc hương, trong đó
có 02 hợp chất mới (SAL1, SAL2).
• Hợp chất Saussucostusoside A (SAL1)
Chất bột, màu trắng, độ quay cực [𝛼]20
𝐷 : -23,57 (c = 0,014;
MeOH), HR-QTOF-MS: m/z 449,1953 [M+Cl]–, 1H NMR (CD3OD,
500MHz): δ (ppm) 0,78 (3H, s, H-14); 3,15 (1H, br d, J = 13,0 Hz, H5); 3,2 (1H, m, H-2'); 4,20 (1H, br s, H-3); 4,23 (2H, s, H-12); 4,26
(1H, d, J = 7,5 Hz, H-1'); 4,62 (1H, br s, Ha-15); 4,98 (1H, br s, Hb15); 5,16 (1H, br s, Ha-13); 5,22 (1H, d, Hb-13). 13C NMR (CD3OD,
125 MHz): δ (ppm) 157,6 (C-11); 152,2 (C-4); 110,0 (C-15); 108,7
(C-13); 102,1 (C-1ʹ); 83,4 (C-3); 78,3 (C-3ʹ); 78,0 (C-5ʹ); 75,2 (C-2ʹ);
75,0 (C-7); 71,8 (C-4ʹ); 63,1 (C-12); 62,9 (C-6ʹ); 39,6 (C-5); 37,1 (C9);36,9 (C-1);36,4(C-10);35,6 (C-6);32,8(C-8);29,3 (C-2);15,7(C-14).
• Hợp chất Saussucostusoside A (SAL2)
Chất bột, màu trắng, độ quay cực [𝛼]20
𝐷 : -35,0 (c = 0,012; MeOH),
HR-QTOF-MS: m/z 447,1813 [M+Cl]–, 1H NMR (CD3OD, 500MHz):
δ (ppm) 0,76 (3H, s, H-14); 2,58 (1H, brdd, J = 11,0; 11,5 Hz, H-7);
2,78 (1H, m, Hb-3); 3,16 (1H, dd, J = 7,5; 9,0 Hz, H-2'); 4,37 (1H, d,
J = 7,5 Hz; H-1'); 4,56 (1H, d, J = 1,5 Hz, Ha-15); 4,83 (1H, br s, Hb15); 5,13 (1H, br s, Ha-13); 5,67 (1H, d, Hb-13). 13C NMR (CD3OD,
125 MHz): δ (ppm) 178,0 (C-12); 149,6 (C-4); 149,6 (C-11); 114,9
(C-13); 108,4(C-15); 102,9(C-1ʹ); 78,1(C-5ʹ); 77,8(C-3ʹ); 76,7 (C-2);

75,1(C-2ʹ); 71,7(C-4ʹ); 62,8(C-6ʹ); 50,6 (C-5); 48,5 (C-1); 45,6 (C-3);
42,1 (C-9);41,4 (C-7);36,1 (C-10);30,8 (C-6); 27,9 (C-8); 17,6(C-14).
CHƯƠNG 4. KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN
4.1.Xác định cấu trúc hóa học của các hợp chất phân lập được từ
lồi Xun tâm liên (A. paniculata)
Phần này trình bày kết quả phân tích phổ và xác định cấu trúc hóa
học của 16 hợp chất được phân lập từ loài A. paniculata

APT1 Andropanioside A (mới)

APT2 Andropanioside B (mới)
7


APT3: Andrographiside

APT4: Neoandrograpolide

APT5: Andropanoside

APT6: 14-deoxy-11,12didehydroandrographiside

APT7: Andrographic acid
methyl ester (mới)

APT8: 19-O-β-D-glucopyranosylent-labda-8(17),13-dien-15,16,19triol

APT9: Andrograpanin

APT10: Andrographolide

APT11: Andropanolide

APT12 Pashanone glucoside (mới)

APT13: Andrographidine A

APT14: Andrographidine F

8


APT15: 6-epi-8-O-acetylAPT16: Curvifloruside F
harpagide
Dưới đây trình bày chi tiết phương pháp xác định cấu trúc của một
hợp chất mới.
5.1.1. Hợp chất APT1: Andropanioside A (hợp chất mới)

Hình 4.1a. Cấu trúc hóa học của APT1 và Phlogantholide A
Hợp chất APT1 thu được dưới dạng chất bột, màu trắng. Góc quay
cực riêng là [α]D25 = -15,25 (c = 0,05; MeOH). Phổ khối lượng phân
giải cao (HR-ESI-MS) xuất hiện píc ion giả phân tử [M+Na]+ tại m/z
519,2568; tính tốn cho cơng thức C26H40NaO9+ là 519,2565 đvC).
Như vậy, hợp chất APT1 có cơng thức phân tử là C26H40O9.

Hình 4.1b. Phổ HR-ESI-MS của APT1
Phổ NMR của hợp chất APT1 cho phép nhận định đây là một entlabdane diterpenoid glycoside. Phổ 1H NMR xuất hiện tín hiệu của hai
nhóm methyl bậc 3 tại δH 1,00 (3H, s, H3-18) và 0,93 (3H, s, H3-20),
tín hiệu của một nối đơi thế ba vị trí với proton olefin duy nhất tại δH 7,36
(1H, br s, H-14), tín hiệu của một nối đơi ngồi vịng dạng exomethylene

tại δH 4,67 (1H, s, Ha-17) và 4,91 (1H, s, Hb-17), tín hiệu của một nhóm
oxymethine tại δH 4,12 (1H, t, H-2), hai nhóm oxymethylene tại δH
9


4,17 (1H, d, Ha-19), 3,23 (1H, d, Hb-19) và 4,83 (2H, br s, H2-15).
Ngồi ra, phổ 1H NMR cịn xuất hiện tín hiệu của một đơn vị đường Dglucose với proton anome đặc trưng tại δH 4,34 (1H, d, J = 8,0 Hz, H-1′),
hằng số tương tác J lớn do hai proton H-1′, H-2′ ở vị trí diaxial, chứng tỏ
cấu hình của đơn vị đường là β.

Hình 4.1c. Phổ 1H NMR
Hình 4.1d. Phổ 13C NMR
giãn rộng của APT1
giãn rộng của APT1
13
Phổ C NMR xuất hiện tín hiệu của 26 nguyên tử carbon, trong
đó có 6 nguyên tử carbon sp3 đặc trưng cho một đơn vị đường Dglucose tại δC 104,9 (C-1′); 75,5 (C-2′); 77,9 (C-3′); 71,8 (C-4′); 78,2
(C-5′) và 62,7 (C-6′) và 20 nguyên tử carbon của aglycone, bao gồm
tín hiệu của 5 nguyên tử carbon sp2 và 15 nguyên tử carbon sp3. Năm
nguyên tử carbon sp2 bao gồm một carbon carbonyl tại δC 176,9 (C16) và 4 carbon olefin tại δC 148,8 (C-8); 134,8 (C-13); 147,6 (C-14)
và 107,8 ( C-17). Mười lăm nguyên tử carbon sp3 còn lại bao gồm tín
hiệu của hai carbon bậc bốn tại δC 39,6 (C-4) và 40,0 (C-10), một nhóm
oxymethine tại δC 78,7 (C-2), hai nhóm oxymethylene tại δC 72,1 (C15) và 66,4 (C-19), hai nhóm methine tại δC 56,5 (C-5) và 58,4 (C-9),
sáu nhóm methylene tại δC 43,5 (C-1); 39,5 (C-3); 25,1 (C-6); 39,5
(C-7); 23,3 (C-11) và 25,5 (C-12) và hai nhóm methyl tại δC 28,1 (C18) và 17,5 (C-20).
Phần khung aglycone xuất hiện tín hiệu của một vịng γ-lactone,
α,β khơng no tại δC 134,8 (C-13); 147,6 (C-14); 72,1 (C-15) và 176,9
(C-16) đồng thời các vị trí này cũng được xác định chắc chắn dựa vào
tương tác HMBC giữa H-14 với C-13, C-15, C-16, giữa H-15 (δH 4,83)
với C-13 (δC 134,8)/C-14 (δC 147,6)/C-16 (δC 176,9). Ngoài ra phổ

NMR của APT1 cũng xuất hiện tín hiệu của một nhóm oxymethylene
tại δC 66,4/δH 3,23 (1H, d, Ha-19); 4,17 (1H, d, Hb-19). Vị trí của chúng
10


được xác định dựa vào tương tác HMBC giữa H-17 (δH 4,67) với C-7
(δC 39,5)/C-8 (δC 148,8)/C-9 (δC 58,4), giữa H2-19 (δH 3,23/4,17) với
C-3 (δC 39,5)/C-4 (δC 39,6)/C-5 (δC 56,3).

Hình 4.1e. Phổ HSQC
Hình 4.1f. Phổ 1H-1H COSY
của APT1
giãn rộng của APT1
So sánh với hợp chất phlogantholide-A đã được phân lập từ loài
Phlogacanthus thyrsiflorus cho thấy APT1 xuất hiện thêm một đơn vị
đường tại vị trí C-2 qua tương tác HMBC giữa proton anome H-1′ (δH
4,34) với carbon oxymethine C-2 (δC 78,7), điều này được khẳng định
chắc chắn hơn dựa trên tương tác COSY giữa H-1/H-2/H-3, tương tác
HMBC giữa H3-20 (δH 0,93) với C-1 (δC 43,5); H3-18 (δH 1,00), H219 (δH 3,23/4,17) với C-3 (δC 39,5).
Phổ 1H-1H COSY cho thấy tương tác giữa CH2-1/H-2/CH2-3, giữa
H-5/CH2-6/CH2-7, giữa H-9/CH2-11/CH2-12, giữa H-14/CH2-15. Phổ
NOESY cho thấy tương tác giữa H3-18 (δH 1,00) với H-5 (δH 1,40),
giữa H-5 (δH 1,40) với H-9 (δH 1,69) chứng tỏ H-5, H-9 và H3-18 cùng
có dạng β. Tương tác giữa H2-19 (δH 3,23; 4,17) với H3-20 (δH 0,93)
nhưng không tương tác với H-2 (δH 4,12) chứng tỏ H2-19, H3-20 có
dạng α và H-2 có dạng β. Cấu hình H-2β cũng được xác định khi so
sánh với hợp chất 3-oxo-2β-hydroxy-14-deoxyandrographolide.

Hình 4.1g. Phổ HMBC
của APT1

Hình 4.1h. Phổ NOESY
giãn rộng của APT1
11


Hình 4.1i. Các tương tác HMBC, COSY, NOESY chính của APT1
Như vậy, tất cả các dữ kiện đã nêu, cấu trúc của hợp chất APT1
được xác định là một chất mới về nhóm thế như trong hình 4.1a và
được đặt tên là andropanioside A.
Bảng 4.1. Số liệu phổ NMR của APT1 và chất tham khảo
C #δC
δCa,b
HSQC δHa,c mult. (J=Hz)
HMBC
1
47,5 43,5 CH2
1,40 m/2,20 dd (1,5;14,0) 2, 3, 5
2
70,1 78,7 CH
4,12 t (3,5)
1'
3
40,3 39,5 CH
1,20 dd (3,0; 14,5)
4, 18, 19
2,30 dd (2,5; 14,5)
4
40,6 39,6 C
5

55,3 56,5 CH
1,40 m
6, 10, 19, 20
6
23,6 25,1 CH2
1,40 m / 1,87 m
7
38,0 39,5 CH2
2,00 m / 2,45 m
8
146,5 148,8 C
9
56,2 58,4 CH
1,69 m
10, 11
10 43,8 40,0 C
11 21,7 23,3 CH2
1,69 m / 1,81 m
8, 10
12 24,3 25,5 CH2
2,12 m/2,45 m
9, 13, 14, 16
13 134,3 134,8 C
14 144,3 147,6 CH
7,36 s
13, 15, 16
15 64,6 72,1 CH2
4,83 m
13, 14, 16
16 174,4 176,9 C

17 107,5 107,8 CH2
4,67 s / 4,91 s
7, 8, 9
18 27,2 28,1 CH3
1,00 s
3, 4, 5, 19
19 64,5 66,4 CH2
3,23d (11,0)/4,17d (11,0) 3, 4, 18
20 16,1 17,5 CH3
0,93 s
1, 5, 9, 10
1'
104,9 CH
4,34 d (8,0)
2
2'
75,5 CH
3,17 dd (8,0; 9,0)
3'
77,9 CH
3,33*
4'
71,8 CH
3,27 d (9,0)
5'
78,2 CH
3,33*
6'
62,7 CH2
3,65 dd (6,0; 12,0)

3,88 dd (2,0; 12,0)
#

δC của phlogantholide A trong CDCl3 [Barua A.K., Phytochemistry,
1985, 24, 2037-39], aCD3OD, b125MHz, c500MHz, *pic chồng chập
12


4.2. Xác định cấu trúc hoá học của các hợp chất phân lập được từ
loài Vân mộc hương (S. costus)
Phần này trình bày kết quả phân tích phổ và xác định cấu trúc hóa
học của 16 hợp chất sạch được phân lập từ loài vân mộc hương.

SAL1: Saussucostusoside A (mới)

SAL2: Saussucostusoside B (mới)

SAL3: 4α-Hydroxy-4βmethyldihydrocostol

SAL4: 11β,13-Dihydrosantamarin

SAL5: 11β,13-Dihydroxyreynosin β-D-glucoside

SAL6: Costunolide

SAL7: Picriside B

SAL8: 10β,14-Dihydroxy-11βHguai-4(15)-ene-12,6α-olide-14-O-βD-glucoside

SAL9: Dehydrocostuslactone

SAL10: 3β-[4-Hydroxymethacryloyloxy]-8αhydroxycostunolide

13


SAL11: 11β,13-Dihydrodehydrocostuslactone-8-O-β-Dglucoside

SAL12: Sausinlactone A

SAL13: 3α,8α-Dihydroxy-11βH11,13-dihydrodehydrocostuslactone

SAL14: Mokkolactone

SAL15: 8α-Hydroxy-11βH-11,13- SAL16:11β,13-Dihydrozaluzanin C
dihydrodehydro-costuslactone
Dưới đây trình bày chi tiết phương pháp xác định cấu trúc của một
hợp chất mới.
5.1.2. Hợp chất SAL1: Saussucostusoside A (hợp chất mới)

Hình 4.2a. Cấu trúc hóa học của SAL1, A, Youngiajaponicoside D
Hợp chất SAL1 thu được dưới dạng chất bột màu trắng. Góc quay
cực riêng là [α]D20 = -23,57 (c = 0,014; MeOH). Phổ khối lượng phân
giải cao (HR-QTOF-MS) xuất hiện píc ion giả phân tử [M+Cl]– tại m/z
449,1953, tính tốn cho cơng thức C21H34ClO8− là 449,1948 đvC). Như
vậy, hợp chất SAL1 có cơng thức phân tử C21H34O8 (Mw = 414).
14


Hình 4.2b. Phổ HR-QTOF-MS của SAL1

Các phổ H, 13C NMR của hợp chất SAL1 đã gợi ý đây là một
sesquiterpenoid glucoside với tín hiệu của một proton anome tại δH
4,26 (1H, d, J = 7,5 Hz, H-1′) gợi ý sự xuất hiện của một đơn vị đường
β-D-glucose, các tín hiệu trên phổ 13C NMR tại δC 102,1 (C-1′); 75,2
(C-2′); 78,3 (C-3′); 71,7 (C-4′); 78,0 (C-5′) và 62,9 (C-6′) là đặc trưng
cho đơn vị đường glucose, hằng số tương tác J của proton anome lớn
do hai proton H-1′, H-2′ ở vị trí diaxial, chứng tỏ cấu hình β của đơn vị
đường.
1

Hình 4.2c. Phổ 1H NMR
Hình 4.2d. Phổ 13C NMR
giãn rộng của SAL1
của SAL1
Phần aglycone xuất hiện tín hiệu của một nhóm oxymethine tại
[δC 83,4 (C-3)/δH 4,20], một oxycarbon bậc bốn tại [δC 75,0 (C-7)],
một nhóm oxymethylene tại [δC 63,1 (C-12)/δH 4,23], hai nhóm
exomethylene tại [δC 152,2 (C-4); 110,0 (C-15)/δH 4,62; 4,98 và δC
157,6 (C-11); 108,7 (C-13)/δH 5,16; 5,22], một nhóm methyl dạng
singlet tại [δC 15,7 (C-14)/δH 0,78], một carbon bậc bốn tại [δC 36,4
(C-10)], một nhóm methine tại [δC 39,6 (C-5)/δH 3,15], và năm nhóm
methylene tại [δC 36.9 (C-1)/δH 1,23; 1,84], [δC 29,3 (C-2)/δH 1,80;
2,00], [δC 35,6 (C-6)/δH 1,55; 1,6], [δC 32,8 (C-8)/δH 1,56; 1,89] và [δC
37,1 (C-9)/δH 1,30; 1,78].

15


Hình 4.2e. Phổ HSQC của SAL1
Hình 4.2f. Phổ COSY của SAL1

So sánh số liệu phổ NMR của SAL1 với hợp chất 3α,7α,12trihydroxy-eudesm-4-(15),-11-(13)-diene [137] nhận thấy các số liệu
phổ khá tương ứng nhau ngoại trừ sự xuất hiện thêm của một đơn vị
đường β-D-glucose gắn tại vị trí C-3 (δC 83,4) và nhóm
hydroxymethine thay bằng nhóm methylene ở C-2. Phổ HMBC cho
thấy tương tác giữa H-12 (δH 0,78) với C-7 (δC 75,0)/C-11 (δC
157,6)/C-13(δC 108,7) cũng như tương tác giữa H-13 (δH 5,16; 5,22)
với C-7 (δC 75,0)/C-12 (δC 63,1) đã khẳng định chắc chắn vị trí của
nhóm hydroxy tại C-7 và C-12. Vị trí của nhóm oxymethine tại C-3
cũng được xác định dựa trên tương tác HMBC giữa hai proton singlet
H-15 (δH 4,62; 4,98) với C-3 (δC 83,4), điều này được khẳng định chắc
chắn thêm qua tương tác COSY giữa CH2-1/CH2-2/H-3. Tương tác
HMBC giữa proton anome H-1ʹ (δH 4,26) với carbon oxymethine C-3
(δC 83,4) chứng tỏ vị trí của đơn vị đường β-D-glucose tại C-3.

Hình 4.2g: Phổ HMBC của SAL1 Hình 4.2h. Phổ NOESY của SAL1
So sánh với hợp chất 3α,7α,12-trihydroxyeudesm-4(15),11(13)diene (A) nhận thấy số liệu các phổ NMR, HMBC, COSY, NOESY
tại các vị trí C-6, C-7, C-8, C-11, C-12 và C-13 của SAL1 tương tự
nhau cho phép xác định cấu hình α của nhóm hydroxy tại C-7. Kết hợp
hợp chất so sánh (A) và tương tác NOESY giữa Hβ-6 (δH 1,64) với H14 (δH 0,78) và giữa Hβ-6 (δH 1,64) với H-12 (δH 4,23) chỉ ra cấu hình
16


β của Hβ-6, H-14 và H-12. Tương tác NOESY giữa H-3 (δH 4,20) với
Hα-2 (δH 2,00) và Hβ-2 (δH 1,80) nhưng không tương tác với H-5 (δH
1,94) chỉ ra cấu hình β của H-3, điều này cũng được khẳng định bởi
độ chuyển dịch hóa học tại C-3 (δC 83,4)/δH 4,20 (1H, br s).

Hình 4.2i. Các tương tác HMBC, COSY, NOESY chính của SAL1
Bảng 4.2. Số liệu phổ NMR của SAL1 và chất tham khảo
b

C aδC
δC
δC c,d HSQC δHc,e mult. (J = Hz)
1
51,9 37,6 36,9 CH2
1,23 m/1,84 m
2
68,9 29,2 29,3 CH
1,80 m/2,00 br dd (2,5;13,0)
3
47,8 83,2 83,4 CH2
4,20 br s
4
149,9 152,7 152,2 C
5
44,9 48,9 39,6 CH
3,15 br d (13,0)
6
36,3 31,4 35,6 CH2
1,55 m/1,64 dd (13,0; 13,5)
7
75,2 41,5 75,0 CH
8
32,9 28,8 32,8 CH2
1,56 m/1,89 m
9
37,5 42,4 37,1 CH2
1,30 m/1,78 m
10 36,2 37,2 36,4 C
11 157,9 149,3 157,6 C

12 63,5 172,2 63,1 C
4,23 s
13 109,4 122,4 108,7 CH2
5,16 br s/5,22 br s
14 17,3 16,8 15,7 CH3
0,78 s
15 108,5 110,2 110,0 CH2
4,62 br s/4,98 br s
103,0 102,1 CH
4,26 d (7,5)
1
75,7 75,2 CH
3,20*
2
78,8 78,3 CH
3,33*
3
71,9 71,8 CH
3,20*
4
78,0 78,0 CH2
3,09 m
5
63,1 62,9 CH2
3,60 dd (6,5; 12,0)
6
3,81 dd (2,0; 12,0)
a
δC của 3α,7α,12-trihydroxyeudesm-4(15),11(13)-diene (A) trong
CD3OD [Wang H.B., J. Nat. Prod., 2005, 68, 762-65], bδC của

youngiajaponicoside D trong CD3OD [Chen W., Planta Med., 2006,
72, 143-150], cCD3OD, d125 MHz, e500 MHz. *pic chồng chập
Như vậy, cấu trúc của hợp chất SAL1 được xác định là một chất
mới về nhóm thế như trong hình 4.2a là 3α-(β-D-gluco-pyranosyloxy)-eudesma-4(14), 11(13) dien-7α, 12-diol và được đặt tên là
saussucostusoside A.
17


4.3. Kết quả thử hoạt tính sinh học của các hợp chất phân lập được
4.3.1. Kết quả sàng lọc một số hoạt tính sinh học của các hợp chất
phân lập từ loài vân mộc hương (S. costus) và loài xuyên tâm liên
(A. paniculata)
Đánh giá hoạt tính ức chế sản sinh NO trên tế bào RAW264.7
được kích thích bởi LPS của 16 mẫu SAL1-16 của loài vân mộc hương
được thực hiện như mục 2.2.3
Bảng 4.3.1.1. % Ức chế sản sinh NO trên tế bào RAW264.7 được
kích thích bởi LPS của SAL1-16 tại nồng độ 30, 100 µM
Nồng độ
% Ức
Sai
% TB
Tên mẫu
(µM)
chếa
số
sống sót Sai số
Kiểm sốt
100,00
1,13 >100,00
0,15

LPS
0,00
0,90 100,00
0,13
30
21,33
0,72
>100,00
2,32
SAL1
100
23,70
0,72 >100,00
2,51
30
68,55
1,56
79,02
0,94
SAL2
100
82,39
1,04
58,39
2,04
30
44,03
1,06
>100,00
1,40

SAL3
100
77,36
0,87 >100,00
0,66
30
23,27
2,25
>100,00
2,11
SAL4
100
40,88
0,60 >100,00
0,49
30
43,13
1,93 >100,00
2,23
SAL5
100
27,01
1,97 >100,00
1,42
30
>
100,00
0,53
96,46
1,44

SAL6
100
93,84
0,40
5,66
1,34
30
11,37
0,72
>100,00
1,44
SAL7
100
46,92
0,20 >100,00
1,88
30
27,96
1,31 >100,00
2,77
SAL8
100
31,28
1,64 >100,00
1,84
30
93,36
0,20
>100,00
1,37

SAL9
100
99,34
1,25
44,87
0,45
30
96,86
0,20
35,42
0,23
SAL10
100
86,16
0,35
4,93
0,50
30
30,33
0,69 >100,00
2,87
SAL11
100
35,07
1,06 >100,00
1,47
30
44,65
0,35
>100,00

2,62
SAL12
100
78,62
2,61 >100,00
1,99
30
37,74
0,40
>100,00
1,68
SAL13
100
50,94
0,20 >100,00
1,38
30
59,12
1,22 >100,00
2,37
SAL14
100
77,99
0,40
91,53
1,64
30
38,99
1,83
>100,00

2,47
SAL15
100
80,50
0,69 >100,00
2,09
30
72,96
0,60
89,54
1,31
SAL16
100
91,19
0,20
60,18
0,17
0,3
25,85
2,12
86,47
0,21
Cardamoninb
3,0
86,93
0,96
71,80
0,51
b
Chất đối chứng dương; a Các thí nghiệm được tiến hành 3 lần

18


Kết quả đánh giá sơ bộ sự ảnh hưởng của 16 hợp chất (SAL1-16)
đến sự phát triển của tế bào RAW264.7 cho thấy, ở nồng độ 100 µM,
các hợp chất SAL2, 3, 6, 9, 10, 12-16 có khả năng ức chế >50% sự
sản sinh ra NO trong tế bào RAW264.7.
Đánh giá hoạt tính ức chế sự sinh sản NO trong tế bào RAW264.7
được kích thích bởi LPS của 14 hợp chất APT1-8, APT11-16 của loài
xuyên tâm liên được thực hiện như mục 2.2.3.
Bảng 4.3.1.2. % Ức chế sản sinh NO trên tế bào RAW264.7 được
kích thích bởi LPS của APT1-8, APT11-16 tại nồng độ 30, 100 µM
Nồng độ
% Ức
Sai
% TB
Tên mẫu
Sai số
(µM)
chếa
số
sống sót
Kiểm sốt
100,00
1,13 >100,00
0,15
LPS
0,00
0,90
100,00

0,13
30
25,16
1,22
>100,00
2,64
APT1
100
33,33
1,83
95,07
1,21
30
18,9
0,60
>100,00
1,
32
APT 2
100
35,10
1,00 >100,00
1,56
30
27,04
0,20 >100,00
1,97
APT3
100
32,70

0,53 >100,00
1,06
30
15,97
0,87
94,89
2,53
APT4
100
43,93
0,69
91,40
2,01
30
4,20
0,40
97,34
2,48
APT5
100
20,60
1,50
92,03
2,15
30
8,30
0,70
99,21
2,26
APT 6

100
32,90
1,30
96,74
1,98
30
28,93
1,40
98,89
2,23
APT7
100
31,45
0,92
91,37
1,48
30
28,30
0,53
91,46
2,31
APT8
100
30,19
0,53
90,03
2,27
30
88,68
1,31

34,95
1,24
APT11
100
90,57
0,20
12,65
1,01
30
96,99
1,93
APT12
100
49,06
1,64
90,14
1,96
30
37,74
0,42
>100,00
1,68
APT13
100
40,94
0,21 >100,00
1,34
30
29,12
1,32

>100,00
2,27
APT14
100
35,99
0,30
96,53
1,44
30
18,99
1,53
>100,00
2,17
APT15
100
30,50
0,19 >100,00
2,02
30
22,96
0,65
99,54
1,11
APT16
100
41,19
0,23
90,18
0,13
0,3

28,9
0,80
86,47
0,21
b
Cardamonin
3,0
89,9
0,20
71,80
0,51
b
Chất đối chứng dương; a Các thí nghiệm được tiến hành 3 lần

19


Kết quả sàng lọc cho thấy, ở nồng độ 30 và 100 µM, 13 hợp chất
(APT1-8, 12-16) có % ức chế <50%, duy nhất chỉ hợp chất APT11 có
khả năng ức chế >50% với giá trị là 88,69 ± 1,31 và 90,57 ± 0,20.
Đánh giá hoạt tính gây độc tế bào của 14 hợp chất APT1-8,
APT11-16 của loài xuyên tâm liên trên 05 dòng tế bào ung thư: tuyến
tiền liệt (LNCaP), gan (HepG2), biểu mô (KB), vú (MCF7) và da (SKMel-2) theo phương pháp thử hoạt tính gây độc tế bào in vitro được
thực hiện như mục 2.2.3.
Bảng 4.3.1.3. Kết quả sàng lọc hoạt tính gây độc tế bào của các hợp
chất APT1-8, APT11-16 trên năm dòng tế bào thử nghiệm
Hợp chất Nồng độ
% Ức chế sự phát triển của tế bào ung thưa
(µg/ml) LNCaP
HepG2

KB
MCF7 SK-Mel-2
APT1
100
18,32
12,60
17,77
19,23
21,32
20
10,65
5,77
15,38
11,02
7,38
APT2
100
4,85
6,16
1,16
0,04
4,70
20
-1,82
3,75
-6,72
-3,86
-8,11
APT3
100

11,56
12,54
6,16
16,25
10,48
20
6,02
2,96
4,70
9,04
4,71
APT4
100
10,61
8,54
6,67
11,57
12,74
20
3,22
4,76
4,64
9,89
1,70
APT5
100
2,65
6,32
0,19
8,23

3,03
20
-5,76
-0,27
-16,84
-1,45
-8,37
APT6
100
16,74
20,45
9,85
11,71
19,91
20
2,05
8,36
6,58
9,23
10,54
APT7
100
19,05
23,54
16,19
19,42
16,39
20
4,61
10,90

6,35
8,02
9,25
APT8
100
3,81
12,74
16,96
12,25
14,56
20
0,12
4,02
11,08
7,36
6,01
APT11
100
79,57
74,18
80,58
75,38
79,94
20
46,30
36,97
38,82
31,55
35,35
APT12

100
19,32
19,91
21,43
12,15
19,34
20
4,25
5,16
1,13
0,44
4,50
APT13
100
21,66
17,34
7,11
15,52
13,48
20
3,02
2,76
1,70
8,01
6,17
APT14
100
12,63
8,45
7,16

10,75
11,47
20
4,12
4,77
3,64
8,98
2,07
APT15
100
18,54
27,64
24,83
29,20
31,01
20
4,46
12,83
20,70
17,28
12,75
APT16
100
12,35
17,08
10,11
11,65
3,98
20
3,76

6,84
0,35
4,77
-1,65
b
Ellipticine
10
95,29
95,53
97,52
97,56
97,73
2
79,25
71,26
71,32
78,32
75,36
b
Chất đối chứng dương; a Các thí nghiệm được tiến hành 3 lần
Kết quả bảng 4.3.1.3. cho thấy, ở nồng độ 100μM duy chỉ có hợp
chất APT11 có % ức chế sự phát triển của năm dòng tế bào ung thư
thử nghiệm >50% với giá trị trong khoảng 74,18-80,58%.
20


Đánh giá hoạt tính kháng vi sinh vật kiểm định của hai dịch chiết
SAL và APT trên 08 chủng vi khuẩn (E. coli, S. typhi, P. mirabilis,
P. vulgaris, P. aeruginosa, S. aureus , B. subtilis , M. luteus) và 01
chủng nấm C. albicans được thực hiện như mục 2.2.3

Bảng 4.3.1.4. Kết quả sàng lọc hoạt tính kháng VSV của SAL/APT
Vịng kháng khuẩn (mm)
Chủng VSV
Gentamicin
SAL/APT SAL/APT SAL/APT
50 mg/ml 100mg/ml 200mg/ml
200g/ml
P. aeruginosa
100
0
0
0
M. luteus
45
60/45
75/80
80/70
E. coli
50
0
0
0
B. subtilis
50
0
0
10
P. mirabilis
40
0

0
0
S. typhi
50
0
0
0
P. vulgaris
50
0
0
0
S. aureus
130
35/25
45/35
45/35
Ciclopiroxolamine
10 g/ml
C. albicans
100
50/0
75/0
70/0
Kết luận từ bảng 4.3.1.4 cho thấy: Ở dải nồng độ 50-200 mg/ml,
dịch chiết SAL, APT có hoạt tính kháng khuẩn M. luteus cao hơn và
có hoạt tính kháng khuẩn S.aureus thấp hơn Gentamicin. Dịch SAL
có hoạt tính kháng nấm C.ablicans thấp hơn Ciclopirox olamine, APT
khơng có hoạt tính. Dịch SAL, APT khơng có hoạt tính kháng các vi
khuẩn thử nghiệm cịn lại.

Từ kết quả sàng lọc cho thấy các hợp chất phân lập từ hai loài vân
mộc hương và xuyên tâm liên có hoạt tính ức chế sản sinh NO và gây
độc tế bào, khơng có hoạt tính kháng vi sinh vật kiểm định. Do đó, các
chất này được tiếp tục thí nghiệm ở các nồng độ khác nhau và xác định
giá trị IC50 để đánh giá hoạt tính ức chế sản sinh NO và gây độc tế bào.
4.3.2. Kết quả thử hoạt tính ức chế sản sinh NO và gây độc tế bào
của các hợp chất phân lập từ loài vân mộc hương (S. costus) và loài
xuyên tâm liên (A. paniculata)
Bảng 4.3.2.1. Kết quả đánh giá hoạt tính ức chế sự sản sinh NO trên
tế bào RAW264.7 được kích thích bởi LPS của SAL2-16
Hợp chất
Giá trị IC50 (µM )a Hợp chất Giá trị IC50 (µM )a
SAL2
52,48 ± 1,25
SAL 12
27,29 ± 1,03
SAL 3
23,44 ± 0,94
SAL 13
64,57 ± 1,86
SAL6
7,08 ± 0,34
SAL 14
23,93 ± 0,92
SAL 9
33,88 ± 1,02
SAL 15
14,79 ± 1,09
SAL 10 b
2,40 ± 0,06

SAL 16
5,55 ± 0,24
Cardamonin
2,12
±
0,04
b
Chất đối chứng dương; a Các thí nghiệm được tiến hành 3 lần
21


Kết quả đánh giá hoạt tính ức chế sản sinh NO cho thấy các hợp
chất SAL6, 10, 16 thể hiện hoạt tính ức chế mạnh với các giá trị IC50
lần lượt là 7,08 ± 0,34; 2,40 ± 0,06 và 5,55 ± 0,24μM. Đáng chú ý, tác
dụng của hợp chất SAL10 tương đương với tác dụng của cardamonin
với giá trị IC50 là 2,12 ± 0,04μM. Các hợp chất SAL3, 12, 14, 15 có
hoạt tính ức chế trung bình với các giá trị IC50 từ 14,79 ± 1,09 đến
27,29 ± 1,03μM. Các hợp chất SAL2, 9, 13 có hoạt tính yếu với các
giá trị IC50 từ 33,88 ± 1,02 đến 64,57 ± 1,86μM. Các hợp chất khung
eudesmane (SAL1-5) và germacrene (SAL6-7) có tác dụng tương tự.
Hợp chất SAL10, với sự hiện diện của nhóm thế O- [4-hydroxy
methacrylate] tại C-3, cho thấy tác dụng ức chế mạnh nhất.
Bảng 4.3.2.2. % Ức chế sản sinh NO trên tế bào RAW264.7 được
kích thích bởi LPS của APT11 tại nồng độ 3, 10 µM
Nồng độ % ức chế Sai số
% TB
Tên mẫu
Sai số
(µM)
sống sót

3
51,09
0,90
68,67
1,06
APT11
10
65,99
1,25
64,18
0,17
Cardamonin
1
35,78
0,58
96,54
0,67
3
84,04
0,56
81,80
0,69
Kết quả bảng 4.3.2.2. cho thấy, ở nồng độ 3 và 10 µM, hợp chất
APT11 có % ức chế >50% sự sản sinh NO trên tế bào RAW264.7 với
giá trị là 51,09±0,90 và 65,99±1,25. Do đó, APT11 tiếp tục được thí
nghiệm để xác định giá trị IC50. Kết quả là hợp chất APT11 có hoạt
tính ức chế trung bình với giá trị IC50 là 13,41 ± 0,57μM.
Bảng 4.3.2.3. Kết quả đánh giá hoạt tính gây độc tế bào của hợp
chất APT11 trên năm dòng tế bào thử nghiệm ở nồng độ 4, 0,8μg/mL
Hợp

Giá trị IC50 (µg/ml)
chất
LNCaP
HepG2
KB
MCF7
SK-Mel-2
APT11 31,76±2,43 43,50±4,30 37,89±2,68 45,95±2,92 42,15±5,59
Ellipticine
0,45±0,07
0,48±0,08
0,46±0,02
0,43±0,06
0,51±0,07
Kết quả bảng 4.3.2.3. cho thấy, hợp chất APT11 thể hiện hoạt tính
trung bình trên tất cả năm dịng tế bào ung thư thử nghiệm với giá trị
IC50 từ 31,76 ± 2,43 đến 45,95 ± 2,92 μM.
KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ
KẾT LUẬN
Trong quá trình thực hiện luận án này, chúng tơi đã thu được các
kết quả nghiên cứu mới về loài Xuyên tâm liên (Andrographis
paniculata (Burm. f.) Nees) và Vân mộc hương (Saussurea costus
(Falc.) Lipsch.) ở Việt Nam như sau:
22


1. Nghiên cứu về thành phần hóa học
Sử dụng kết hợp các phương pháp sắc ký và phổ hiện đại đã phân
lập và xác định cấu trúc 32 hợp chất sạch từ hai loài Xuyên tâm liên
và Vân mộc hương. Cụ thể là:

❖ Từ phần trên mặt đất loài Xuyên tâm liên đã phân lập và xác
định cấu trúc 16 hợp chất (APT1-16) bao gồm 11 hợp chất diterpenoid
(APT1-11), 03 hợp chất flavonoid (APT12-14) và 02 hợp chất iridoid
(APT15-16). Trong đó:
• 04 hợp chất mới: được đặt tên là andropanoside A (APT1),
andropanoside B (APT2), andrographic acid methyl ester (APT7)
và pashanone glucoside (APT12).
• 12 hợp chất đã biết: andrographiside (APT3),
neoandrograpolide (APT4), andropanoside (APT5), 14-deoxy-11,12didehydroandrographiside (APT6), 19-O-β-D-glucopyranosyl-entlabda-8(17),13-dien-15,16,19-triol (APT8), andrograpanin (APT9),
andrographolide (APT10), andropanolide (APT11), andrographidine
A (APT13), andrographidine F (APT14), 6-epi-8-O-acetyl-harpagide
(APT15), curvifloruside F (APT16). Trong đó, APT15 lần đầu tiên
được phân lập từ lồi xuyên tâm liên (A. paniculata) ở Việt Nam.
❖ Từ rễ loài Vân mộc hương đã phân lập và xác định cấu trúc
16 hợp chất sesquiterpene (SAL1-16) bao gồm 05 hợp chất khung
eudesmane (SAL1-5), 02 hợp chất khung germacrane (SAL6-7), 9
hợp chất khung guiane (SAL8-16). Trong đó:
• 02 hợp chất mới: được đặt tên là saussucostusoside A
(SAL1) và saussucostusoside B (SAL2).
• 14 hợp chất đã biết: 4α-hydroxy-4β-methyldihydrocostol
(SAL3), 11β,13-dihydrosantamarin (SAL4), 11β,13-dihydroxyreynosin-β-D-glucoside (SAL5), costunolide (SAL6), picriside B
(SAL7), 10β,14-dihydroxy-11βH-guai-4(15)-ene-12,6α-olide-14-Oβ-D-glucoside (SAL8), dehydrocostuslactone (SAL9), 3β-[4hydroxymethacryloyloxy]-8α-hydroxycostunolide (SAL10), 11β,13dihydrodehydrocostuslactone-8-O-β-D-glucoside
(SAL11),
sausinlactone A (SAL12), 3α,8α-dihydroxy-11βH-11,13-dihydrodehydro-costuslactone (SAL13), mokkolactone (SAL14), 8αhydroxy-11βH-11,13-dihydrodehydro-costuslactone (SAL15), 11β,
sss13 -dihydrozaluzanin C (SAL16). Trong đó, SAL4, 5, 10 lần đầu
tiên được phân lập từ chi Saussrea DC ở Việt Nam và SAL8, 11-13,
15 lần đầu tiên được phân lập từ loài vân mộc hương ở Việt Nam.
23