BÁO CÁO KHOA HỌC : KẾT QUẢ TẠO PHÔI LỢN TRONG ỐNG NGHIỆM SỬ DỤNG MÔI TRƯỜNG NCSU-37 10%PFF. pot

NGUYỄN THỊ THOA – Kết quả tạo phôi lợn trong ống nghiệm

1

KẾT QUẢ TẠO PHÔI LỢN TRONG ỐNG NGHIỆM SỬ DỤNG
MÔI TRƯỜNG NCSU-37 10%PFF.
Nguyễn Thị Thoa,
*
Lưu Ngọc Anh, Vũ Thị Hương, Trần Sơn Hà,
Đỗ Văn Hương và Nguyễn Thị Hương
Phòng Thí nghiệm Trọng điểm Công nghệ Tế bào động vật - Viện Chăn nuôi

*Tác giả liên hệ: Nguyễn Thị Thoa - Phòng thí nghiệm trọng điểm công nghệ tế bào động vật
Viện Chăn nuôi - Thụy phương - Từ Liêm - Hà Nội
Tel: (04) 22.166.165 ; Fax: (04) 38.389.775; Email:
ABSTRACT
Porcine embryo production by in vitri fertilization of oocytes matured in vitro using NCSU – 37
supplemented with 10% porcine follicular fluid (PFF)
Porcine embryo in vitro production (IVP) systems included in vitro maturation (IVM) of oocytes and in vitro
fertilization (IVF) and their subsequent in vitro culture (IVC), have been carried out by the researchers in
National Institute of Animal Husbanry (NIAH). The study had been applied IVP procedures of Dr. Kazuhiro
Kikuchi et al. (National Institute of Agrobiological Resources, Department of Genetic Resources II, Japan). We
collected cumulus-oocyte complexes (COCs) of porcine ovaries from the slaughterhouses. Porcine COCs were
matured in IVM1 at 38.5
0
C in humidified condition of 5% CO
2
in air for 20-22h and then cultured in IVM2 for
24h. Only the oocytes with expanded cumulus cells were used for in vitro fertilization. The boar frozen semen
was used for porcine IVF procedure. The co-incubation for fertilization was carried out for 3 hours at 38.5

o
C
under 5% CO
2
. They were cultured in IVC1 medium supplemented with pyruvate and lactate from day 0 to day 2
then in IVC2 medium supplemented with Glucose from day 2 to 6 under 5% CO
2
at 38.5
o
C. There were some our
results. In total 1392 COCs were matured in IVM1 medium and IVM2 after 42-44 h. Collections of 915 oocytes
with expanded cumulus cell were used for in vitro fertilization. The fertilization rates were 63,49%, the
blastocyst formation rates on day 6 were 13,59% These results show that we can produce porcine embryos in
Vietnam.
Keywords: Porcine ovaries, cumulus-oocyte complexes (COCs) , frozen semen, IVM1, IVM2, Pig- FM, IVC1,
IVC2 medium.
ĐẶT VẤN ĐỀ
Tạo phôi lợn bằng phương pháp Thụ tinh ống nghiệm (TTON) được nghiên cứu từ những
năm đầu của thế kỷ 20, nhiều phòng thí nghiệm trên thế giới đã công bố khả năng sống của
phôi TTON phát triển đến giai đoạn lợn con sau khi cấy phôi cho lợn nhận. Sản xuất phôi
trong ống nghiệm cùng với cấy truyền phôi (CTP), đã khai thác tối đa tiềm năng sinh sản của
lợn cái, nâng cao hiệu quả sinh sản của những giống lợn cao sản đặc biệt có ý nghĩa cho việc
bảo tồn những giống lợn địa phương có nguy cơ tiệt chủng. Kỹ thuật sản xuất phôi trong ống
nghiệm đã trở thành một phần quan trọng trong thương mại tế bào sinh sản và đa dạng hoá
nguồn gen vật nuôi. Mặt khác, sản xuất phôi lợn trong ống nghiệm làm nguyên liệu cho
nghiên cứu cơ bản, tạo gia súc chuyển gen, nghiên cứu tế bào gốc.v.v… Người ta có thể sử
dụng công nghệ chuyển gen để cải thiện sức kháng bệnh tật, để thay đổi các đặc tính sinh
trưởng.
Ngày nay các nhà khoa học đang nghiên cứu để tạo ra mô hình lợn đối với nhiều bệnh khác
nhau bằng cách đưa gen của người vào và cố gắng thiết lập lợn như là một con cho các bộ

phận để chuyển vào người nhận. Kỹ thuật tạo phôi lợn kết hợp với CTP là cơ sở cho những
nghiên cứu này. Vì vậy chúng tôi tiến hành đề tài: Nghiên cứu tạo phôi lợn trong ống
nghiệm TTON sử dụng dịch nang trứng (PFF)’’ nhằm nghiên cứu ứng dụng thành công tạo
phôi lợn trong ống nghiệm sử dụng môi trường NCSU-37 10% PFF tại Việt Nam.
VẬT LIỆU VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU

VIỆN CHĂN NUÔI - Tạp chí Khoa học Công nghệ Chăn nuôi - Số 19-Tháng 8-2009


2

Vật liệu nghiên cứu
Buồng trứng lợn thu ở lò mổ, tinh lợn dạng cọng rạ đông lạnh, các loại môi trường, tủ nuôi
cấy, máy ly tâm, kính hiển vi soi nổi, bình ổn nhiệt, tủ vô trùng và các dụng cụ vô trùng khác
dùng một lần.
Phương pháp nghiên cứu
(Theo phương pháp của Kazuhiro KIKUCHI-and Yasuhiro Kawai. Viện KHNN, Nhật Bản)
Chuẩn bị các môi trường cho TTON
Môi trường Dulbecco Phosphate Buffered saline (Nagai và cs, 1988)
Môi trường khai thác trứng M-199 Air, (Nagai và cs, 1988)
Môi trường cơ bản NCSU (Petters và Wells, 1993)
Môi trường nuôi trứng chín NCSU -37 cho IVM (Funahashi và cs, 1996, Kikuchi và cs, 1999)
Môi trường hoạt hoá tinh trùng 199/PH 7,8 (Nagai và cs, 1988)
Môi trường Pig - FM cho TTON (Suzuki và cs, 2000)
Môi trường IVC1, IVC2 (Kikuchi và cs, 1999)
Thu buồng trứng từ lò mổ
Lợn sau khi giết thịt, ngay lập tức cắt buồng trứng rửa sạch và cho vào túi ni lông có chứa
dung dịch đệm Dulbecco Phosphate Buffered không có Ca và Mg (PBS-) bổ sung kháng
sinh, buộc chặt túi và cho vào phích nước 35˚C -38˚C, đưa về phòng thí nghiệm.
Thu tế bào trứng từ buồng trứng

Rửa sạch buồng trứng bằng dung dịch PBS (-), dùng kéo vô trùng cắt bỏ dây chằng rốn buồng
trứng, cho buồng trứng vào lọ môi trường PBS (-), giữ ấm ở 37˚C. dùng panh vô trùng lấy
buồng trứng cho vào đĩa petre θ 90, dùng dao nhọn hoặc xi lanh với kim 19 G thu trứng và
dịch trong nang trứng. Cho dịch nang trứng và tế bào trứng vào ống falcol giữ ấm trong bể ổn
nhiệt 37˚C sau 5-10 phút, hút phần trên để sản xuất dịch nang trứng (PFF), lấy phần căn phía
dưới, cho 10 ml PBS (có bổ sung kháng sinh) vào ống falcol rửa trứng.
Nuôi trứng chín trong ống nghiệm
Trứng sau khi thu được chuyển sang đĩa môi trường M- 119 air (Medium M199 powder with
Hanks´salts; Sigma Chemical. Co,st.Louis,Mo, USA, bổ sung bicarbonate; Hepes); dịch nang
trứng (PFF); Antibiotics (100 IU/ml penicilin G potasium (Sigma) và 0,1 mg/ml streptomycin
sulfate). Tìm trứng trên kính hiển vi soi nổi, chọn những trứng có tế bào Cumulus đầy đủ để
nuôi chín. Những tế bào trứng có tế bào Cumulus đầy đủ được rửa 3 lần trong môi trường
nuôi chín IVM1 (NCSU-37 bổ sung D- sobitol, D (+) Gluco, L-systein -Me, dịch nang trứng
(PFF), HCG, PMSG, dbc AMP). Sau đó, chuyển vào nuôi trong đĩa 4 giếng, mỗi giếng
500ml môi trường IVM1 cho 25-30 trứng, cho đĩa nuôi vào trong tủ nuôi (Incubator) trong
điều kiện 37˚C; 5% CO
2;
độ ẩm 99% trong 20-22 giờ. Chuyển trứng sang đĩa môi trường
IVM2 (NCSU-37, bổ sung D-sobitol, D (+) Gluco, L-systein -Me, PFF, Kháng sinh, không
có dbc-AMP và hormon) cho vào tủ nuôi (Incubator) ở 37˚C, 5% CO
2
độ ẩm 99% nuôi trong
20-24 giờ. Trứng sau khi nuôi chín trong NCSU-37/ PFF(IVM1,IVM2) những tế bào trứng
chín giãn nở được dùng cho thụ tinh ống nghiệm.
Hoạt hoá tinh trùng
Hoạt hoá tinh trùng bằng môi trường M:199-PH:7,6-7,7. Lấy 8ml môi trường 199, PH:7,6-7,8

NGUYỄN THỊ THOA – Kết quả tạo phôi lợn trong ống nghiệm

3

cho vào ống Falcol (1), lấy 200 l môi trường trong ống Falcol (1) cho vào ống Falcol (2),
ủ ấm cả 2 ống trong nước 37˚C. Lấy cọng rạ tinh đông lạnh ra khỏi bình nitơ cho vào nước
ấm 37˚C trong 30giây, cắt đầu cọng rạ cho tinh trùng vào ống Falcol (1) ly tâm 2000 v/phút
trong 2 phút, hút bỏ phần trên lấy phần cặn. Bổ sung 60µl 199- PH 7,6-7,7 ở ống Falcol (2)
cho vào ống Falcol (1) trộn đều, lấy 60µl cho vào đĩa 0.35mm phủ dầu khoáng cho vào tủ
incubator ủ trong 15 phút. Tính nồng độ tinh trùng cần cho thụ tinh, đếm số lượng tinh trùng
bằng buồng đếm Thoma pha loãng tinh trùng bằng môi trường Pig-FM điều chỉnh số lượng
tinh trùng (100.000 tinh trùng/1ml )
Thụ tinh ống nghiệm
Môi trường TTON Pig-FM có bổ sung caffeine anhydrous và BSA (fattyacid free - Sigma).
Tế bào trứng sau khi nuôi chín trong môi trường IVM2, chọn những trứng có tế bào Cumulus
phát triển rửa 3 lần trong môi trường Pig-FM, sau đó chuyển sang giọt (Pig-FM) và cho vào
tủ nuôi 38,5˚C có 5% CO
2
ẩm độ tối đa, lấy 10µl dung dịch tinh trùng đã hoạt hoá cho vào
mỗi giọt thụ tinh (Pig-FM đã có tế bào trứng). Tiến hành ủ tinh trùng và trứng trong 3 giờ ở
38,5˚C có 5% CO
2
ẩm độ tối đa.
Sau thụ tinh 3 giờ, rửa hợp tử giả định 3 lần trong môi trường IVC1 (IVC-Pyruvat lactac) để
loại bỏ những tế bào cumulus và tinh trùng bám vào màng trong suốt. Sau đó, hợp tử giả định
được truyền vào môi trường nuôi IVC-PyrLac nuôi ngày 0 đến ngày 2 và môi trường ICV2-
Gluco ngày 2 đến ngày 6 trong tủ nuôi cấy ở 38,5˚C có 5% CO
2
, ẩm độ 99%. Chúng tôi đánh
giá sự phát triển của trứng qua quan sát sự giãn nở của tế bào Cumulus, khả năng thụ tinh qua
sự hình thành 2 thể cực và phát triển đến 2-4 tế bào từ ngày 0-2, tỷ lệ phôi dâu và phôi nang
qua sự phát triển của phôi từ ngày thứ 2 đến ngày 6.
KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN

Tổng số 1392 tế bào trứng nuôi cấy trong môi trường IVM1 và IVM2 (NCSU/PFF) sau 44
giờ, có 915 tế bào trứng tế bào Cumulus giãn nở đều màu sáng được xác định là trứng chín đạt
65,73, 232 tế bào trứng loại 2 chiếm 16,66%; 159 tế bào trứng loại 3 là 11,42% được đánh giá
là trứng kém phát triển.
Bảng 1.Kết quả tế bào trứng chín nuôi trong ống nghiệm sau 44 giờ
Phân loại sự phát triển của tế bào trứng nuôi in vitro

sau 44 giờ

Đợt.TN
TS trứng
nuôi trong
ống nghiệm
Loại 1 Loại 2 loại 3
n. n. % N % n %
1
240
120
50,00 43 17,91 33 13,75
2
150
82
54,66 20 13,33 12 8,0
3 180
125
69,44 35 19,44 20 11,11
4 235 165 70,21 48 20,42 37 15,74
5 160
105
65,62 19 11,87 17 10,62

6 215
152
70,7 35 16,27 28 13,02
7 212
166
78,30 32 15,09 12 5,66
Tổng số 1392
915
65,73 232 16,66 159 11,42
Có 3 loại tế bào Cumulus
Loại 1: trên 80% tế bào Cumulus giãn nở đều, màu sáng
Loại 2: 65-80% tế bào Cumulus giãn nở đều, màu sáng

VIỆN CHĂN NUÔI - Tạp chí Khoa học Công nghệ Chăn nuôi - Số 19-Tháng 8-2009


4

Loại 3: dưới 65% tế bào Cumulus giãn nở đều, màu sáng
Bảng 2. Kết quả tạo phôi ống nghiệm
Đợt
TN
Trøng cho
TTON
Phôi 2- 4 tế bào
(Ngày 0-2)
Phôi ngày 6
sau thụ tinh
(n) (n) (n) % Phôi dâu (n) % Phôi nang (n) %
1

120 55 45,83 12 21,81 0 0
2
82 36 43,90 10 27,77 0 0
3
125 89 71,20 22 17,60 15 16,85

4
165 112 67,87 22 18,03 11 9,82
5
105 75 71,42 21 28,00 9 12.00

6
152 99 65,13 24 24.24 15 15,15

7
166 115 69,27 27 23,47 29 25,21

Tổng
915 581 63,49 138 23,75 79 13,59

Với 915 tế bào trứng loại 1 dùng cho thụ tinh ống nghiệm, chúng tôi thu được thu được 138
phôi dâu đạt (23,75%); 79 phôi nang, đạt tỉ lệ (13,59%)
Nuôi trứng chín in vitro trong môi trường NCSU-37 bổ sung dịch nang trứng (PFF)
PFF có vai trò quan trọng trong quá trình phát triển của trứng. Nhiều nghiên cứu cho thấy
trong PFF có các yếu tố như enzyme superoxide dismutase, peptide, các hormone steroid và
những yếu tố sinh trưởng đã kích thích sự giãn nở tế bào cumulus, sự chín của tế bào chất và
nhân.

Theo (Tatemoto và cs, 2004) cho rằng, hoạt tính enzyme superoxide dismutase trong
PFF có vai trò trong việc bảo vệ trứng chống lại các stress oxi hóa trong quá trình IVM.

Những yếu tố sinh trưởng, (như yếu tố sinh trưởng biểu mô) kích thích sự giãn nở của tế bào
cumulus và sự thành thục của trứng. (Yokoo và Sato, 2004) cho rằng sự giãn nở của các tế
bào Cumulus giúp cho noãn bào ngăn ngừa stress oxy hoá, đẩy nhanh tốc độ trứng thành thục.
Sự đa dạng các nhân tố peptide, các hormone steroid ngoại bào và̀ các tế bào cumulus đã làm
tăng khả năng chín nhân, tế bào chất của trứng và khả năng phát triển tiếp theo sau khi thụ
tinh. Theo (Yokoo và Sato, 2004) cho rằng, khả năng nuôi trứng chín có mối quan hệ chặt
chẽ với khả năng giãn nở tế bào Cumulus, sự giãn nở của các tế bào Cumulus đẩy nhanh tốc
độ thành thục của trứng và sự phân chia bình thường của hợp tử sau khi IVF.
Theo (Yoshida và cs, 1993) vai trò của PFF trong môi trường nuôi làm gia tăng tỉ lệ chín
nhân. Từ các nhận định trên cho thấy PFF có tác dụng rất lớn để nâng cao khả năng phát triển
của trứng lợn in vitro. Những tế bào trứng nuôi chín invitro sau 44 giờ đươc đánh giá bằng
nhiều phương pháp. Có thể nhuộm tế bào sau khi nuôi để kiểm tra sợi nhiễm sắc và cấu trúc
nhân. Có thể quan sát sự giãn nở khối tế bào cumulus qua kính hiển vi soi nổi sau khi nuôi 42-
44 giờ. Loại bỏ tế bào cumulus sau khi nuôi để quan sát sự hình thành thể cực.
Trong nghiên cứu này chúng tôi đánh giá trứng chín qua quan sát sự giãn nở và màu sáng của
khối tế bào Cumulus và một số lớp tế bào vành phóng xạ bám vào vành trong suốt trên kính
hiển vi soi nổi có độ phóng đại 400 lần. Tổng số 1392 tế bào trứng đem nuôi, có 915 tế bào
trứng chín đạt tỷ lệ 65,73% thấp hơn so với kết quả của (Suzuki và cs, 2006); (Tatemoto và
cs, 2004); tương ứng 65,73% so với 70,0% và 73 - 74%). Tỷ lệ trứng chín trong nghiên cứu
của chúng tôi chưa ổn định, dao động từ 50 - 78,30%. Kết quả này có thể do ảnh hưởng của
nhiều yếu tố, trong đó ảnh hưởng của việc sử dụng các mẻ dịch nang khác nhau có vai trò

NGUYỄN THỊ THOA – Kết quả tạo phôi lợn trong ống nghiệm

5

quan trọng. Theo (Rui-Hua Liu và cs, 2004), dich nang trứng trứng thu được ở những nang
lớn có hàm lượng estradiol cao hơn đáng kể so với dịch các nang nhỏ. Nồng độ progesterone
tồn tại trong dịch nang của nang lớn cũng cao hơn so với dịch nang từ nang trung bình và
nang nhỏ. Những yếu tố này ảnh hưởng đến sự phát triển của tế bào trứng.

Đánh giá kết quả tạo phôi in vitro
Với 915 tế bào trứng sau khi nuôi thành thục, cho thụ tinh ống nghiệm sau 3 giờ, loại bỏ tế
bào cumulus và nuôi hợp tử giả định trong môi trường IVC1 từ ngày 0-2 thu được 581 phôi 2-
4 tế bào đạt 63,49% và đến ngày thứ 6 thu được 138 phôi dâu là 23,75%; 79 phôi nang là
13,59%. Sau 7 đợt thí nghiệm, đợt 1 và 2 sau khi nuôi hợp tử giả định từ ngày 0-2 chuyển
sang môi trường IVC2 nuôi ngày 2-6 chỉ thu được phôi dâu, không thu được phôi nang. Ở 5
đợt thí nghiệm tiếp theo chúng tôi đã thu được phôi nang. Kết quả nghiên cứu của chúng tôi
còn thấp hơn so với kết quả của (Suzuki’s và cs, 2006) là 13,59% so với 19%.
Điều này, có thể do chất lượng dịch nang trứng ở các mẻ sản xuất khác nhau đã ảnh
hưởng đến sự giãn nở cumulus và ảnh hưởng đến kích thích sự thâm nhập của tinh trùng.
Nhiều nghiên cứu đã báo cáo quan sát qua kính hiển vi điện tử, những đám cumulus được
nuôi trong môi trường PFF đã tác động đến tình trạng tiền thâm nhập của tinh trùng và ảnh
hưởng đến số lượng và chất lượng phôi nang. Chúng tôi chọn những tế bào trứng chín cho thụ
tinh không những tránh được hiện tượng đa tinh trùng là nguyên nhân của bội thể bất bình
thường trong quá trình sản xuất phôi mà còn mang lại hiệu quả cao trong việc tạo phôi. Kết
quả sau 7 đợt thí nghiệm, chúng tôi đã sản xuất được 131 phôi dâu và 79 phôi nang.
KẾT LUẬN VÀ ĐỀ NGHỊ
Kết luận
Kết quả nghiên cứu khẳng định rằng sản xuất phôi in vitro từ tế bào trứng nuôi trong môi
trường NCSU- 37 với 10% PFF đã tạo phôi nang. Mặc dù, kết quả nghiên cứu còn thấp nhưng
đã chứng minh rằng chúng tôi có khả năng sản xuất phôi lợn in vitro tại Việt Nam.
Đề nghị
Tiếp tục được nghiên cứu những yếu tố ảnh hưởng nhằm nâng cao tỷ lệ thụ tinh ống nghiệm,
tỷ lệ phôi nang và phát triển đến lợn con sau khi cấy phôi cho lợn mẹ.
TÀI LIỆU THAM KHẢO
Funahashi H, Kim NH,StumpfTT, Cantley TC, Day BN, (1996). Presence of organic Osmolytes in maturation
medium enchances cytoplasmic maturation of porcince oocytes. Bio Reprod 1996; 54: p.1412-1419
Kikuchi K, Onishi A, Kashiwasaki N, Iwamoto M, Noguchi J, Kaneko H, Akita T, Nagai T, (2002). Successful
piglet production after transfer of blastocyst produced by a modified in vitro system. Biol Reprod
2002;66: p.1033-1041.

Kikuchi K, Kashiwasaki N, Noguchi J, Shimada A, Takahashi R, Hirabayashi M, Shino M, Ueda M, Kaneco H,
(1990). Developmental competence, after transfer to recipients of porcine oocytes matured, fertilized,
and cultured in vitro. Biology of Production 1999; 60: p. 336-340.
Nagai T,Takashi T, Masuda H, Shioya Y, Kuwayama M, Fukushima M, Iwasaki S and Hanada A, (1988).
In vitro fertilization of pig oocytes by frozen boar spermatozoa. J Reprod Fertil 1988; 84: p.585-591.
Peters RM, Wells .K.D, (1993). Culture of pig embryo. J Reprod Fertil Suppl 1993; 48: p.61-73.
Suzuki K, Erikson B. Shimizu H, Nagai T, Rodriguez-Martinez H, (2000). Effect of hyaluronan on monospermic
penetration of porcine oocytes fertilized in vitro. Int J Androl 2000; 23: p.13-21.

VIỆN CHĂN NUÔI - Tạp chí Khoa học Công nghệ Chăn nuôi - Số 19-Tháng 8-2009


6

Suzuki M, Misumi K, Manabu O, Noguchi, Kaneko H, Ohnuma K, Fuchimoto D, Onishi A, Iwamoto M, Saito
N, Nagai T, Kikuchi K, (2006). Successful piglet production by IVF of oocytes matured in vitro using
NSCU-37 supplemented with fetal bovine serum. Theriogenology 2006; 65: p.374 - 386.
Tatemoto H, Muto N, Sunagawa, Shinjo, Nagai N, (2004). Protection of porcine oocytes aganst cell Damage
caused by oxidative stress during in vitro maturation: Role of superoxide dismutase activity in porcine
follicular fluid. Biol Reprod 2004;71: p.1150-1157.
Yokoo M, Sato E, (2004).Cumulus-oocyte complex interactions during oocyte maturation. Int Rev Cytol 2004;
235: p.251-291.
Yoshida M, Mizoguchi Y, Ishiaki K, Kojima T, Nagai T, (1993). Birth of piglets derived from in vitro
fertilization of pigs oocytes matured in vitro. Theriogenology 1993; 39: p.1303-1311.

*Người phản biện: GS.TS. Nguyễn Mộng Hùng; Ths. Luu Công Khánh