Nghiên cứu thủy phân triglyceride trong dầu dừa để thu nhận các phân đoạn acid béo tự do có hoạt tính sinh học p4

CHƯƠNG 4

KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ

4.1 Kết luận
Về mặt khoa học
Luận án đã rút ra được những kết luận mới sau:
-

Bốn loại enzyme lipase được sử dụng để khảo sát quá trình thủy phân dầu dừa
VCO là chế phẩm enzyme PPL, enzyme Lypozyme TL 100L, enzyme
Lypozyme TL IM, đều đặc hiệu vị trí xúc tác sn-1,3 trên mạch triglyceride và
chế phẩm enzyme CRL khơng đặc hiệu vị trí xúc tác. Kết quả là, enzyme CRL
xúc tác phản ứng thủy phân dầu VCO có giá trị Km nhỏ nhất và vận tốc phản
ứng cực đại (Vmax) cao nhất trong bốn loại enzyme lipase khảo sát.

-

Hỗn hợp acid béo tự do (FFA tổng) thu được từ q trình thủy phân dầu VCO
có hoạt tính kháng khuẩn lên bốn loại vi khuẩn gồm Salmonella enteritidis
(ATCC 13076), Staphylococcus aureus (ATCC 25923), Bacillus subtilis
(ATCC 11774) và Escherichia coli (ATCC 25922). Sau khi tách phân đoạn hỗn
hợp FFA tổng thì khả năng kháng khuẩn của các phân đoạn không giống nhau,
thể hiện theo mức độ tăng dần như sau: FFA tổng < FFA2 < FFA1. Riêng
FFA3 khơng thể hiện hoạt tính kháng khuẩn lên cả bốn loại vi khuẩn trên.

-

Các phân đoạn acid béo trên có ảnh hưởng khác nhau đến trọng lượng và chỉ số
cholesterol của chuột giống Wistar được cho ăn chế độ giàu béo HFD như sau:
+ FFA1 giúp giảm trọng lượng và giảm chỉ số cholesterol tổng ở chuột ăn chế

độ HFD.
+ FFA2 giúp giảm trọng lượng và tăng chỉ số cholesterol tốt (HDL-cholesterol).
+ FFA3 không những làm tăng trọng lượng của chuột mà còn gây viêm gan.
Tuy nhiên, chỉ số cholesterol trong máu giảm tương đương với chuột đối chứng
không bệnh.

89


Về mặt ứng dụng
Luận án đã xác định được:
- Đã chọn được enzyme CRL thủy phân dầu VCO với tỉ lệ dầu/đệm: 1/5 (w/w), tỉ
lệ E/S: 5310U/g, pH 7 và nhiệt độ 40oC, sau 16 giờ xúc tác đạt mức độ thủy
phân lên đến 79,64% và hàm lượng MCFA được giải phóng đến 61,37%.
-

Ở nhiệt độ 145 – 150oC và áp suất 7,5mmHg, hỗn hợp acid béo tự do FFA1
chứa chủ yếu là các MCFA 97,31% được thu nhận. FFA2 được thu nhận ở cùng
áp suất trên nhưng với nhiệt độ cao hơn là 160 – 165oC, thành phần chủ yếu là
C12 chiếm tỉ lệ cao nhất trong hỗn hợp 76,49%. Phần cịn lại trong bình cầu là
FFA3 chứa chủ yếu các acid béo tự do mạch dài LCFA 85,86%.

4.2 Kiến nghị
Cần có các nghiên cứu tiếp theo để:
-

Xác định được cơ chế kháng khuẩn của MCFA thu nhận từ dầu VCO.

-

Xác định liều lượng sử dụng MCFA để tránh hiện tượng “gan thối hóa mỡ
mức độ vừa” nhưng vẫn đảm bảo giảm trọng lượng và giảm chỉ số cholesterol
trên chuột.

90


DANH MỤC CƠNG TRÌNH ĐÃ CƠNG BỐ
Tạp chí quốc tế
1. Van T.A. Nguyen, Truong D. Le, Hoa N. Phan, and Lam B. Tran, “Antibacterial
Activity of Free Fatty Acids from Hydrolyzed Virgin Coconut Oil Using Lipase from
Candida rugosa,” J. Lipids, vol. 2017, pp. 1–7, 2017. (Scopus)
2. Van T.A. Nguyen, Truong D. Le, Hoa N. Phan, and Lam B. Tran, “Hydrolysis
Activity of Virgin Coconut Oil Using Lipase from Different Sources,” Scientifica, vol.
2018, pp. 1–7, 2018. (Scopus)
3. Van T. A. Nguyen, Truong D. Le, Hoa N. Phan, and Lam B. Tran, “Isolating free
fatty acid from virgin coconut oil using lipase from different sources,” Jurnal
Teknologi, vol. 3, pp. 55–59, 2018. (Scopus)
Tạp chí trong nước
4. Van T.A. Nguyen, Tuan M. Pham, Duy H. Truong, and Hoa N. Phan, “Antibacterial
activity of hydrolyzed virgin coconut oil by immobilized lipase,” Journal of Science
and Technology, vol. 54, 2016.
Kỷ yếu hội nghị quốc tế
1. Van T. A. Nguyen, Hoa N. Phan, and Lam B. Tran, "Enzymatic hydrolysis of
coconut oil using lipases from Candida rugosa and porcine pancreas", The 2nd
International Conference on Chemical Engineering, Food and Biotechnology 2015,
ISBN: 978-604-63-1598-8.
2. Van T. A. Nguyen, Hoa N. Phan, and Lam B. Tran, "Hydrolysis of virgin coconut
oil using free and immobilized lipase from Apergillus Oryzae" proceeding of the 2016
International Conference on Advanced Technology and Sustainable Development,

ISBN: 978-604-920-040-3.

91


TÀI LIỆU THAM KHẢO
[1]

A. M. Marina, Y. B. Che Man, S. A. H. Nazimah, and I. Amin, “Chemical
properties of virgin coconut oil,” JAOCS, J. Am. Oil Chem. Soc., vol. 86, no. 4,
pp. 301–307, 2009.

[2]

F. M. Dayrit, O. E. . Buenafe, E. T. Chainani, and I. M. De Vera, “Analysis of
Monoglycerides, Diglycerides, Sterols, and Free Fatty Acids in Coconut (Cocos
nucifera L.) Oil by 31P NMR Spectroscopy,” J. Agric. Food Chem, vol. 56. pp.
5765–5769, 2008.

[3]

A. M. Marina, Y. B. Che Man, and I. Amin, “Virgin coconut oil: emerging
functional food oil,” Trends Food Sci. Technol., vol. 20, no. 10, pp. 481–487,
2009.

[4]

APCC, “APCC standards for virgin coconut oil,” APCC, pp. 5–6, 2009.

[5]

E. V. Carandang, “Health benefits of virgin,” Indian coconut J., vol. 38, no. 9, p.
8, 2008.

[6]

V. P. Dia, V. V Garcia, R. C. Mabesa, and E. M. Tecson-mendoza,
“Comparative Physicochemical Characteristics of Virgin Coconut Oil Produced
by Different Methods,” Philipp. Agric. Sci., vol. 88, no. 4, pp. 462–475, 2005.

[7]

K. G. Nevin and T. Rajamohan, “Beneficial effects of virgin coconut oil on lipid
parameters and in vitro LDL oxidation,” Clin. Biochem., vol. 37, pp. 830–835,
2004.

[8]

F. M. Dayrit, “The Properties of Lauric Acid and Their Significance in Coconut
Oil,” J. Am. Oil Chem. Soc., vol. 92, no. 1, pp. 1–15, 2014.

[9]

T. Karupaiah and K. Sundram, “Effects of stereospecific positioning of fatty
acids in triacylglycerol structures in native and randomized fats: A review of
their nutritional implications,” Nutr. Metab., vol. 4, pp. 1–17, 2007.

[10] M.-P. St-Onge and P. J. H. Jones, “Recent Advances in Nutritional Sciences
Physiological Effects of Medium- Chain Triglycerides  : Potential of Obesity,”
Clin. Trials, vol. 132, pp. 329–332, 2002.

[11] M. Harini and O. P. Astirin, “Blood cholesterol levels of hypercholesterolemic
rat (Rattus norvegicus) after VCO treatment,” Nusant. Biosci., vol. 1, no. 2, pp.
92


53–58, 2009.
[12] J. H. Bragdon and A. Karmen, “The fatty acid composition of chylomicrons of
chyle and serum following the ingestion of different oils,” J. Lipid Res., vol. 1,
no. 2, 1959.
[13] G. B. McDonald, D. R. Saunders, M. Weidman, and L. Fisher, “Portal venous
transport of long-chain fatty acids absorbed from rat intestine,” Am. J. Physiol.
Liver Physiol., vol. 239, no. 3, pp. G141–G150, 1980.
[14] G. Göransson, “The Metabolism of Fatty Acids in the Rat III. Arachidic Acid,”
Acta Physiol. Scand., vol. 63, no. 3, pp. 385–390, 1965.
[15] K. D. Garlid, D. E. Orosz, M. Modrianský, S. Vassanelli, and P. Jezek, “On the
mechanism of fatty acid-induced proton transport by mitochondrial uncoupling
protein,” J. Biol. Chem., vol. 271, no. 5, pp. 2615–2620, 1996.
[16] M. DebMandal and S. Mandal, “Coconut (Cocos nucifera L.: Arecaceae): In
health promotion and disease prevention,” Asian Pac. J. Trop. Med., vol. 4, no.
3, pp. 241–247, 2011.
[17] C. B. Huang, Y. Alimova, T. M. Myers, and J. L. Ebersole, “Short- and
medium-chain

fatty

acids

exhibit

antimicrobial

activity

for

oral

microorganisms,” Arch. Oral Biol., vol. 56, no. 7, pp. 650–654, 2011.
[18] S. A. Kim and M. S. Rhee, “Highly enhanced bactericidal effects of medium
chain fatty acids (caprylic, capric, and lauric acid) combined with edible plant
essential oils (carvacrol, eugenol, b-resorcylic acid, trans-cinnamaldehyde,
thymol, and vanillin) against Escherichia coli O1,” Food Control, vol. 60, pp.
447–454, 2016.
[19] G. Bergsson, Ĩ. Steingrímsson, and H. Thormar, “Bactericidal effects of fatty
acids and monoglycerides on Helicobacter pylori,” Int. J. Antimicrob. Agents,
vol. 20, no. 4, pp. 258–262, 2002.
[20] M. Shilling, L. Matt, E. Rubin, M. P. Visitacion, N. A. Haller, S. F. Grey, and C.
J. Woolverton, “Antimicrobial Effects of Virgin Coconut Oil and Its MediumChain Fatty Acids on Clostridium difficile,” J. Med. Food, vol. 16, no. 12, pp.
1079–1085, 2013.
[21] C. Q. Sun, C. J. O’Connor, and A. M. Roberton, “Antibacterial actions of fatty

93


acids and monoglycerides against Helicobacter pylori,” FEMS Immunol. Med.
Microbiol., vol. 36, no. 1–2, pp. 9–17, 2003.
[22] B. Shino, F. C. Peedikayil, S. R. Jaiprakash, G. Ahmed Bijapur, S. Kottayi, and
D. Jose, “Comparison of Antimicrobial Activity of Chlorhexidine, Coconut Oil,
Probiotics, and Ketoconazole on Candida albicans Isolated in Children with
Early Childhood Caries: An in Vitro Study,” Scientifica (Cairo)., vol. 2016,

2016.
[23] G. Parfene, V. Horincar, A. K. Tyagi, A. Malik, and G. Bahrim, “Production of
medium chain saturated fatty acids with enhanced antimicrobial activity from
crude coconut fat by solid state cultivation of Yarrowia lipolytica,” Food Chem.,
vol. 136, no. 3–4, pp. 1345–1349, 2013.
[24] J. Salimon, B. M. Abdullah, and N. Salih, “Hydrolysis optimization and
characterization study of preparing fatty acids from Jatropha curcas seed oil,”
Chem. Cent. J., vol. 5, no. 1, pp. 67–75, 2011.
[25] M. T. S. Syaima, K. H. Ong, I. Mohd Noor, M. I. M. Zamratul, S. A. Brahim,
and M. M. Hafizul, “The synthesis of bio-lubricant based oil by hydrolysis and
non-catalytic of palm oil mill effluent (POME) using lipase,” Renew. Sustain.
Energy Rev., vol. 44, pp. 669–675, 2015.
[26] L. S. Chua, M. Alitabarimansor, C. T. Lee, and R. Mat, “Hydrolysis of virgin
coconut oil using immobilized lipase in a batch reactor,” Enzyme Res., vol.
2012, 2012.
[27] A. A. Mendes, P. C. Oliveira, and H. F. De Castro, “Properties and
biotechnological applications of porcine pancreatic lipase,” J. Mol. Catal. B
Enzym., vol. 78, pp. 119–134, 2012.
[28] K. C. Santos, D. M. J. Cassimiro, M. H. M. Avelar, D. B. Hirata, H. F. de
Castro, R. Fernández-Lafuente, and A. A. Mendes, “Characterization of the
catalytic properties of lipases from plant seeds for the production of
concentrated fatty acids from different vegetable oils,” Ind. Crops Prod., vol. 49,
pp. 462–470, 2013.
[29] R. G. Jensen, F. A. DeJong, and R. M. Clark, “Determination of lipase
specificity,” Lipids, vol. 18, no. 3, pp. 239–252, 1983.

94


[30] R. G. Jensen, “Characteristics of the lipase from the mold, Geotrichum

candidum: A review,” Lipids, vol. 9, no. 3, pp. 149–157, 1974.
[31] M. W. Baillargeon, “Purification and specificity of lipases from Geotrichum
candidum,” Lipids, vol. 25, no. 12, pp. 841–848, 1990.
[32] G. Benzonana and S. Esposito, “On the positional and chain specificities of
Candida cylindracea lipase,” Biochim. Biophys. Acta (BBA)/Lipids Lipid Metab.,
vol. 231, no. 1, pp. 15–22, 1971.
[33] G. S. Hassing, “Biochimica et biophysica acta bba 66367 381 partial purification
and some properties of a lipase from Corynebacterium Acnes,” vol. 242, no. 197
I, pp. 381–394.
[34] J. Rollof, S. Å. Hedström, and P. Nilsson-Ehle, “Positional specificity and
substrate preference of purified Staphylococcus aureus lipase,” Biochim.
Biophys. Acta (BBA)/Lipids Lipid Metab., vol. 921, no. 2, pp. 370–377, 1987.
[35] V. R. Murty, J. Bhat, and P. K. A. Muniswaran, “Hydrolysis of oils by using
immobilized lipase enzyme: A review,” Biotechnology and Bioprocess
Engineering, vol. 7, no. 2. pp. 57–66, 2002.
[36] A. Sharma, S. P. Chaurasia, and A. K. Dalai, “Enzymatic hydrolysis of cod liver
oil for the fatty acids production,” Catal. today, vol. 207, pp. 93–100, 2013.
[37] L. Freitas, T. Bueno, V. H. Perez, J. C. Santos, and H. F. de Castro, “Enzymatic
hydrolysis of soybean oil using lipase from different sources to yield
concentrated of polyunsaturated fatty acids,” World J. Microbiol. Biotechnol.,
vol. 23, no. 12, pp. 1725–1731, 2007.
[38] D. T. Raspe, L. Cardozo Filho, and C. da Silva, “Effect of additives and process
variables on enzymatic hydrolysis of macauba kernel oil (Acrocomia aculeata),”
Int. J. Chem. Eng., vol. 2013, 2013.
[39] B. Zou, Y. Hu, D. Yu, J. Xia, S. Tang, W. Liu, and H. Huang, “Immobilization
of porcine pancreatic lipase onto ionic liquid modified mesoporous silica SBA15,” Biochem. Eng. J., vol. 53, no. 1, pp. 150–153, 2010.
[40] W.-J. Ting, K.-Y. Tung, R. Giridhar, and W.-T. Wu, “Application of binary
immobilized Candida rugosa lipase for hydrolysis of soybean oil,” J. Mol. Catal.
B Enzym., vol. 42, no. 1, pp. 32–38, 2006.

95


[41] M. C. P. Zenevicz, A. Jacques, A. F. Furigo, J. V. Oliveira, and D. de Oliveira,
“Enzymatic hydrolysis of soybean and waste cooking oils under ultrasound
system,” Ind. Crops Prod., vol. 80, pp. 235–241, 2016.
[42] S. Nandi, S. Gangopadhyay, and S. Ghosh, “Production of medium chain
glycerides from coconut and palm kernel fatty acid distillates by lipasecatalyzed reactions,” Enzyme Microb. Technol., vol. 36, no. 5–6, pp. 725–728,
2005.
[43] Novozyme, “Novozymes Lipase Products,” no. 3, pp. 3–10.
[44] Sigma Aldrich, “Sigma Quality Control Test Procedure,” no. L, pp. 1–5, 1995.
[45] C. Subramani, A. Rajakkannu, A. Rathinam, S. Gaidhani, I. Raju, and D. V.
Kartar Singh, “Anti-atherosclerotic activity of root bark of Premna integrifolia
Linn. in high fat diet induced atherosclerosis model rats,” J. Pharm. Anal., vol.
7, no. 2, pp. 123–128, 2017.
[46] F. Fraschini, G. Demartini, and D. Esposti, “Pharmacology of silymarin,” Clin.
Drug Investig., vol. 22, no. 1, pp. 51–65, 2002.
[47] Y. Shimada, N. Fukushima, H. Fujita, Y. Honda, A. Sugihara, and Y. Tominaga,
“Selective hydrolysis of borage oil with Candida rugosa lipase: two factors
affecting the reaction,” J. Am. Oil Chem. Soc., vol. 75, no. 11, pp. 1581–1586,
1998.
[48] K. L. Nyam, C. P. Tan, O. M. Lai, K. Long, and Y. B. Che Man,
“Physicochemical properties and bioactive compounds of selected seed oils,”
LWT - Food Sci. Technol., vol. 42, no. 8, pp. 1396–1403, 2009.
[49] TCVN 4884:2001, “Vi sinh vật học - Hướng dẫn chung về định lượng vi sinh
vật - Kỹ thuật đếm khuẩn lạc ở 30oC.” 2001.
[50] CLSI, Performance standards for antimicrobial disk susceptibility tests  ;
approved standard, vol. 32, no. 1. 2012.
[51] Y. Guo, S. Wang, Y. Wang, and T. Zhu, “Silymarin improved diet-induced liver
damage and insulin resistance by decreasing inflammation in mice,” Pharm.

Biol., vol. 54, no. 12, pp. 2995–3000, 2016.
[52] Tran Gia Buu, D. S. Mai, and L. N. T. Tram, “Amelioration of Single Clove
Black Garlic Aqueous Extract on Dyslipidemia and Hepatitis in Chronic Carbon

96


Tetrachloride Intoxicated Swiss Albino Mice,” Int. J. Hepatol., vol. 2018, pp. 1–
9, 2018.
[53] Centers for Disease Control and Prevention, “Laboratory procedure manual:
total cholesterol, HDL-cholesterol, triglycerides, and LDL-cholesterol,” pp. 1–
23, 2004.
[54] G. Court, “LDL Assay Reagents , HDL / LDL Calibrator Safety Data Sheet
1034 LDL Assay Reagents , Calibrator Safety Data Sheet 1034,” vol. 77, no. 58,
2015.
[55] B. Unicel and D. Synchron, “Laboratory Procedure Manual Alanine Amino
Transferase ( ALT ),” pp. 1–9, 2008.
[56] A. Aminotransferase, “Aspartate Aminotransferase ( AST ) in Refrigerated
Serum – NHANES 2001-2002 Aspartate Aminotransferase ( AST ) in
Refrigerated Serum – NHANES 2001-2002,” pp. 1–8, 2002.
[57] Akira Asai and Teruo Miyazawa, “Dietary Curcuminoids Prevent High- Fat Diet
– Induced Lipid Accumulation in Rat Liver and Epididymal Adipose Tissue,” J.
Nutr., vol. 131, no. 11, pp. 2932–2935, 2001.
[58] D. Goswami, J. K. Basu, and S. De, “Optimization of process variables in castor
oil hydrolysis by Candida rugosa lipase with buffer as dispersion medium,”
Biotechnol. Bioprocess Eng., vol. 14, no. 2, pp. 220–224, 2009.
[59] S. N. Jordan and G. J. Mullen, “Enzymatic hydrolysis of organic waste materials
in a solid-liquid system,” Waste Manag., vol. 27, no. 12, pp. 1820–1828, 2007.
[60] L. Tang, J. N. Hu, X. M. Zhu, L. P. Luo, L. Lei, Z. Y. Deng, and K. T. Lee,
“Enzymatic Interesterification of Palm Stearin with Cinnamomum camphora

Seed Oil to Produce Zero-trans Medium-Chain Triacylglycerols-Enriched
Plastic Fat,” J. Food Sci., vol. 77, no. 4, pp. 454–460, 2012.
[61] C. Zhao, B. Ge, J. De Villena, R. Sudler, E. Yeh, S. Zhao, D. G. White, and D.
Wagner, “Prevalence of Campylobacter spp., Escherichia coli, and Salmonella
Serovars in Retail Chicken, Turkey, Pork, and Beef from the Greater
Washington, D.C., Area,” Appl Microbiol, vol. 67, no. 12, pp. 5431–5436, 2001.
[62] S. Sharma, S. Gangal, and A. Rauf, “Lipase mediated hydrolysis of Mimusops
elengi and Parkinsonia aculeata seed oils for the determination of positional

97


distribution of fatty acids,” Ind. Crops Prod., vol. 30, no. 2, pp. 325–328, 2009.
[63] G. Zhou, G. Chen, and B. Yan, “Two-step biocatalytic process using lipase and
whole cell catalysts for biodiesel production from unrefined jatropha oil,”
Biotechnol. Lett., vol. 37, no. 10, pp. 1959–1963, 2015.
[64] E. Pereira, H. De Castro, F. De Moraes, and G. Zanin, “Kinetic studies of lipase
from Candida rugosa,” Appl. Biochem. Biotechnol., vol. 91–93, pp. 739–752,
2001.
[65] L. J. Pham, E. P. Casa, M. A. Gregorio, and D. Y. Kwon, “Triacylglycerols and
regiospecific fatty acid analyses of Philippine seed oils,” J. Am. Oil Chem. Soc.,
vol. 75, no. 7, pp. 807–811, 1998.
[66] J. Kabara and D. Swieczkowski, “Fatty acids and derivatives as antimicrobial
agents,” Antimicrob. Agents Chemother., vol. 2, no. 1, pp. 23–28, 1972.
[67] A. P. Desbois and V. J. Smith, “Antibacterial free fatty acids: Activities,
mechanisms of action and biotechnological potential,” Appl. Microbiol.
Biotechnol., vol. 85, no. 6, pp. 1629–1642, 2010.
[68] O. O.S, “Anti-hyperlipidemic and biochemical effect of extract of Tulbaghia
violacea rhizomes on high cholesterol diet fed rats,” African J. Biotechnol., vol.
11, no. 70, pp. 13498–13505, 2012.

[69] J. H. BRAGDON and A. KARMEN, “The fatty acid composition of
chylomicrons of chyle and serum following the ingestion of different oils,” J.
Lipid Res., vol. 1, no. 2, 1959.
[70] B. Wang, L. Li, J. Fu, P. Yu, D. Gong, C. Zeng, and Z. Zeng, “Effects of LongChain and Medium-Chain Fatty Acids on Apoptosis and Oxidative Stress in
Human Liver Cells with Steatosis,” J. Food Sci., vol. 81, no. 3, pp. H794–H800,
2016.
[71] E. Lopez-Huertas, “Health effects of oleic acid and long chain omega-3 fatty
acids (EPA and DHA) enriched milks. A review of intervention studies,”
Pharmacol. Res., vol. 61, no. 3, pp. 200–207, 2010.
[72] C. Beermann, J. Jelinek, T. Reinecker, A. Hauenschild, G. Boehm, and H. U.
Klor, “Short term effects of dietary medium-chain fatty acids and n-3 long-chain
polyunsaturated fatty acids on the fat metabolism of healthy volunteers,” Lipids

98


Heal. Dis, vol. 2, p. 10, 2003.
[73] Y. Liu, Y. Zhang, X. Zhang, Q. Xu, X. Yang, and C. Xue, “Medium-chain fatty
acids reduce serum cholesterol by regulating the metabolism of bile acid in
C57BL/6J mice,” Food Funct., vol. 8, no. 1, pp. 291–298, 2017.
[74] M. J. J. Ronis, J. N. Baumgardner, N. Sharma, J. Vantrease, M. Ferguson, Y.
Tong, X. Wu, M. A. Cleves, and T. M. Badger, “Medium chain triglycerides
dose-dependently prevent liver pathology in a rat model of non-alcoholic fatty
liver disease,” Exp. Biol. Med., vol. 238, no. 2, pp. 151–162, 2013.
[75] E. Juárez-Hernández, N. C. Chávez-Tapia, M. Uribe, and V. J. Barbero-Becerra,
“Role of bioactive fatty acids in nonalcoholic fatty liver disease,” Nutr. J., vol.
15, no. 1, pp. 1–10, 2016.
[76] C. Beermann, J. Jelinek, T. Reinecker, A. Hauenschild, G. Boehm, and H. U.
Klor, “Short term effects of dietary medium-chain fatty acids and n-3 long-chain
polyunsaturated fatty acids on the fat metabolism of healthy volunteers,” Lipids

Heal. Dis, vol. 2, pp. 1–10, 2003.

99