Nghiên cứu phân tích thành phần, cấu trúc hóa học của fucoidan có hoạt tính sinh học từ một số loài rong nâu ở vịnh Nha Trang

1

I. GIỚI THIỆU LUẬN ÁN
I.1. Đặt vấn đề
Fucoidan là một sulfate polysacarit chỉ có trong thành phần của
ngành rong nâu mà không có trong thành phần của các loài thực vật hay
động vật khác. Fucoidan có cấu trúc hóa học phức tạp bởi tính đa dạng
của liên kết glycoside và khả năng phân nhánh với các vị trí nhóm sulfate
được sắp xếp không theo quy luật trên mạch polymer. Thành phần chính
của fucoidan là fucose và sulfate, ngoài ra chúng còn có thêm các gốc
đường khác như galactose, glucose, manose, xylose,…và đôi khi là cả
gốc acetyl. Nhờ sự đa dạng về cấu trúc mà fucoidan sở hữu nhiều hoạt
tinh sinh học quý như kháng đông tụ máu, kháng ung thư, kháng viêm,
kháng virút, chống oxi hóa,… với tiềm năng ứng dụng rất lớn trong các
lĩnh vực mỹ phẩm, thực phẩm chức năng và dược phẩm. Mặc dù có rất
nhiều công trình nghiên cứu nhằm xác định cấu trúc chi tiết của fucoidan,
nhưng các kết quả nghiên cứu phát hiện được tính quy luật trong cấu trúc
của chúng về trật tự liên kết giữa các gốc đường, sự phân nhánh và vị trí
các gốc sulfate vẫn còn rất hạn chế. Mặt khác, mối quan hệ giữa cấu trúc
và hoạt tính sinh học của fucoidan thực tế cho đến nay vẫn chưa được
sáng tỏ. Để giúp cho việc nghiên cứu cơ chế tác dụng của fucoidan lên
các tế bào sinh vật và tiến tới sử dụng fucoidan để làm dược liệu thì việc
xác định chính xác thành phần và cấu trúc hóa học của fucoidan là điều
tiên quyết và đang thu hút sự chú ý của nhiều nhà khoa học trên thế giới.
Ở nước ta hiện tại đã có khoảng 147 loài rong nâu được phân loại,
trong đó các loài rong thuộc chi Sargassum có trữ lượng lớn nhất với hơn
60 loài và sản lượng ước tính đạt tới 10.000 tấn rong khô/năm. Tuy nhiên
cho đến nay ở nước ta vẫn chưa có một công trình nghiên cứu có tính hệ
thống về thành phần hóa học, cấu trúc và hoạt tính sinh học của fucoidan
từ rong nâu Việt Nam.

Do vậy, chúng tôi chọn đề tài: “Nghiên cứu phân tích thành phần,
cấu trúc hóa học của fucoidan có hoạt tính sinh học từ một số loài
rong nâu ở vịnh Nha Trang” nhằm hoàn chỉnh thêm những nghiên cứu
về fucoidan của rong nâu Việt Nam theo định hướng tìm kiếm những
nguồn dược liệu mới phục vụ sức khỏe cộng đồng và phát triển kinh tế xã
hội.
I.2. Mục tiêu của luận án
Nghiên cứu chiết tách và phân đoạn fucoidan từ một số loài rong
nâu Việt Nam. Phân tích thành phần, xác định đặc điểm cấu trúc và mối
quan hệ giữa cấu trúc với hoạt tính sinh học của fucoidan.

2

I.3. Những đóng góp mới của luận án
1/ Việc khử trùng ngưng được thực hiện bằng phương pháp tự thủy
phân (autohydrolysis) sử dụng chính các nhóm (-SO
3
H) của phân tử
fucoidan làm nguồn axít để chuyển hóa fucoidan polysacarit về dạng
fucoidan oligosacarit dưới điều kiện rất nhẹ nhàng, nên hạn chế tối đa quá
trình bẻ ngắn mạch quá mức về dạng các monomer không mong muốn.
Nhờ vậy đã thu được các sản phẩm fucoidan oligosacarit phù hợp cho phân
tích khối phổ.
2/ Lần đầu tiên tại Việt Nam đã kết hợp cả 02 kỹ thuật phân tích khối
phổ nhiều lần MALDI-TOF/MS/MS và ESI-MS/MS trong phân tích cấu
trúc của polysacarit. Việc kết hợp này giúp chúng ta nhận được đầy đủ hơn
các thông tin về cơ chế phân mảnh các ion carbohydrate trong phổ khối,
nhờ vậy đã cho phép giải được một cách tường minh cấu trúc phức tạp của
fucoidan có nguồn ngốc từ rong nâu Việt Nam
3/ Lần đầu tiên cấu trúc của phân đoạn fucoidan SmF3 có hoạt tính gây

độc tế bào ung thư từ rong S. mcclurei đã được thiết lập. Mạch chính của
fucoidan SmF3 gồm →3)-Fucp(4,2SO
3
-
)-(1→3)-Fucp(4,2SO
3
-
)-(1→ họa
tiết xen vào các gốc (1→4)-Fucp(3SO
3
-
) và (→6)-Galp ở cuối đầu khử.
4/ Tất cả các phân đoạn fucoidan từ Sargassum mcclurei ít gây độc tế
bào và ức chế sự hình thành các tế bào ung thư kết tràng DLD-1, chính vì
vậy chúng là các tác nhân kháng ung thư tiềm năng
I.4. Bố cục của luận án
Luận án gồm 113 trang: Mở đầu (02 trang), Nội dung chính gồm
98 trang được chia làm 03 chương gồm: Chương 1. Tổng quan (33 trang),
Chương 2. Đối tương, phương pháp nghiên cứu và thực nghiệm
(11 trang), Chương 3. Kết quả và thảo luận (52 trang), Kết luận và kiến
nghị (2 trang), Danh mục các công trình công bố có liên quan đến luận án
(01 trang), 143 tài liệu tham khảo (12 trang).
II. NỘI DUNG CỦA LUẬN ÁN
MỞ ĐẦU
Phần mở đầu đề cập tính thực tiễn, ý nghĩa khoa học, đối tượng
nghiên cứu, mục tiêu và nhiệm vụ của luận án.
CHƯƠNG 1. TỔNG QUAN
Giới thiệu sơ lược về phân bố và phân loại rong nâu trên thế giới và
ở Việt Nam
Giới thiệu về fucoidan, tình hình nghiên cứu cấu trúc, hoạt tính sinh

học và ứng dụng của fucoidan từ rong nâu trên thế giới và ở Việt Nam.
Các phương pháp chiết tách và phân tích cấu trúc của fucoidan.


3

CHƯƠNG 2. ĐỐI TƯỢNG, PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU
VÀ THỰC NGHIỆM
2.1. Đối tượng nghiên cứu
Đối tượng được lựa chọn nghiên cứu là 08 loài rong nâu phổ biến
và có trữ lượng lớn nhất ở vùng biển vịnh Nha Trang bao gồm các loài
rong Sargassum denticapum, Sargassum polycystum, Sargassum binderi,
Sargassum oligocystum, Sargassum swartzii, Sargassum mcclurei,
Turbinaria ornata, Padina australis, các mẫu rong được thu thập, phân
loại và định danh bởi chuyên gia phân loài rong biển TS. Lê Như Hậu.
2.2. Phương pháp nghiên cứu
2.2.1. Phương pháp chiết tách và phân đoạn tinh chế fucoidan từ rong
nâu: fucoidan được thu nhận bằng cách chiết rong trong dung môi axit
loãng (pH: 2-3), sau đó sử dụng phương pháp sắc ký trao đổi anion để
tách phân đoạn tinh chế fucoidan.
2.2.2. Các phương pháp phân tích thành phần của fucoidan: phương pháp
trắc quang, đo độ đục và phương pháp sắc ký lỏng hiệu năng cao (HPLC).
2.2.3. Các phương pháp phân tích cấu trúc của fucoidan: phân tích liên
kết bằng methyl hóa, phân tích phổ hồng ngoại (IR), phổ cộng hưởng từ
hạt nhân (
1
H-NMR,
13
C-NMR), phổ khối nhiều lần Negative-ion tandem
ESI-MS/MS và MAILDI-TOF/MS/MS.

2.2.4. Phương pháp thử nghiệm hoạt tính gây độc tế bào của fucoidan:
được thực hiện theo phương pháp của
Likhitwitaywid và Colburn

2.3. Thực nghiệm
2.3.1. Phương pháp chiết và tách phân đoạn fucoidan từ rong nâu
Phương pháp chiết fucoidan: Fucoidan được thu nhận bằng cách
chiết rong trong dung môi axit HCl loãng (pH: 2-3) ở 70
o
C, trong thời
gian 2 giời (chiết lặp lại 3 lần). Dịch chiết được gom lại và cô đặc bằng
màng siêu lọc 10kDa, dịch chiết sau đó được kết tủa trong cồn 98% hoặc
đông khô để thu bột fucoidan.
Phương pháp tách phân đoạn fucoidan: Fucoidan sau khi được
phân lập từ rong nâu sẽ được tiến hành tách phân đoạn tinh chế bằng sắc
ký trao đổi anion trên cột DEAE-cellulose.
2.3.2. Các phương pháp phân tích thành phần của fucoidan
Phân tích hàm lượng tổng carbohydrate: được thực hiện bằng
phương pháp so màu với phenol và axit sulfuric đậm đặc, ở λ = 490 nm.
Phân tích thành phần đường đơn: được thực hiện bằng sắc ký lỏng
hiệu năng cao (HPLC), sau khi fucoidan được thủy phân bằng
trifluoroacetic axít.

4

Phân tích hàm lượng sulfate: được thực hiện bằng phương pháp đo
độ đục với BaCl
2
/gelatin, ở bước sóng λ = 360 nm
Phân tích hàm lượng axít uronic: được thực hiện bằng phương

pháp so màu với thuốc thử Carbazol, ở bước sóng λ = 525 nm.
2.3.3. Các phương pháp phân tích cấu trúc fucoidan
Phân tích liên kết bằng methyl hóa: fucoidan được methyl hóa bằng
methyl iodua trong dung môi dimethylsulfoxide, sau đó tiến hành thủy
phân, khử mở vòng và acetyl hóa. Sản phẩm sau khi acetyl hóa được
phân tích bằng GC-MS.
Thủy phân tạo oligosacarit-fucoidan sử dụng cho phân tích khối
phổ: được tiến hành bằng phương pháp tự thủy phân (autohydrolysis).
CHƯƠNG 3. KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN
3.1. CHIẾT TÁCH VÀ PHÂN LẬP FUCOIDAN TỪ RONG NÂU
Fucoidan từ 08 loài rong nâu thuộc 3 chi rong Sargassum, Padina
và Turbina đã được chiết tách và phân tích hàm lượng (bảng 3.1). Kết
quả cho thấy hàm lượng fucoidan dao động từ 0,82 % (Sargassum
swartzii) đến 2,57 % (Sargassum polycystum), hàm lượng fucoidan trong
hai loài rong Padina australis và Turbina ornata tương ứng là 1,93 % và
1,23 %. Như vậy, ta thấy hàm lượng fucoidan trong các loài rong thuộc
các chi khác nhau là khác nhau và trong cùng một chi (Sargassum) cũng
không giống nhau. Sự khác nhau về hàm lượng fucoidan trong các loài
rong có thể được giải thích là do ảnh hưởng của các yếu tố sinh trưởng
của rong như vị trí địa lý, thời gian thu rong và cả phương pháp chiết.
Bảng 3.1. Hàm lượng và thành phần monosacarit của fucoidan
từ 08 loài rong nâu Việt Nam
Thành phần đường đơn của fucoidan
(% mol)
Stt Loài rong Hàm lượng
fucoidan
%
*

Fuc Man

Gal Xyl Glc
SO
4
2-

%
w/w
**
Axít
uronic
% w/w
**
1 S.swartzii 0,82 35,8 19,2 32,3 9,9 2,8 20,40 14,28
2 S.oligocystum 1,78 42,3 8,9 38,3 7,1 3,4 22,46 21,54
3 S.denticapum 2,00 40,1 15,9 38,7 5,3 nd 25,69 21,20
4 S.mcclurei 2,37 38,5 4,2 33,1 3,6 20,6 33,15 17,87
5 S.polycystum 2,57 42,4 12,6 23,5 1,3 10,2 25,60 23,74
6 S.binderi 1,13 42,2 10,3 38,0 9,5 nd 21,47 5,35
7 Turbina ornata 1,23 55,8 9,2 24,8 9,0 1,2 25,30 7,50
8 Padina australis 1,93 47,1 2,5 22,3 11,5 16,6 21,90 21,02
* Hàm lượng tính theo khối lượng rong khô đã loại chất béo
** Hàm lượng tính theo khối lượng của fucoidan; nd: không phát hiện thấy

5

3.2. PHÂN TÍCH THÀNH PHẦN HÓA HỌC CỦA FUCOIDAN
Để xác định thành phần hóa học của fucoidan chúng tôi tiến hành
thủy phân fucoidan thành các monomer trong môi trường axít. Việc thủy
phân hoàn toàn để xác định thành phần các đường đơn của fucoidan trên

thực tế rất khó xảy ra, do đó chúng tôi tiến hành xác định theo tỉ lệ mol
giữa các gốc đường đã được thủy phân. Sắc ký đồ của các mẫu đường
chuẩn được trình bày trên hình 3.1. Kết quả phân tích thành phần
monosacarit, hàm lượng sulfate và uronic axít của các mẫu fucoidan
được trình bày trên bảng 3.1

Hình 3.1. Sắc ký đồ HPLC của các mẫu đường đơn chuẩn
Kết quả bảng 3.1 cho thấy fucose chiếm hàm lượng đáng kể từ
35,8-55,8 % trong tất cả các mẫu fucoidan, trong đó cao nhất là fucoidan
từ rong Turbina ornata (55,8%) và thấp nhất là fucoidan từ rong
S.swartzii (35,8%). Hàm lượng galactose của fucoidan chiết từ các loài
rong thuộc chi Sargassum chiếm tỉ lệ gần bằng hàm lượng fucose, ngoại
trừ fucoidan từ rong S.polycystum có tỉ lệ fucose:galactose = 2:1. Trong
khi đó, các mẫu fucoidan từ hai chi rong khác là Turbina ornata và
Padina australis cũng giống như fucoidan của loài rong S.polycystum
hàm lượng galactose chiếm gần bằng một nửa so với fucose. Ngoài hai
thành phần chính là fucose và galactose, tất cả các mẫu fucoidan của 08
loài rong nghiên cứu đều có chứa các đường đơn khác với hàm lượng nhỏ
hơn là mannose (2,5-19,2%), xylose (1,3-11,5%) và glucose (0-20,6%).
Hàm lượng các gốc đường này biến đổi theo từng chi rong và từng loài
rong, tuy nhiên trong cùng chi rong chúng biến đổi không nhiều. Các kết
quả này cũng hoàn toàn phù hợp với các công bố trước đó về sự đa dạng
của thành phần hóa học của fucoidan. Bên cạnh thành phần là các gốc

6

đường, trong phân tử của fucoidan còn chứa các gốc sulfate và axít
uronic. Hàm lượng sulfate của các mẫu fucoidan khác nhau không nhiều
(bảng 3.1), dao động trong khoảng 20,40-33,15%, trong đó lớn nhất là
fucoidan của rong S.mcclurei (33,15%) và nhỏ nhất là fucoidan từ rong

S.swartzii (20,40%),
Do sự phức tạp trong thành phần cũng như cấu trúc, nên việc xác
định các đặc trưng cấu trúc của fucoidan là hết sức khó khăn. Phân đoạn
tinh chế fucoidan là một bước quan trọng làm đơn giản hóa việc phân tích
các đặc trưng cấu của chúng.
3.3. TÁCH PHÂN ĐOẠN VÀ PHÂN TÍCH THÀNH PHẦN CỦA
CÁC PHÂN ĐOẠN FUCOIDAN
05 loại fucoidan được phân lập từ các loài rong Sargassum swartzii,
Sargassum mcclurei, Sargassum polycystum, Sargassum denticapum và
Turbina ornata được chúng tôi lựa chọn để tiến hành phân đoạn và phân
tích các đặc trưng cấu trúc của chúng. Vì đây là những loài rong phổ biến,
có trữ lượng lớn và có khả năng khai thác ở quy mô công nghiệp.
Kết quả phân đoạn tinh chế các mẫu fucoidan bằng sắc ký trao đổi
anion trên cột DEAE-cellulose (3,2x32 cm) được chỉ ra trên hình 3.2-
hình 3.6. Kết quả tách phân đoạn của các mẫu fucoidan cho thấy fucoidan
từ các loài rong S.denticapum, S.polycystum và S.mcclurei đều thu được
03 phân đoạn khác nhau. Kết quả này cho thấy fucoidan từ mỗi loài rong
này sẽ tồn tại ít nhất 03 kiểu cấu trúc khác nhau. Trong khi đó fucoidan từ
hai loài rong Turbinaria ornata và S.swartzii lần lượt thu được 04 và 05
phân đoạn khác nhau, như vậy fucoidan từ hai loài rong này cũng sẽ tồn
tại ít nhất là 04 và 05 dạng cấu trúc khác nhau. Tuy nhiên, các phân đoạn
tương ứng với mỗi loài rong được rửa giải ra ở các nồng độ muối NaCl
khác nhau, như vậy có thể đặc điểm cấu trúc của các phân đoạn tương
ứng với mỗi loài rong sẽ không giống nhau. Kết quả phân tích thành phần
hóa học của mỗi phân đoạn fucoidan từ 05 loài rong nghiên cứu ở trên
(bảng 3.2-3.6) cho thấy thành phần hóa học của các phân đoạn fucoidan
giữa các loài rong là khác nhau và trong cùng một loại rong cũng khác
nhau. Tuy nhiên, chúng đều có đặc điểm chung là hàm lượng sulfate
trong các phân đoạn fucoidan tăng dần theo nồng độ rửa giải của muối
NaCl, hàm lượng fucose và galactose tăng tỉ lệ nghịch với hàm lượng của

các gốc đường khác, đặc biệt trong phân đoạn SmF3 từ rong S.mcclurei
chỉ tồn tại hai gốc đường là fucose và galactose. Như vậy với phần chính
là fucose, galactose và sulfate fucoidan từ 05 loài rong trên được xếp vào
nhóm các sulfated galactofucan, khác với các sulfate fucan từ rong ôn đới


7












0
0,5
1
1,5
2
2,5
3
0 100 200 300 400 500 600 700
V, ml
A, 490nm
0

0,5
1
1,5
2
NaCl, M




0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
1,2
1,4
0 100 200 300 400 500 600 700 800
V, ml
A, 490nm
0
0,5
1
1,5
2
NaCl, N

Bảng 3.2. Hàm lượng và thành phần đường của các phân đoạn fucoidan
từ rong S.denticapum thu được bằng sắc ký trao đổi anion
Thành phần monosacarit ,

mol%
Phân đoạn
fucoidan
Hàm
lượng

(%)
*

Tổng
carbohydrate
(%)
*
SO
4
2-

(%)
*

Fuc Man Gal Xyl
SdF1-0,5М NaCl

17,2 48,04 23,67 38,6 22,1 24,6 14,7
SdF2-1,0М NaCl 45,7 54,12 27,64 48,6 12,8 28,2 10,4
SdF3-1,5М NaCl 15,3 54,09 39,14 51,9 5,8 33,4 8,9
*: tính theo khối lượng của fucoidan
Hình 3.3. Tách phân đoạn fucoidan từ rong
S.swartzii bằng sắc ký trao đổi anion trên
cột DEAE-cellulose

0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
1,2
1,4
0 50 100 150 200 250 300 350 400 450 500
V, ml
DO, 490nm
0
0,5
1
1,5
2
NaCl, M
SdF1
SdF2
SdF3
Hình 3.2. Tách phân đoạn fucoidan từ rong
S.denticapum bằng sắc ký trao đổi anion trên
cột DEAE-cellulose
Hình 3.4. Tách phân đoạn fucoidan từ
rong S.polycystum bằng sắc ký trao đổi
anion trên cột DEAE-cellulose
SpF1
SpF2
SpF3
0

0,05
0,1
0,15
0,2
0,25
0,3
0 50 100 150 200 250 300 350 400 450 500
V (ml)
A 490nm
0
0,5
1
1,5
2
NaCl, M
SmF1
SmF2
SmF3
Hình 3.5. Tách phân đoạn fucoidan từ
rong S.mcclurei bằng sắc ký trao đổi
anion trên cột DEAE-Macroprep

SwF2
0
0,02
0,04
0,06
0,08
0,1
0,12

0 50 100 150 200 250 300 350 400 450 500
V, ml
DO, 490nm
0
0,5
1
1,5
2
NaCl, M
SwF1
SwF3
SwF4
SwF5
SwF2
Hình 3.6. Tách phân đoạn fucoidan từ rong
Turbinaria ornata bằng sắc ký trao đổi
anion trên cột DEAE-cellulose
ToF1
ToF2
ToF3
ToF4

8

Bảng 3.3. Hàm lượng và thành phần đường của các phân đoạn fucoidan
từ rong S.swartzii thu được bằng sắc ký trao đổi anion
Thành phần monosacarit, mol% Phân đoạn
fucoidan theo
nồng độ NaCl
Hàm

lượng
(%)
SO
4
2-

(%)
Fuc Man Gal Xyl Rham Glc
SwF1-0,5 М 2,0 5,6 nd nd nd nd nd nd
SwF2-0,8 М 20,2 14,6 49,5 4,7 29,4 2,7 2,7 3,0
SwF3-1,0 М 33,3 18,4 56,0 3,0 28,9 1,9 1,9 3,2
SwF4-1,2 М 26,2 28,0 55,6 3,6 27,9 2,4 3,3 2,8
SwF5-1,5 М 16,0 42,3 57,1 4,0 27,4 0,9 2,0 2,0
nd: không phát hiện thấy
Bảng 3.4: Hàm lượng và thành phần đường của các phân đoạn fucoidan
từ rong S.polycystum thu được bằng sắc ký trao đổi anion
Thành phần monosacarit của fucoidan,
% mol
Phân đoạn
fucoidan
theo nồng
độ NaCl
Hàm
lượng
(%)
Tổng
carbohydrate
(%)
SO
4

2-

(%)
Fuc Man Gal Xyl Rham Glc
SpF1-0,5М

18,3 56,43 20,11 28,0 26,7 12,7 11,3 13,1 8,2
SpF2-1,0М

43,2 59,15 25,67 59,2 6,0 26,6 0,2 8,0 nd
SpF3-1,5М

21,0 54,97 33,99 68,6 nd 26,9 4,5 nd nd
Bảng 3.5. Hàm lượng và thành phần đường của các phân đoạn fucoidan
từ rong S.mcclurei thu được bằng sắc ký trao đổi anion
Thành phần monosacarit, % mol Phân đoạn
fucoidan
theo nồng
độ NaCl
Hàm
lượng
(%)
*
Tổng
carbohydrate
(%)
*
SO
4
2-

(%)
*
Fuc

Man

Gal Xyl

Gluc

SmF1-0,8M 8,4 44,65 16,8 27,2 34,0 19,6 6,4 12,8
SmF2-1,2M 18,2 64,59 25,7 44,8 5,4 34,1 5,3 10,4
SmF3-1,6M 10,5 55,62 35,0 58,5 nd 41,5 nd nd
Bảng 3.6. Hàm lượng và thành phần đường của các phân đoạn fucoidan
từ rong Turbina ornata thu được bằng sắc ký trao đổi anion
Thành phần monosacarit , mol% Phân đoạn fucoidan
theo nồng độ NaCl
Hàm
lượng (%)
SO
4
2-

(%)
Fuc Man Gal Rham
ToF1-1,15 М 6,6 23,87 71,9 4,5 23,6 nd
ToF2-1,25 М 29,7 43,26 69,6 nd 27,7 2,7
ToF3-1,50 М 10,3 38,75 82,1 2,4 9,4 6,1
ToF4-1,80 М 18,4 32.36 75,6 2,9 18,8 2,7

9

Theo các tài liệu đã công bố, fucoidan rong nâu nói chung và
galactofucan sulfate hóa nói riêng sở hữu phổ hoạt tính sinh học rất rộng
và đa dạng như hoạt tính kháng ung thư, kháng đông tụ máu, kháng vi
rút, Do vậy, trước khi tiếp tục nghiên cứu sâu hơn về các đặc trưng cấu
trúc của fucoidan rong nâu Việt Nam nhằm mục đích ứng dụng chúng
làm thực phẩm chắc năng và dược liệu. Chúng tôi tiến hành khảo sát hoạt
tính ức chế một số dòng tế bào ung thư người.
3.4. HOẠT TÍNH SINH HỌC CỦA FUCOIDAN
3.4.1. Hoạt tính gây độc tế bào ung thư của fucoidan
Fucoidan từ 06 loài rong S.mcclurei (F-Sm), S.polycystum (F-Sp),
S.swartzii (F-Ss), S.denticapum (F-Sd), S.oligocystum (F-So) và
Turbinaria ornata (F-To) được chúng tôi lựa chọn thử nghiệm hoạt tính
gây độc tế bào trên 05 dòng ung thư của người là ung thư gan (Hep-G2),
ung thư màng tim (RD), ung thư phổi (LU), ung thư ruột kết (DLD-1) và
ung thư vú (MDA-MB-231). Thí nghiệm được thực hiện tại Viện Hóa
học các Hợp chất thiên nhiên-Viện Hàn lâm Khoa học và Công nghệ Việt
Nam, Viện Hóa sinh Hữu cơ Thái Bình Dương - Nga và Viện Sinh học và
Công nghệ sinh học - Hàn Quốc. Kết quả cho thấy tất cả các mẫu
fucoidan thử nghiệm đều cho kết quả dương tính với ít nhất 02 dòng tế
bào ung thư, trong đó fucoidan từ rong S.swartzii cho kết quả dương tính
trên 04 dòng tế bào ung thư (bảng 3.7 và 3.8).
Bảng 3.7. Hoạt tính gây độc tế bào của fucoidan
từ 06 loài rong nâu của Việt Nam
Dòng tế bào ung thư của người Fucoidan
Hep-G2

RD

MDA-MB-
231

LU

DLD-1

Kết luận
F-Sp + + nd nd nd Dương tính
02 dòng
F-Sm + - nd nd + Dương tính
02 dòng
F-So + + nd nd nd Dương tính
02 dòng
F-Ss + + + + - Dương tính
04 dòng
F-Sd + + nd nd - Dương tính
02 dòng
F-To + + nd nd nd Dương tính
02 dòng


10

Bảng 3.8. Giá trị IC
50
của các mẫu fucoidan có hoạt tính gây độc tế bào
Giá trị IC
50

(µg/ml)
Dòng tế bào
Fucoidan
Hep-
G2
RD LU DLD-1
MDA-
MB-231
Kết luận
Chứng (+) 0,25 0,1 0,32 0,1 0,2
F-Sp 4,5 7,1 CXĐ CXĐ CXĐ Dương tính 02 dòng
F-Sm 2,4 20,0 CXĐ 6,5 CXĐ Dương tính 02 dòng
F-So 18,5 10,4 CXĐ CXĐ CXĐ Dương tính 02 dòng
F-Ss 3,8 16,7 15,5 CXĐ 5,4 Dương tính 04 dòng
F-Sd 8,1 15,4 CXĐ CXĐ CXĐ Dương tính 02 dòng
F-To 12,8 10,9 CXĐ CXĐ CXĐ Dương tính 02 dòng
3.4.2. Hoạt tính gây độc tế bào của các phân đoạn fucoidan được phân
lập từ rong Sargassum swartzii và Sargassum mcclurei
Trong số 06 mẫu fucoidan được thử nghiêm hoạt tính gây độc tế
bào ở trên, chúng tôi lựa chon các phân đoạn của fucoidan từ S.swartzii
và S.mcclurei tiếp tục thử nghiệm với dòng tế bào ung thư vú và ung thư
ruột kết. Kết quả cho thấy tất cả các phân đoạn thử nghiệm đều cho kết
quả dương tính với các mức độ ức chế khác nhau (hình 3.7 và 3.8). Như
vậy có thể thấy hoạt tính sinh học của fucoidan phụ thuộc vào các yếu tố
đặc trưng cấu trúc của fucoidan
0
20
40
60
80

100
120
Đối chứng SwF1 SwF2 SwF3 SwF4 SwF5
Nồng độ các phân đoạn fucoidan
Sự ức chế phát triển tế bào, %
5 μg/ml
0,5 μg/ml

Hình 3.7. Hoạt tính gây độc tế bào ung thư vú MDA-MB-231
của các phân đoạn fucoidan từ rong Sargassum swartzii

11
















Hình 3.8: Hiệu quả ức chế sự phát triển tế bào ung thư kết tràng DLD-1
của các phân đoạn fucoidan được chiết tách từ rong Sargassum mcclurei

3.5 . ĐẶC TRƯNG CẤU TRÚC CỦA CÁC PHÂN ĐOẠN FUCOIDAN
3.5.1. Các đặc trưng cấu trúc thu được từ phổ IR
Các phân đoạn SdF3, SwF5, SpF3, SmF3 và ToF2 từ 05 loài rong
có hoạt tính sinh học tốt, đồng thời có thành phần đường đơn giản nhất so
với các phân đoạn fucoidan còn lại được lựa chọn để phân tích các đặc
trưng cấu trúc. Kết quả phân tích phổ hồng ngoại của các phân đoạn
fucoidan đều thu được những dải hấp thụ chính ở số sóng từ 1240-
1272cm
-1
cho thấy sự có mặt của nhóm sulfate. Ngoài ra, các dao động
hấp thụ trong vùng số sóng từ 800-845 cm
-1
cho biết vị trí của nhóm
sulfate trên các gốc đường pyrannose (bảng 3.9).
Bảng 3.9. Một số vân phổ đặc trưng trong phổ hồng ngoại của fucoidan
được chiết tách từ một số loài rong nâu Việt Nam
Mẫu Số sóng dao động
đặc trưng (cm
-1
)
Vị trí nhóm sulfate
SdF3 847,90 Nhóm sulfate chủ yếu ở vị trí C4
SpF3 835,40 Nhóm sulfate chủ yếu ở vị trí C4
SwF5 803,77 Nhóm sulfate chủ yếu ở vị trí C2
và/hoặc C3
SmF3

839,22 Nhóm sulfate chủ yếu ở vị trí C4
ToF2 820,00 Nhóm sulfate chủ yếu ở vị trí C2
và/hoặc C3

SmF3-DS (100 μg/ml)
Đối chứng
SmF1
(100 μg/ml)
SmF2
(100 μg/ml)
SmF3
(100 μg/ml)

12

3.5.2. Các đặc trưng cấu trúc thu được từ phổ NMR
* Phổ
13
C-NMR:
Giống như nhiều fucoidan rong nâu khác trên thế giới đã được
công bố, fucoidan rong nâu ở Việt Nam cũng có phổ
13
C-NMR rất phức
tạp với nhiều vùng tín hiệu trùng lặp chồng lấn nhau do trong phân tử của
chúng được cấu tạo bởi các gốc đường fucose (C
6
H
12
O
5
) và hexose
(C
6
H

12
O
6
) khác nhau, điều này rất khó để giải thích được một cách đầy
đủ về cấu trúc của chúng. Tuy nhiên, trên phổ
13
C-NMR của tất cả các
phân đoạn fucoidan đều có những đặc điểm chung để nhận biết fucoidan
thông qua các tín hiệu của gốc α-L-Fucp đó là những tín hiệu mạnh xuất
hiện trong vùng trường cao 15-18 ppm đặc trưng cho nhóm metyl (CH
3
-)
và các tín hiệu trong vùng trường thấp 97-102 ppm đặc trưng cho cacbon
α-anomeric (C1) của gốc đường 1→3)-α-L-fucopyranose, vùng tín hiệu
67-86 ppm là vùng của cacbon C2-C5 của vòng pyranoid. Bên cạnh đó,
phổ
13
C-NMR cũng cho thấy sự có mặt của gốc đường β-D-Galactose
thông qua các tín hiệu đặc trưng cho cacbon C6 không liên kết và cacbon
C1 của gốc β-D-Galactose tương ứng ở độ dịch chuyển hóa học trong
vùng 61-62 ppm và 103-104 ppm. Ngoài ra, các tín hiệu ở độ dịch chuyển
hóa học 20,9 ppm và vùng (173-175 ppm) trên phổ
13
C-NMR của các
phân đoạn SpF3 và SwF5 còn chỉ ra sự có mặt của nhóm O-acetyl trong
phân tử của hai loại fucoidan này.

*
Phổ cộng hưởng từ hạt nhân
1
H-NMR:
Phổ cộng hưởng từ hạt nhân
1
H-NMR của các polysacarit nói
chung và của fucoidan nói riêng đều hết sức phức tạp, độ phân giải không
cao với rất nhiều pic trùng chập và chen lấn nhau. Vì vậy, rất khó để giải
α-L-Fucp-C6
β-D-Gal-C6
α-L-Fucp C2-C5
β-D-Gal-C1
α-(1,3)-L-Fucp-C1
Hình 3.11. Phổ
13
C-NMR của phân đoạn fucoidan SdF3 từ S.denticapum

13

thích thỏa đáng tất cả các tín hiệu trên phổ này. Mặc dù vậy, cũng giống
như các loại fucoidan đã được công bố trước đó, trên phổ
1
H-NMR của cả
05 phân đoạn fucoidan SdF3, SpF3, SmF3, SwF5 và ToF2 đều xuất hiện
những tín hiệu mạnh ở vùng trường cao 1,2-1,8 ppm đặc trưng cho proton
H6 của nhóm methyl vòng fucose và các tín hiệu xuất hiện trong vùng
4,9-5,2 ppm đặc trưng cho proton H1 của vòng 1→3)-α-L-fucopyranose.
Bên cạnh đó trên phổ
1
H-NMR cũng xác nhận sự có mặt của gốc
galactose thông qua các tín hiệu ở độ dịch chuyển hóa học 3,1-3,3 ppm và
5,3-5,4 ppm đặc trưng cho proton H6 và H1 của vòng β-D-Galactose.
Ngoài ra, trên phổ của các phân đoạn SdF3, SwF5, SpF3 và ToF2 còn
xuất hiện nhóm tín hiệu trong vùng 2,1-2,3 ppm cho thấy sự có mặt của
nhóm O-acetyl.

Như vậy, từ kết quả phân tích thành phần hóa học, phổ hồng ngoại
và phổ cộng hưởng từ hạt nhân (
1
H-NMR và
13
C-NMR) cho thấy đặc
điểm cấu trúc của 05 phân đoạn fucoidan đại diện cho các loài rong
S.polycystum, S.denticapum, S.mcclurei, S.swartzii và Turbinaria ornata
thuộc nhóm sulfated galactofucan có cấu tạo mạch chính chủ yếu là các
gốc 1→3)-α-L-Fucp, gốc β-D-Galp có thể tồn tại ở mạch chính và/hoặc ở
mạch nhánh. Chính vì sự phức tạp trong thành phần cũng như cấu trúc
mạch nhánh, nên việc phân tích cấu trúc chi tiết của fucoidan là vô cùng
khó khăn. Do vậy, phân đoạn fucoidan SmF3 từ rong S.mcclurei là phân
đoạn có hoạt tính sinh học tốt và có thành phần hóa học đơn gian nhất sẽ
được lựa chọn để tiếp tục nghiên cứu chi tiết hơn về cấu trúc hóa học.
α-L-Fucp-H6
β-D-Galp-H6
β-D-Galp-H1
α-(1,3)-L-Fucp-H1

OAc(CH3)
Hình 3.12. Phổ
1
H-NMR của phân đoạn fucoidan SdF3 (S.denticapum)

C2-C5

14

3.6. PHÂN TÍCH CẤU TRÚC CỦA PHÂN ĐOẠN FUCOIDAN
SmF3 ĐƯỢC CHIẾT TÁCH TỪ RONG NÂU SARGASSUM
MCCLUREI.
Theo kết quả ở mục 3.3, phân đoạn SmF3 có thành phần chính là
fucose, galactose và sulfate (35%), tỉ lệ fucose:galactose ≈ 1:0,71, ngoài
ra không chứa thêm các thành phần đường khác (bảng 3.5). Phổ FT-IR
của phân đoạn SmF3 giúp ta nhận biết sự có mặt của nhóm sulfate thông
qua các tín hiệu ở 1262,73 cm
-1
(S=O) và 839,22 cm
-1
(S-C-S) (hình 3.13),
ngoài ra đỉnh hấp thụ ở số sóng 839,22 cm
-1
còn cho biết vị trí nhóm thế
sulfate trong phân tử fucoidan SmF3 ở axial (C4) chiếm ưu thế. Tuy
nhiên, dữ liệu phổ hồng ngoại chỉ cho biết thông tin nhóm sulfate ở vị trí
axial (C4) hay equatorial (C2 hoặc C3) của vòng pyranose nói chung mà
không phân biệt được nó thuộc vòng fucose hay galactose. Vì vậy, để giải
quyết vấn đề này chúng tôi sẽ tiến hành phân tích bằng phương pháp phổ
cộng hưởng từ hạt nhân và phổ khối.

Trên phổ
13
C-NMR (hình 3.14) của fucoidan tự nhiên phân đoạn
SmF3 các tín hiệu mạnh trong vùng trường cao 15,5-17,7 ppm và vùng
anomeric 96,0-100,4 ppm đặc trưng cho C-1 và C-6 của vòng α-L-fucose.
Các tín hiệu ở 102,7 ppm, 61,7 và 67,0 ppm lần lượt đặc trưng cho
cacbon C-1, C-6 tự do và C-6 có liên kết của gốc β-D-galactose. Tổ hợp
phức tạp các tín hiệu trong vùng 67,8-85,0 ppm là của cacbon vòng
pyranose C2-C5. Ngoài ra không phát hiện thấy các tín hiệu chứng tỏ sự
có mặt của các nhóm acetat và axít uronic trong phân tử fucoidan SmF3.
Sự phức tạp của phổ
1
H-NMR phân đoạn fucoidan SmF3 cũng
tương tự như các loại fucoidan khác đã công bố, nên việc giải thích thỏa
C-O-S
S=O
Hình 3.13: Phổ FT-IR của fucoidan- SmF3 từ rong nâu Sargassum mcclurei

15

đáng các tín hiệu trên phổ này là điều không thể. Tuy nhiên, một phần
thông tin về đặc trưng cấu trúc của fucoidan vẫn có thể thu nhận được từ
phổ
1
H-NMR thông qua các tín hiệu đặc trưng của gốc đường fucose và
galactose. Đó là các tín hiệu mạnh trong vùng trường cao 1,2-1,4 ppm
của proton H6 (nhóm methyl) và vùng 5,2-5,3 ppm thuộc về proton

H1(α-anomeric) của gốc 1→3)-α-L-Fucp, tín hiệu nhỏ hơn ở 5,0 ppm là
H1 của gốc 1→4)-α-L-Fucp. Bên cạnh đó, các tín hiệu đặc trưng cho
proton H6 và H1 của gốc β-D-galactose được xác nhận thông qua các tín
hiệu ở độ dịch chuyển hóa học 3,7 ppm và 5,4 ppm.












* Khử sulfate
Khử sulfate được thực hiện nhằm mục đích làm đơn giản hóa cấu
trúc của fucoidan phân đoạn SmF3. Kết quả đo phổ
13
C-NMR của
fucoidan đề sulfate hóa SmF3-Ds cho thấy tín hiệu đặc trưng của cacbon
C-6 không liên kết của gốc β-D-Galactose ở 61,7 ppm đã tăng lên đáng
kể so với trước khi được khử sulfate, điều này chỉ ra nhóm sulfated có thể
tồn tại ở vị trí C-6 của một số gốc galactose.
* Phân tích liên kết bằng phương pháp methyl hóa
Kết quả phân tích liên kết bằng methyl hóa của fucoidan SmF3
(bảng 3.10) cho thấy chủ yếu là các gốc fucose liên kết 3 (46%), cùng với
một lượng ít hơn các gốc galactose liên kết 4 (18%), fucose liên kết 4
chiếm 12% và galactose liên kết 6 chỉ có 2%. Fucoidan SmF3 có chứa

các gốc fucose và galactose ở đầu mạch không khử nhưng nó chỉ có gốc
galactose liên kết (1→6) ở cuối mạch khử.
Hình 3.14: Phổ
13
C-NMR của fucoidan- SmF3 từ rong Sargassum mcclurei
α-L-Fucp-C6

β-D-Galp-C6

α-(1,3)-L-Fucp

β-D-Galp-C1

C2-C5

16

Việc phát hiện các gốc 3,4- và 2,4-di-O-methyl-galactitol cho
thấy nhóm sulfate ở vị trí C2/C3 và/hoặc C4 của gốc galactose và/hoặc
gốc galactose tồn tại ở mạch nhánh.
Bảng 3.10. Phân tích methyl hóa của fucoidan đề sulfate hóa SmF3-DS.
Thành phần các gốc đường
(methylated fucitol hoặc
galactitol acetate)
mol
%
Dạng liên kết
2,3,4-tri-O-methyl-fucitol 5 Fuc1→
2,3-di-O-methyl-fucitol 12 →4Fuc1→
2,4-di-O-methyl-fucitol 46 →3Fuc1→

2,3,4,6-tetra-O-methyl-galactitol

8 Gal1→
2,3,6-tri-O-methyl-galactitol 18 →4Gal1→
2,3,4-tri-O-methyl-galactitol 2 →6Gal1→
3,4-di-O-methyl-galactitol 1 →2,6Gal1→
2,4-di-O-methyl-galactitol 2 →3,6Gal1→
1,2,3,4-tetra-O-methyl-galactitol

6 →6Gal
Như vậy, bằng các phương pháp phân tích hóa học và phân tích
phổ IR, NMR, đặc trưng cấu trúc của fucoidan SmF3 đã được xác định
như sau: mạch chính được tạo nên chủ yếu bởi gốc α-L-fucose-(1→3),
trong thành phần mạch chính và/hoặc mạch nhánh còn chứa các gốc
α-L-fucose-(1→4); galactose-(1→4) và galactose-(1→6). Nhóm sulfate ở
vị trí C2 và/hoặc C4 trên gốc đường fucose và galactose.
Để khẳng định lại cấu trúc dự đoán trên và xác định trật tự liên kết
giữa các gốc đường trong phân tử fucoidan SmF3, các oligofucoidan
SmF3 sẽ được phân tích bằng khối phổ nhiều lần (MALDI-TOF/MS/MS
và ESI-MS/MS).
* Phổ khối của oligosacarit được điều chế bằng phương pháp
tự thủy phân fucoidan SmF3
Hiệu suất của phân đoạn oligosacarit SmF3-AH đạt được là 85% so
với SmF3. Kết quả phân tích thành phần monosacarit của phân đoạn này
cho thấy hàm lượng (% mol) fucose chiếm 68,5%, hàm lượng galactose
chiếm 31,5%. Kết quả phân tích thành phần monosacarit của phân đoạn
trọng lượng phân tử cao thu được sau thủy phân cho thấy hàm lượng
galactose giảm xuống (14,7%) và hàm lượng fucose tăng lên (85,3%). So
với các kết quả thu được khi phân tích fucoidan từ các loài rong thuộc bộ
Laminariales trong cùng điều kiện tự thủy phân cho thấy trong phân tử

fucoidan SmF3 không chứa các đoạn mạch dài chỉ được tạo nên bởi các
gốc galactose. Để chứng minh cho dự đoán này chúng tôi tiến hành phân

17

tích khối phổ nhiều lần với chế độ ion âm (negative-ion tandem MS) của
các đoạn mạch ngắn nhằm xác định trật tự của các liên kết đường trong
phân tử fucoidan. Phổ khối của oligofucoidan SmF3-AH được đo theo
hai phương pháp là MALDI-TOF/MS/MS và ESI-MS/MS.

Hình 3.15. Phổ khối MALDI-TOF chế độ ion âm của fucooligosacarit
SmF3 từ rong S. mcclurei nhận được bằng tự thủy phân
Kết quả đo khối phổ bằng cả hai phương pháp cho thấy tín hiệu lớn
nhất là mảnh ở m/z: 243,0 của monosulfated fucose [Fuc(SO
3
)]
-
cùng với
một tập hợp các ion mảnh khác như (m/z: 224,98; 387,09; 533,14; 695,15
và các mảnh ion khác) và lượng lớn các monosulfated fucooligosacarit
(m/z: 389,10; 535,15; 681,16 và 827,13) (bảng 3.11). Tiếp theo lần lượt
các mảnh ion chính và các mảnh oligosacarit sẽ được phân tích đặc trưng
cấu trúc bằng phương pháp khối phổ nhiều lần MALDI-TOF/MS/MS và
ESI-MS/MS. Cơ chế phân mảnh xảy ra theo quy tắc được đề xuất bởi
Domon và Costello.
Bảng 3.11. Các đặc trưng cấu trúc của một số oligosacarit nhận được từ
fucoidan SmF3 của rong S. mcclurei bằng tự thủy phân
m/z
MALDI
[M* - Na]

-

ESI
[M - nNa]
n−

Thành phần/đặc trưng cấu trúc của monosacarit
và oligosacarit
243,00 243,016 Fuc(4 SO
3
−
), Fuc(2 SO
3
−
), Fuc(3 SO
3
−
)
- 259,012 Gal(4(6) SO
3
−
), Gal(2 SO
3
−
)
389,10 389,077 [Fuc
2
(SO
3
)]

−

405,10 405,070 Gal(2 SO
3
−
)-(1,3)-Fuc
491,04 234,010
2-
Fuc(2 SO
3
−
)-(1,3)-Fuc(2 SO
3
−
)
Fuc-(1,3)-Fuc(2,4 SO
3
−
)
Fuc(2 SO
3
−
)-(1,4)-Fuc(2 SO
3
−
) **
- 182,323
3-
Fuc(2 SO
3

−
)-(1,4)-Fuc (2,3 SO
3
−
)
Fuc(2,4 SO
3
−
)-(1,3)-Fuc **
- 187,654
2-
Gal(4/6,3 SO
3
−
)-(1,3/4)-Fuc(2/3SO
3
−
)
Fuc(2,4 SO
3
−
)-(1,4)-Gal(2 SO
3
−
)

18

507,03 242,008 Gal(2 SO
3

−
)-(1,3)-Fuc(2 SO
3
−
)
Gal(2 SO
3
−
)-(1,3)-Fuc(2 SO
3
−
) **
535,15 535,136 [Fuc
3
(SO
3
)]
−

- 231,007 [Fuc
3
(SO
3
)]
3−

551,15 - Gal(2SO
3
−
)-(1,3)-Fuc-(1,3)-Fuc

- 236.341 [Fuc
2
Gal(SO
3
)
3
]
3−

653,05 315,040
2-
[Fuc
2
Gal(SO
3
Na)
2
− Na]
−

681,16 - [Fuc
4
(SO
3
)]
−

697,15 - [Fuc
3
Gal(SO

3
)]
−

783,04 380,074
2-
[Fuc
4
(SO
3
Na)
2
− Na]
−

799,03 388,070
2-
[Fuc
3
Gal(SO
3
Na)
2
− Na]
−

- 285,028
3-
Gal(2SO
3

-
)-(1,3)-Fuc-(1,3)-Fuc(SO
3
-
)-(1,3)-Fuc(SO
3
-
)
Gal(4/6,2 SO
3
-
)-(1,3)-Fuc-(1,3)-Fuc-(1,3)-Fuc(2 SO
3
-
)
Fuc-(1,4)-Gal(3SO
3
-
)-(1,3)-Fuc(2SO
3
-
)-(1,3)-Fuc(2SO
3
-
)
827,13 - [Fuc
5
(SO
3
)]

−

843,12 - [Fuc
4
Gal(SO
3
)]
−

859,10 - [Fuc
3
Gal
2
(SO
3
)]
−

944,97 460,094
2-
[Fuc
4
Gal(SO
3
Na)
2
- Na]
−

960,95 - [Fuc

3
Gal
2
(SO
3
Na)
2
- Na]
-

- 339,051
3-
[Fuc
3
Gal
2
(SO
3
)
3
]
3−

989,05 - [Fuc
5
Gal(SO
3
)
−

1005,04 - [Fuc
4
Gal
2
(SO
3
)]
−

1062,79 338,551 [Fuc
3
Gal
2
(SO
3
Na)
3
- Na]
-

1090,87 - [Fuc
5
Gal(SO
3
Na)
2
− Na]
−

1106,87 541,065 [Fuc

4
Gal
2
(SO
3
Na)
2
− Na]
−

*M: muối natri sulfate oligosacarit ** Các ion mảnh đặc trưng cho kiểu liên kết có cường độ thấ
p
Trên phổ ion-âm ESI-MS/MS của mảnh monosulfated galactose
[GalSO
3
]
-
ở m/z 259,02 xuất hiện hai tín hiệu chính có cường độ mạnh
tương đương nhau ở số khối m/z 138,98 (
0,2
X) và m/z 198,99 (
0,2
A). Theo
công bố của Tissot và cộng sự, vị trí nhóm sulfate ảnh hưởng đến cơ chế
phân mảnh vòng đường. Các tín hiệu ở m/z 138,98 (
0,2
X) và m/z 198,99
(
0,2
A) đặc trưng cho vị trí nhóm sulfate ở C-2 và C-4. Kết quả đo phổ

13
C-
NMR của fucoidan khử sulfate SmF3-DS cho thấy tín hiệu nhóm methyl
C-6 không liên kết của vòng Galactose tăng lên đáng kể so với fucoidan
SmF3 trước khi được khử sulfate, điều đó chứng tỏ nhóm sulfate có thể
tồn tại ở vị trí C-6 của gốc đường này. Như vậy, mảnh ở m/z 259,02
tương ứng với hai dạng cấu tạo là Gal(4/6SO
3
-
) và Gal(2SO
3
-
).
Phổ ESI-MS/MS và MALDI-TOF/MS/MS ở chế độ ion âm của
mảnh fucose monosulfate [FucSO
3
]
-
ở m/z 243,0 (hình 3.16 A,B) cũng
xuất hiện các tín hiệu ở m/z 182,9 (
0,2
A) và m/z 138,9 (
0,2
X) cho thấy vị
trí của nhóm sulfate ở C-4 và C-2 của gốc α-L-Fucp. Tuy nhiên, trên phổ
MALDI-TOF/MS/MS tín hiệu ở m/z 182,9 cao hơn tín hiệu ở m/z 138,9
(hình 3.16 A) chỉ ra rằng gốc fucose được sulfate hóa ở vị trí C-4 nhiều

19

hơn C-2. Như vậy, phổ MS/MS của mảnh ở m/z 243,0 cho thấy nó là hỗn
hợp của hai monosulfate fucose gồm Fuc(4 SO
3
-
) và Fuc(2 SO
3
-
).

Hình 3.16. Phổ MALDI-MS/MS của mảnh [FucSO
3
]
-
ở số khối 225,0 (A)
và phổ ESI-MS/MS của mảnh [FucSO
3
]
-
ở số khối 243,02 (B)
Trên phổ MALDI-TOF/MS/MS của mảnh [Fuc
2
(SO
3
Na)
2
-Na]
-
ở
m/z 491,0 (hình 3.17A) xuất hiện tín hiệu của các mảnh ion chính như B
1

ở m/z 225,0; Y
1
ở m/z 243,0 cùng với các tín hiệu nhỏ hơn gồm
0,2
X
o
ở
m/z 138,9;
0,2
A
2
ở m/z 329,0 và
0,2
X
1
ở m/z 386,9. Cho thấy, mảnh
[Fuc
2
(SO
3
Na)
2
-Na]
-
ở m/z 491,0 là hỗn hợp của hai disacarit như được
trình bày trong bảng 3.11 và hình 3.17A. Phổ ESI-MS/MS của mảnh
[Fuc
2
(SO

3
)
3
]
3−
tại m/z 182,33 (3.17B) thu được các tín hiệu của ion Y
1
’ ở
m/z 160,98 tương tứng với gốc disulfated fucose ở phía đầu khử, ion B
1
ở
m/z 225,01 tương ứng với gốc monosulfated fucose ở đầu không khử, ion
0,2
X
o
ở m/z 138,9 tương ứng với gốc sulfate ở vị trí C-2, ion
2,4
A
2
ở m/z
181,99 được sinh ra từ sự phân mảnh của gốc fucose ở phía đầu khử được
sulfate hóa kép ở vị trí C-2 và C-3. Như vậy, mảnh [Fuc
2
(SO
3
)
3
]
3-
tại m/z

182,33 sẽ có cấu tạo như được miêu ta trên hình 3.17B.

Hình 3.17. Phổ MALDI-TOF/MS/MS của [Fuc
2
(SO
3
Na)
2
- Na]
-
tại m/z
491,00 (A) và CID ESI-MS/MS của [Fuc
2
(SO
3
)
3
]
3−
tại m/z 182,33 (B)

20

Tiếp theo chúng tôi nghiên cứu đặc trưng cấu trúc của các mảnh
với số khối m/z 405,10 và 507,03 đây lần lượt là các mảnh disacarit có
chứa galactose [FucGal(SO
3
-
)]
-

và [FucGal(SO
3
-
)
2
]
2-
(bảng 3.11). Kết quả
phân tích phổ khối nhiều lần MALDI-TOF/MS/MS của các mảnh ion này
cho thấy vị trí liên kết thích hợp nhất của các gốc galactose là điểm cuối
của đầu mạch không khử. Các kết quả này chỉ ra rằng các gốc galactose
có thể ở vị trí cuối cùng trên các đoạn mạch có cấu tạo là các gốc α-L-
Fucp liên kết 3. Để làm sáng tỏ thêm nhận định trên, chúng tôi tiến hành
phân tích phổ khối nhiều lần ESI-MS/MS của mảnh ion [GalFuc(SO
3
-
)
3
]
3-

ở số khối m/z 187,65 (Hình 3.18)

Hình 3.18. Phổ khối nhiều lần ESI-MS/MS của mảnh ion
[GalFuc(SO
3
-
)
3
]

3-
tại số khối m/z 187,65
Trên phổ ESI-MS/MS của mảnh [GalFuc(SO
3
)
3
]
3-
m/z 187,65 cho
thấy tín hiệu mạnh nhất là mảnh ở m/z 159,97 của ion B′
1
(phông in
nghiêng để ký hiệu là ion hỗn hợp và dấu “′” để ký hiệu ion được sulfate
hóa kép) tương ứng với gốc galactose sulfate hóa kép ở phía đầu mạch
không khử chiếm đa số (hình 3.18). Bên cạnh đó, tín hiệu khá cao của
mảnh ion
0,2
A
1
ở m/z 182,99 và
0,2
X
1
ở m/z 138,97 chỉ ra sự có mặt của
gốc fucose không khử, được sulfate hóa ở vị trí C-2 và C-4, kết hợp với
tín hiệu ở của mảnh ion
0,3
A
1
ở m/z 168,98 cho thấy nhóm sulfate ở vị trí

C-3 của gốc galactose phía đầu mạch khử. Như vậy, mảnh
[GalFuc(SO
3
)
3
]
3-
m/z 187,65 là hỗn hợp của hai disacarit có cấu tạo như
được trình bay trong bảng 3.11 và hình 3.18.
Kết quả phân tích phổ ESI-MS/MS của ion triply sulfated
tetrasacarit [Fuc
3
Gal(SO
3
)
3
]
3-
ở m/z 285,03 (Hình 3.19) cho thấy khả
năng mảnh này tồn tại ít nhất 3 biến thể cấu trúc (bảng 3.11). Lần đầu
tiên, bằng phương pháp phân tích phổ khối nhiều lần MS/MS của

21

fucooligosacarit sulfate hóa đã xác định được cấu trúc của fucoidan có
mạch nhánh: do không phát hiện thấy các ion của gốc fucose lần lượt
được tách ra (dựa vào các ion chuẩn đoán dạng B
-
). Tín hiệu của mảnh
ion Y

1
-
ở m/z 259,01 [Gal(SO
3
)]
-
cho phép đề xuất biến thể cấu trúc với
gốc sulfated galactose ở phía đầu khử (Fuc-Fuc-Fuc-Gal). Tuy nhiên, như
đã đề cập ở trên chúng tôi không phát hiện thấy các tín hiệu cho thấy sự
tồn tại của mảnh fucotriose, do đó biến thể cấu trúc Fuc-Fuc-Fuc-Gal
không tồn tại. Biến thể cấu trúc Fuc-Fuc-Gal-Fuc cũng không tồn tại, vì
không phát hiện thấy tín hiệu của ion dạng Y
2
′′
ở m/z 187,66 tương ứng
với mảnh (Gal-Fuc). Không phát hiện thấy bất cứ tín hiệu nào của sự
phân mảnh vỡ vòng galactose nằm ở phía trong mạch, hơn nữa kết quả
phân tích methyl hóa cũng không phát hiện thấy các gốc galactose liên
kết 4-, 3- (bảng 3.10). Như vậy, sự phân mảnh vỡ vòng không xảy ra có
thể được giải thích do nhóm sulfate chiếm vị trí C-3 của các gốc
galactose, ở vị trí khó xảy ra sự phá vỡ vòng đường.

Hình 3.19. Phổ khối ESI-MS/MS của mảnh ion [Fuc
3
Gal(SO
3
)]
3-
tại m/z 285,03

Hình 3.20. Phổ khối Negative-ion tandem MALDI-TOF/MS
của ion mảnh [Fuc
3
Gal
2
(SO
3
Na)
2
- Na]
-
tại m/z 960,95.

22

Từ kết quả phân tích phổ khối nhiều lần MALDI-TOF/MS của ion
[Fuc
3
Gal
2
(SO
3
Na)
2
- Na]
-
(hình 3.20) có thể đưa ra dự đoán ít nhất bốn
biến thể cấu trúc của ion này như trình bày trong bảng 3.11. Trong đó với
tập hợp đầy đủ các ion kiểu Y
-

và B
-
được phát hiện

cho phép đề xuất sự
tồn tại của các biến thể cấu trúc duy nhất của ion này như sau:
Fuc-(1→4)-Gal-(1-3)-Fuc-(1-4)-Gal-(1→3)-Fuc
Và Gal-(1→3)-Fuc-(1-4)-Gal-(1-3)-Fuc-(1→3)-Fuc
Như vậy, bằng các phương pháp phân tích khối phổ nhiều lần của
các mảnh oligosacarit trọng lượng phân tử thấp (LMW) được điều chế
bằng phương pháp tự thủy phân, đã xác định được các đặc trưng cấu trúc
của fucoidan SmF3. Các kết quả phân tích đã chỉ ra sự có mặt của các
oligosacarit hỗn hợp có thành phần chứa cả gốc galactose và fucose. Các
mảnh được cấu tạo chỉ gồm các gốc α-L-Fucp với mức độ polyme hóa
lên đến 5 đơn vị gốc đường và có tới 3 nhóm sulfate trên phân tử cũng đã
được phát hiện, kết hợp với các kết quả phân tích liên kết bằng methyl
hóa (bảng 3.10) đã xác định được liên kết chủ yếu trong các mảnh đó là
liên kết 3 và ở mức độ ít hơn là liên kết 4. Phân tích khối phổ (MS) đã
chứng minh được vị trí của gốc sulfate trên cả gốc α-L-Fucp và β-D-Galp
ở C-2 và/hoặc C-4, kết quả phân tích phổ
13
C-NMR của fucoidan sulfate
hóa và đề sulfate hóa còn cho thấy nhóm sulfate ở vị trí C-6 của gốc β-D-
Galp và có thể ở cả C-3 của gốc β-D-Galp ở cuối mạch và gốc α-L-Fucp
liên kết 4, như các mảnh sau đã được tìm thấy và được phân tích:
Fuc (2SO
3
-
)-(1→3)-Fuc(2SO
3

-
), Fuc-(1→3)-Fuc(2,4SO
3
-
),
Fuc(2SO
3
-
)-(1→4)-Fuc(2,3SO
3
-
), Fuc(2,4SO
3
-
)-(1→3)-Fuc;
Gal(4/6,3SO
3
-
)-(1→3/4)-Fuc(2/3SO
3
-
) và Fuc(2,4SO
3
-
)-(1→4)-Gal(2SO
3
-
).
Dựa trên kết quả phân tích methyl hóa đã xác định được kiểu liên
kết chủ yếu của gốc β-D-Galp là liên kết (1→4), trong trường hợp này

sulfate chiếm vị trí C-3, tương ứng với mảnh sau đây đã được phát hiện:
Fuc-(1→4)-Gal(3SO
3
-
)-(1→3)-Fuc(2SO
3
-
)-(1→3)-Fuc(2SO
3
-
).
Phân tích kỹ hơn các oligosacarit hỗn hợp với bậc polymer hóa cao
hơn cho thấy fucoidan SmF3 chứa các đoạn mạch được cấu tạo bởi các
gốc α-L-Fucp và β-D-Galp liên kết luân phiên, như các cấu trúc sau đây
đã được tìm thấy:
Fuc(2SO
3
-
)-(1→4)-Gal-(1→3)- Fuc(2SO
3
-
)-(1→4)-Gal-(1→3)- Fuc
Gal(2SO
3
-
)-(1→3)-Fuc(2SO
3
-
)-(1→4)-Gal-(1→3)- Fuc-(1→3)- Fuc
Tóm tại: Bằng các phương pháp phân tích hóa học kết hợp với các

phương pháp phổ cộng hưởng từ hạt nhân và phổ khối, cấu trúc của
fucoidan SmF3 có thể được mô tả như sau: mạch chính của polysacarit
gồm →3)-Fuc(2,4SO
3
-
)-(1→3)-Fuc(2,4SO
3
-
)-(1→, họa tiết xen vào các

23

gốc (1→4)-Fucp(3SO
3
-
) và (→6)-Galp ở cuối đầu khử. Các vị trí mạch
nhánh thích hợp là các gốc galactose liên kết 1,2,6- hoặc 1,3,6- (kết quả
phân tích methyl hóa, bảng 3.10) và/hoặc các gốc fucose liên kết 1,3,4-
(kết quả phân tích phổ khối, hình 3.19), các gốc này có khả năng tạo liên
kết glycoside với các gốc galactose ở cuối mạch hoặc với các mạch được
tạo thành bởi các gốc α-L-Fucp sulfate hóa và β-D-Galp sulfate hóa liên
kết luân phiên nhau. Cả hai gốc α-L-Fucp và β-D-Galp được sulfate hóa ở
vị trí C-2 và/hoặc C-4 (đôi khi là C-6 của gốc β-D-Galp) và có thể ở vị trí
C-3 của các gốc: β-D-Galp ở cuối mạch, β-D-Galp liên kết 4 và α-L-Fucp
liên kết 4.
Lần đầu tiên đã phát hiện ra sự có mặt đồng thời của các gốc
→3)-α-L-Fucp và gốc →4)-β-D-Galp liên kết luân phiên nhau trong
galactofucan từ chi rong Sargassum.
3.7. ĐÁNH GIÁ MỐI TƯƠNG QUAN GIỮA ĐẶC TRƯNG CẤU
TRÚC VÀ HOẠT TÍNH SINH HỌC CỦA FUCOIDAN

Các nghiên cứu về đặc trưng cấu trúc và hoạt tính sinh học của
fucoidan từ một số loài rong chi Sargassum Việt Nam. Bước đầu cho
phép đưa ra những nhận xét về mối tương quan giữa hoạt tính gây độc tế
bào với đặc trưng cấu trúc của fucoidan như sau: hoạt tính gây độc tế bào
của các mẫu fucoidan nghiên cứu không chỉ phụ thuộc vào hàm lượng và
vị trí nhóm sulfate trên các gốc đường mà còn phụ thuộc vào thành phần
đường đơn và kiểu liên kết giữa các gốc đường cũng như sự phân nhánh
trong phân tử fucoidan.
KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ
KẾT LUẬN
Qua thời gian nghiên cứu chúng tôi đã thu được các kết quả như sau:
1) Fucoidan từ 08 loài rong nâu phổ biến nhất ở vịnh Nha Trang
gồm: S.oligocystum, S.denticapum, S.swartzii, S.polycystum, S.mcclurei,
Padina australis và Turbiaria ornata đã được phân lập.
2) Phân tích thành phần hóa học bao gồm thành phần đường, hàm
lượng uronic axít và hàm lượng sulfate của 08 mẫu fucoidan. Kết quả cho
thấy fucoidan của rong nâu Việt Nam thuộc nhóm sulfate galactofucan,
trong khi đó fucoidan từ các loài rong nâu của vùng ôn đới là các sulfate
fucan.
3) 05 loại fucoidan thô đã được phân đoạn tinh chế và phân tích
thành phần hóa học của tất cả các phân đoạn thu được.
4) 06 mẫu fucoidan thô và 09 phân đoạn của chúng đã được khảo
sát hoạt tính gây độc tế bào trên 05 dòng tế bào: ung thư gan, ung thư

24

màng tim, ung thư phổi, ung thư ruột kết và ung thư vú để tìm ra các
phân đoạn có hoạt tính tốt dùng cho mục đích phân tích cấu trúc.
5) Phân tích các đặc trưng cấu trúc của 05 phân đoạn fucoidan có
hoạt tính gây độc tế bào tốt từ 05 loài rong S.denticapum, S.polycystum,

S.swartzii, S.mcclurei và Turbinaria ornata. Kết quả chỉ ra rằng:
- Cấu trúc mạch chính của 05 phân đoạn fucoidan được tạo thành
chủ yếu bởi các gốc 1→3)- α-L-Fucopyranose.
- Nhóm sulfate gắn chủ yếu ở vị trí C-4 và một phần ở vị trí C-2
trên các gốc đường pyranose.
Việc phân tích các đặc trưng cấu trúc của các phân đoạn fucoidan có
hoạt tính tốt cho phép chúng tôi đưa ra một số nhận định ban đầu về các
yếu tố cấu trúc có ảnh hưởng đến hoạt tính kháng u của fucoidan từ một
số loài rong thuộc chi Sargassum Việt Nam.
6) Bằng phương pháp tự thủy phân (autohydrolysis) sử dụng chính
các nhóm (-SO
3
H) của phân tử fucoidan làm nguồn axít để chuyển hóa
polysacarit fucoidan về dạng oligosacarit-fucoidan phù hợp cho phân tích
khối phổ. Đây là một nét mới của luận án.
7) Lần đầu tiên tại Việt Nam đã kết hợp 2 kỹ thuật phân tích khối
phổ nhiều lần MALDI-TOF/MS/MS và ESI-MS/MS trong phân tích cấu
trúc của polysacarit. Nhờ vậy đã giúp giải thích được một cách tường
minh hơn cấu trúc phức tạp của fucoidan có nguồn gốc từ rong Việt Nam.
Đây là tính mới của luận án so với các nghiên cứu cùng lĩnh vực này ở
trong nước.
Lần đầu tiên cấu trúc của phân đoạn fucoidan SmF3 có hoạt tính
gây độc tế bào ung thư từ rong Sargassum mcclurei đã được thiết lập.
Mạch chính của fucoidan SmF3 gồm: →3)-Fucp(4,2SO
3
-
)-(1→3)-
Fucp(4,2SO
3
-

)-(1→ họa tiết xen vào các gốc (1→4)-Fucp(3SO
3
-
) và
(→6)-Galp ở cuối đầu khử.
KIẾN NGHỊ
- Tiếp tục nghiên cứu phân tích cấu trúc hóa học và hoạt tính sinh
học của fucoidan từ các loài rong nâu khác của Việt Nam nhằm tìm kiế
các hợp chất mới có hoạt tính kháng ung thư và các hoạt tính sinh học
khác từ đó làm cơ sở cho việc khai thác và sử dụng hiệu quả nguồn tài
nguyên rong nâu của Việt Nam.
- Nghiên cứu chuyển hóa fucoidan bằng con đường xúc tác sinh
học (chuyển hóa bằng enzyme) để tạo ra các sản phẩm oligo-fucoidan
mới có hoạt tính sinh học đặc hiệu hơn và mạnh hơn sử dụng làm thực
phẩm chức năng và thuốc.