Khảo sát hoạt tính chống oxy hóa của cây hồ đằng rễ mành (cissus verticillata (l ) nicolson c e jarvis)

TRƯỜNG ĐẠI HỌC TÂY ĐÔ
KHOA DƯỢC – ĐIỀU DƯỠNG

KHOÁ LUẬN TỐT NGHIỆP ĐẠI HỌC
CHUYÊN NGÀNH DƯỢC HỌC
MÃ SỐ: 52720401

KHẢO SÁT HOẠT TÍNH CHỐNG OXY HÓA
CỦA CÂY HỒ ĐẰNG RỄ MÀNH
(Cissus verticillata (L.) Nicolson & C.E.Jarvis)

Cán bộ hướng dẫn:
PGS.TS. TRẦN CÔNG LUẬN
DS. TRÌ KIM NGỌC

Cần Thơ, năm 2017

Sinh viên thực hiện:
NGUYỄN LÝ THẢO
MSSV: 12D720401163
LỚP: ĐH DƯỢC 7B


LỜI CẢM ƠN
Từ xưa đến nay, không có sự thành công nào mà không gắn liền với sự hỗ trợ, giúp đỡ
dù ít hay nhiều từ mọi người. Trong thời gian 5 năm học tập, gắn bó với giảng đường
đại học, em đã nhận được rất nhiều sự giúp đỡ từ thầy cô, gia đình và bạn bè.
Với sự biết ơn sâu sắc, em xin gửi lời cảm ơn chân thành nhất đến tất cả thầy cô ở
khoa Dược – Điều dưỡng đã cùng với tri thức, tâm huyết của mình để truyền đạt tất cả
vốn kiến thức quý báu cho chúng em trong suốt thời gian học tập tại trường. Thầy cô
không những chỉ dạy cho chúng em tri thức mà còn chỉ dạy cho chúng em cách làm

người để chúng em có đủ hành trang khi bước vào đời. Đó là những điều vô cùng quý
báu mà không có bất cứ thứ gì có thể so sánh được.
Em cũng xin gửi lời cảm ơn chân thành nhất đến thầy Trần Công Luận và cô
Trì Kim Ngọc, người đã tận tình hướng dẫn để em có thể hoàn thành luận văn tốt
nghiệp. Do kiến thức còn hạn chế nên cũng không thể tránh khỏi những sai sót trong
quá trình làm luận văn và báo cáo, em rất mong nhận được ý kiến đóng góp quý báu
của quý thầy cô để em có thể học hỏi được nhiều hơn và hoàn thiện bài báo cáo khóa
luận tốt hơn.
Sau cùng, em xin kính chúc thầy cô của khoa Dược – Điều dưỡng cũng như toàn bộ
thầy cô giáo của trường Đại học Tây Đô thật nhiều sức khỏe và niềm tin để tiếp tực
thực hiện hiện sứ mệnh cao đẹp truyền đạt kiến thức cho thế hệ mai sau.
Trân trọng.

i


LỜI CAM ĐOAN
Em cam đoan đây là công trình nghiên cứu của em.
Các số liệu, kết quả, hình ảnh nêu trong luận văn là trung thực và chính xác.
Sinh viên thực hiện

Nguyễn Lý Thảo

ii


TÓM TẮT
Đặt vấn đề
Hồ đằng rễ mành là một loại cây còn khá mới ở Việt Nam, nó được di thực từ châu
Mỹ. Mọi người chỉ biết nó dùng để làm cảnh mà ít ai biết được, nó cũng đem lại rất

nhiều công dụng trị bệnh như: Tăng huyết áp, đái tháo đường,…Đề tài này sẽ góp
phần tìm hiểu thêm về giá trị mà cây thuốc đem lại với các nội dung: Mô tả định danh,
khảo sát vi học, định tính sơ bộ thành phần hóa học và khảo sát tác dụng sinh học
chống oxy hóa của cây.
Đối tượng và phương pháp nghiên cứu
Dược liệu là cây Hồ đằng rễ mành (Cissus verticillata (L.) Nicolson & C.E.Jarvis) thu
hái vào tháng 10 năm 2016 tại tỉnh Bạc Liêu. Sau khi phơi khô, sử dụng bột dược liệu
để mô tả định danh, khảo sát vi học, định tính sơ bộ thành phần hóa học. Từ 3 kg dược
liệu HĐRM, sử dụng 1,6 lít cồn 96 % để làm ẩm dược liệu và 33 lít cồn 96 % chiết
ngấm kiệt với tốc độ xả 10 – 15 giọt/ phút.
Sau đó, đem toàn bộ dịch chiết thu được lắc phân bố lần lượt với các dung môi hữu cơ:
PE, EtOAc để được các cao phân đoạn. Thử hoạt tính chống oxy hóa của các cao phân
đoạn bằng SKLM và quang phổ UV – Vis.
Kết quả và kết luận
Định danh chính xác tên khoa học của mẫu thực vật thu hái được dùng trong nghiên
cứu là Cissus verticilla (L.) Nicolson & C.E.Jarvis, họ Nho (Vitaceae).
Qua khảo sát sơ bộ thành phần hóa học, xác định trong cây có flavonoid và một số
thành phần hóa học khác: Carotenoid, tinh dầu, tannin, saponin, chất khử và hợp chất
polyuronid.
Chiết được cao tổng.
Tiến hành lắc phân bố lần lượt thu được các cao với khối lượng như sau: 47,15 g cao
PE; 19,43 g cao EtOAc; 27,53 g cao cồn nước còn lại.
Kết quả thử nghiệm tác dụng chống oxy hóa bằng sắc ký lớp mỏng cho thấy các cao
đều có tác dụng chống oxy hóa và có thể sơ bộ kết luận cao EtOAc cho kết quả rõ
nhất.
Tiến hành thăm dò khả năng chống oxy hóa của các cao bằng phương pháp đo quang
trên máy quang phổ UV – Vis cũng giúp khẳng định cao EtOAc chống oxy hóa mạnh
nhất trong các cao.

iii

MỤC LỤC
DANH SÁCH BẢNG ................................................................................................ vii
DANH SÁCH HÌNH ................................................................................................viii
DANH MỤC CHỮ VIẾT TẮT ................................................................................... ix
CHƯƠNG 1. ĐẶT VẤN ĐỀ ....................................................................................... 1
CHƯƠNG 2. TỔNG QUAN TÀI LIỆU ....................................................................... 2
2.1. Thực vật học ...................................................................................................... 2
2.1.1. Vị trí phân loại ............................................................................................ 2
2.1.2. Đặc điểm họ Nho (Vitaceae)........................................................................ 3
2.1.3. Sơ lược về chi Cissus................................................................................... 3
2.1.4. Cissus verticillata (L.) Nicolson & C.E.Jarvis ............................................. 4
2.1.4.1. Mô tả hình thái.......................................................................................... 4
2.1.4.2. Phân bố, sinh thái...................................................................................... 4
2.1.4.3. Cách trồng ................................................................................................ 4
2.1.4.4. Thu hái, chế biến ...................................................................................... 5
2.2. Thành phần hóa học ........................................................................................... 5
2.3. Một số tác dụng dược lý của HĐRM.................................................................. 5
2.3.1. Tác dụng hạ đường huyết ............................................................................ 5
2.3.2. Tác dụng chống dị ứng và chống viêm ........................................................ 6
2.4. Nghiên cứu tác dụng chống oxy hóa .................................................................. 6
2.4.1. Khái niệm về gốc tự do ................................................................................ 6
2.4.2. Chất chống oxy hóa ..................................................................................... 7
2.4.3. Sự hình thành các gốc tự do của oxy trong cơ thể ........................................ 7
2.4.3.1. Sự hình thành gốc tự do trong trao đổi bình thường .................................. 8
2.4.3.2. Sự hình thành gốc tự do ngẫu nhiên .......................................................... 8
2.4.4. Ảnh hưởng của các yếu tố ngoại sinh đến sự hình thành gốc tự do .............. 9
2.4.4.1. Ảnh hưởng của các xenobiotic .................................................................. 9
2.4.4.2. Ảnh hưởng của các tác nhân viêm và hoại tử gan ...................................... 9

2.4.4.3. Ảnh hưởng của tác nhân tiêu máu và bầm huyết ..................................... 10
2.4.4.4. Ảnh hưởng của điều kiện sống ................................................................ 10
2.4.5. Sự phòng vệ của cơ thể chống lại gốc tự do ............................................... 11
iv


2.4.5.1. Hệ thống phòng vệ các gốc tự do trong cơ thể......................................... 11
2.4.5.2. Hệ thống enzym chống oxy hóa ở gan .................................................... 11
2.4.6. Các phương pháp khảo sát hoạt tính chống oxy hóa................................... 13
2.4.6.1. Phương pháp ức chế gốc tự do DPPH ..................................................... 13
2.4.6.2. Phương pháp đánh giá khả năng đánh bắt gốc superoxyd O2- (Superoxyd
scavenging) ......................................................................................................... 13
2.4.6.3. Phương pháp xác định hàm lượng MDA ................................................. 14
2.4.6.4. Phương pháp đánh giá khả năng kết hợp với ion sắt II ............................ 14
2.4.6.5. Phương pháp đánh giá khả năng đánh bắt peroxyhydro H2O2 ................. 14
CHƯƠNG 3. PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU ........................................................ 16
3.1. Đối tượng nghiên cứu ...................................................................................... 16
3.1.1. Nguyên liệu ............................................................................................... 16
3.1.2. Dung môi, hóa chất ................................................................................... 16
3.1.3. Trang thiết bị nghiên cứu ........................................................................... 16
3.2. Phương pháp nghiên cứu ................................................................................. 16
3.2.1. Mô tả định danh......................................................................................... 16
2.2.1.1. Hình thái ................................................................................................. 16
2.2.1.2. Vi học ..................................................................................................... 16
3.2.2. Khảo sát sơ bộ thành phần hóa học ............................................................ 18
3.2.3. Chiết xuất dược liệu .................................................................................. 19
3.2.4. Khảo sát hoạt tính chống oxy hóa bằng thử nghệm DPPH ......................... 20
3.2.4.1. Chuẩn bị thuốc thử và mẫu thử ............................................................... 20
3.2.4.2. Khảo sát hoạt tính chống oxy hóa của các cao trên SKLM với TT DPPH20
3.2.4.3. Khảo sát hoạt tính chống oxy hóa của các cao bằng cách đo độ hấp thu

quang phổ UV – Vis ............................................................................................ 21
CHƯƠNG 4. KẾT QUẢ VÀ BÀN LUẬN ............................................................... 22
4.1. Mô tả định danh ............................................................................................... 22
4.1.1. Hình thái.................................................................................................... 22
4.1.2. Vi học........................................................................................................ 23
4.1.2.1. Vi phẫu ................................................................................................... 23
4.1.2.2. Soi bột .................................................................................................... 32
4.2. Khảo sát sơ bộ thành phần hóa học .................................................................. 36
v


4.3. Chiết xuất dược liệu......................................................................................... 39
4.4. Khảo sát hoạt tính chống oxy hóa bằng thử nghệm DPPH ............................... 39
4.4.1. Khảo sát hoạt tính chống oxy hóa của các cao trên SKLM với TT DPPH .. 39
4.4.2. Khảo sát hoạt tính chống oxy hóa của các cao bằng cách đo độ hấp thu
quang phổ UV – Vis ............................................................................................ 40
4.5. Bàn luận .......................................................................................................... 43
CHƯƠNG 5. KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ .............................................................. 44
5.1. Kết luận ........................................................................................................... 44
5.1.1. Thực vật học .............................................................................................. 44
5.1.2. Hóa học ..................................................................................................... 44
5.1.3. Khảo sát hoạt tính chống oxy hóa .............................................................. 44
5.2. Kiến nghị ......................................................................................................... 44
TÀI LIỆU THAM KHẢO.......................................................................................... 45

vi


DANH SÁCH BẢNG
Bảng 2.1. Các ROS và RNS trong cơ thể sinh học ............................................................ 6

Bảng 3.1. Phản ứng thử nghiệm DPPH ........................................................................... 21
Bảng 4.1. Kết quả khảo sát sơ bộ thành phần hóa học ..................................................... 37
Bảng 4.2. Kết quả xác định độ ẩm................................................................................... 39
Bảng 4.3. Kết quả thăm dò khả năng chống oxy hóa của 3 cao ở nồng độ 1 mg/ml ......... 40
Bảng 4.4. Kết quả đo độ hấp thu của cao EtOAc ở 5 nồng độ ......................................... 40
Bảng 4.5. Kết quả đo độ hấp thu của chất đối chứng vitamin C ở 5 nồng độ ................... 41
Bảng 4.6. Kết quả xác định giá trị IC50 của các mẫu........................................................ 42

vii


DANH SÁCH HÌNH
Hình 2.1. Sơ đồ vị trí phân loại thực vật của HĐRM .................................................... 2
Hình 2.2. Cây Hồ đằng rễ mành ................................................................................... 4
Hình 3.1. Sơ đồ chuẩn bị các dịch chiết ..................................................................... 18
Hình 3.2. Sơ đồ quy trình chiết xuất dược liệu HĐRM .............................................. 19
Hình 4.1. Các bộ phận của cây HĐRM ...................................................................... 22
Hình 4.2. Vi phẫu phiến lá HĐRM và sơ đồ kèm theo ............................................... 23
Hình 4.3. Chi tiết các bộ phận trong phiến lá ............................................................. 24
Hình 4.4. Vi phẫu cuống lá HĐRM và sơ đồ kèm theo .............................................. 25
Hình 4.5. Chi tiết các bộ phận trong cuống lá............................................................. 26
Hình 4.6. Vi phẫu thân già HĐRM và sơ đồ kèm theo ............................................... 27
Hình 4.7. Chi tiết các bộ phận trong thân già ............................................................ 28
Hình 4.8. Vi phẫu thân non HĐRM và sơ đồ kèm theo .............................................. 29
Hình 4.9. Chi tiết các bộ phận trong thân non ............................................................ 29
Hình 4.10. Vi phẫu rễ già bất định HĐRM và sơ đồ kèm theo ................................... 30
Hình 4.11. Chi tiết các bộ phận trong rễ già bất định HĐRM ..................................... 31
Hình 4.12. Vi phẫu rễ non bất định HĐRM và sơ đồ kèm theo .................................. 32
Hình 4.13. Chi tiết các bộ phận trong rễ non ............................................................. 32
Hình 4.14. Bột lá ....................................................................................................... 33

Hình 4.15. Các cấu tử trong bột lá HĐRM ................................................................. 33
Hình 4.16. Bột thân.................................................................................................... 34
Hình 4.17. Các cấu tử trong bột thân HĐRM ............................................................. 34
Hình 4.18. Bột rễ ....................................................................................................... 35
Hình 4.19. Các cấu tử trong bột rễ HĐRM ................................................................. 35
Hình 4.20. SKLM thăm dò hoạt tính chống oxy hóa .................................................. 39
Hình 4.21. Biểu đồ đường chuẩn của cao EtOAc ....................................................... 41
Hình 4.22. Biểu đồ đường chuẩn của vitamin C ......................................................... 41
Hình 4.23. Biểu đồ so sánh giá trị IC50 của các mẫu ................................................... 42

viii


DANH MỤC CHỮ VIẾT TẮT
ADN

: Acid deoxyribonucleic

DMSO
DPPH

: Dimethyl sulfoxyd
: 1,1 – diphenyl – 2 - picrylhydrazyl

EtOAc
HĐRM
HTCO

: Ethyl acetat
: Hồ đằng rễ mành

: Hoạt tính chống oxy hóa

IC50
GSH

: Inhibitory concentration half maximal
: Glutathion

GSH – Px
LDL
MDA

: Glutathion peroxidase
: Low density lipoprotein
: Malonyl dialdehyd

MeOH
NBT
RNS
ROS
PE
SOD
SKLM
TT
UV – Vis

: Methanol
: Nitroblue tetrazolium
: Reactive oxygen species
: Reactive nitrogen species

: Petroleum ether (ether dầu hỏa)
: Superoxyd dismutase
: Sắc ký lớp mỏng
: Thuốc thử
: Ultra violet – visible

ix


CHƯƠNG 1. ĐẶT VẤN ĐỀ
Việt Nam là một trong những đất nước có điều kiện tốt khí hậu tốt để thực vật phát
triển và tạo ra nguồn nguyên liệu dồi dào cho việc nghiên cứu tạo ra các sản phẩm có
giá trị trị bệnh cho con người. Chính vì vậy, từ ngàn xưa, ông cha ta đã khám phá sức
mạnh của thiên nhiên và biết sử dụng nhiều loại thực vật nhằm mục đích chữa bệnh,
đồng thời tránh được một số tác nhân có hại cho sức khỏe con người và được đặt lên
hàng đầu.
Xã hội ngày càng phát triển thì con người càng phải đối đầu với những loại bệnh mới,
nguy hiểm hơn rất nhiều như: Đái tháo đường, tăng huyết áp, ung thư,…Từ nguyên
nhân trên, nhu cầu về các loại thuốc cũng tăng cao. Do đó, việc nghiên cứu các chất
mang hoạt tính sinh học cao có trong các loài cây, cỏ có tác dụng thiết thực trong đời
sống hàng ngày là vấn đề quan tâm của toàn xã hội.
Gần đây, có một loại cây di thực từ châu Mỹ du nhập vào Việt Nam và được sử dụng
như một loại cây cảnh đẹp và lạ, đó là cây Hồ đằng rễ mành (Cissus verticillata (L.)
Nicolson & C.E.Jarvis). Cây này có thể bắt gặp ở quán cà phê, nơi bán cây cảnh, nhà
hàng,… Tuy nhiên, bên cạnh việc dùng để làm cảnh, cây còn đem lại một số tác dụng
chữa bệnh: Đái tháo đường, hạ đường huyết (Almeida E.R., et al (2007); Pepato M.T.,
et al (2003); Viana G.S.B., et al (2004)), chống viêm và chống dị ứng (Quilez A.M.,
et al (2004)). Về hóa thực vật, trong cây có sự hiện diện của: Flavonoid, saponin,
coumarin, steroid. Do cây mới xuất hiện ở Việt Nam trong khoảng thời gian gần đây
nên việc theo dõi sự phát triển của cây với sinh thái, thổ nhưỡng cần được quan tam

nhiều hơn.
Để góp phần tìm hiểu thêm về giá trị mà cây thuốc đem lại, đề tài “Khảo sát hoạt tính
chống oxy hóa của cây Hồ đằng rễ mành (Cissus verticillata (L.) Nicolson &
C.E.Jarvis) được tiến hành với các nội dung sau:
- Mô tả định danh, khảo sát vi học các bộ phận của cây HĐRM.
- Định tính sơ bộ thành phần hóa thực vật của cây HĐRM.
- Khảo sát tác dụng sinh học: Thử hoạt tính chống oxy hóa của cây HĐRM.

1


CHƯƠNG 2. TỔNG QUAN TÀI LIỆU
2.1. Thực vật học
2.1.1. Vị trí phân loại
Tên gọi: Hồ đằng rễ mành
Tên gọi khác: Liêm hồ đằng, Mành mành
Tên nước ngoài: Princess vine (tiếng Anh)
Tên khoa học: Cissus verticillata (L.) Nicolson & C.E.Jarvis
Đồng danh: Cissus sicyoides L.
Họ: Nho (Vitaceae)
Vị trí phân loại theo hệ thống Armen Takhtalan (Takhtalan A, 2009).
Thực vật bậc cao (Cormobionta)

Ngành Ngọc Lan (Magnoliophyta)

Lớp Ngọc Lan (Magnoliopsida)

Phân lớp Hoa hồng (Rosidae)

Bộ Nho (Vitales)

Họ Nho (Vitaceae)

Chi Cissus

Loài Cissus verticillata (L.) Nicolson & C.E.Javis
Hình 2.1. Sơ đồ vị trí phân loại thực vật của HĐRM
2


2.1.2. Đặc điểm họ Nho (Vitaceae) (Trương Thị Đẹp, 2007)
Thân: Cây bụi leo hay dây leo thân gỗ bằng vòi cuốn mọc đối diện với lá.
Lá: Đơn, mọc cách, có khía răng hoặc có thùy hình chân vịt hoặc lá kép hình chân vịt
với 3 – 5 lá chét. Lá kèm nhỏ, dễ rụng.
Cụm hoa: Xim, tán, ngù, chùm, đôi khi chùm kép ở nách lá hay đối diện với lá (do sự
phát triển cộng trụ của thân).
Hoa: Nhỏ, đều, lưỡng tính hay đơn tính vì trụy, mẫu 4 hay 5, 4 vòng.
Bao hoa: 4 – 5 lá đài, 4 – 5 cánh hoa, tiền khai van; cánh hoa có thể rời hay dính nhau
ở chóp như một cái nón.
Bộ nhị: Số nhị bằng số cánh hoa, rời và mọc trước cánh hoa. Đĩa mật dày nằm ở phía
trong vòng nhị.
Bộ nhụy: 2 lá noãn dính nhau thành bầu trên 2 ô, mỗi ô 2 noãn.
Quả: Mọng, chứa 2 – 4 hạt, hạt có nội nhũ.
2.1.3. Sơ lược về chi Cissus
Cây bụi leo, có tua cuốn đối diện với lá. Lá đơn, thường có răng, có khi chia thùy; lá
kèm 2, nhỏ. Cụm hoa có cuống, thành tán hay ngù, đối diện với lá; hoa có cuống. Đài
hình đấu. Cánh hoa 4, xếp van, tách ra ở đỉnh khi hoa nở. Nhị 4, đối diện với cánh hoa,
đính xung quanh đĩa; bao phấn hướng trong. Đĩa mật nguyên, lượn sóng hay chia thùy.
Bầu dính suốt chiều cao với đĩa mật; 2 ô, 2 noãn cong; vòi dạng cột; đầu nhụy ít rõ.
Quả mọng hơi nạc; hạt độc nhất, có 2 hố nhỏ ở gốc (Võ Văn Chi, 2004;

Phạm Hoàng Hộ, 2000).
Gồm tới 350 loài phân bố ở các vùng nhiệt đới và vùng nóng. Ở nước ta có một số loài
được sử dụng (Võ Văn Chi, 1997; Phạm Hoàng Hộ, 2000):
- Cissus adnata Roxb. Dây nôi.
- Cissus annamica Gagn. Hồ đằng trung bộ.
- Cissus assamica (Laws.) Craib. Hồ đằng assam.
- Cissus astrotricha Gagn. Hồ đằng lông sao.
- Cissus bachmaensis Gagn. Hồ đằng bạch mã.
- Cissus evrardii Gagn. Hồ đằng evrad.
- Cissus hastata Pl. Hồ đằng mũi giáo.
- Cissus hexangularis Thor. ex Gagn. Hồ đằng 6 cạnh.
- Cissus javana DC. Hồ đằng Java, Hồ đằng hai màu.
- Cissus modeccoides Pl. Chìa vôi.
- Cissus quadrangulus L. Hồ đằng 4 cánh.
- Cissus repens Lamk. Hồ đằng bò.
- Cissus rosea Royle. Hồ đằng hường.
3


2.1.4. Cissus verticillata (L.) Nicolson & C.E.Jarvis
2.1.4.1. Mô tả hình thái
- HĐRM là cây leo tua cuốn, cao 5 – 7 m hoặc hơn, phân nhiều cành mảnh, nhẵn,
có hệ thống rễ bất định mọc ở các nách lá chạy dọc suốt thân cành. Những rễ này
buông thòng mềm mại, màu hồng thắm khi còn non rồi chuyển qua màu vàng xám khi
già dần.
- Lá mọc đơn so le, phiến lá hình tim hẹp, dài 6 – 10 cm, rộng 4 – 6 cm, cuống lá
dài 2 – 3 cm, đậm màu, tua cuốn mảnh đối diện với cuốn lá.
- Cụm hoa là một xim ngắn dạng tán đứng đối diện với lá, mang nhiều hoa nhỏ
lưỡng tính với 4 cánh hoa màu vàng lục, 4 nhị đứng đối diện cánh hoa, bầu trên.
- Quả mọng, gần hình cầu, đường kính 8 – 10 cm, chứa 1 – 4 hạt, khi chín màu

đen (Nguồn dẫn: Http://blogcaycanh.vn; ).

Hình 2.2. Cây Hồ đằng rễ mành

2.1.4.2. Phân bố, sinh thái
- HĐRM là cây di thực phân bố tự nhiên ở nhiều vùng của châu Mỹ, từ Bắc Mỹ
cho đến Trung và Nam Mỹ.
- Ở nước ta, cây được trồng làm cảnh ở nhiều nơi.
2.1.4.3. Cách trồng
- Cây rất dễ trồng, chọn phần thân bánh tẻ, bỏ lá, chỉ chừa một phần cuống, cắt
thành từng đoạn có từ hai đến ba mắt lá để làm hom giâm, cắm trong những túi bầu
(Nguồn dẫn: Http://caycanhsanvuon.vn; ).
4


- Che nắng và theo dõi để tưới nước bổ sung sao cho vừa đủ ấm. Sau một thời
gian, các chồi nách phát triển thành cành mới thì đem túi bầu đi trồng (Nguồn dẫn:
Http://caycanhsanvuon.vn; ; ).
2.1.4.4. Thu hái, chế biến
- Lá tươi, thân hay rễ rửa sạch, đun với nước để ngâm chân (Nguồn dẫn:
Http://caycanhsanvuon.vn). .
- Thân, lá, rễ giã lấy nước giữ luôn bã để đắp lên vết bỏng hay vết ngứa, ngoài ra
có thể phơi khô để
Http://caycanhsanvuon.vn).

nguyên

hoặc

nghiền

thành

bột

(Nguồn

dẫn:

2.2. Thành phần hóa học
Các công trình nghiên cứu về thành phần hóa học của cây HĐRM không nhiều.
Theo Barbosa W.L.R. et al (2002); Beltrame F.L. et al (2001), trong cây HĐRM có
flavonoid với 2 cấu trúc chính là: Kaemferol – 3 – O – rhamnosid và quercetin – 3 – O
– rhamnosid. Luteolin, kaempferol, luteonin – 3 – sulfat được chiết từ dung dịch nước
sau khi thủy phân.

Quercetin – 3 – O – rhamnosid
CTPT: C21H21O11

Kaempferol – 3 – O – rhamnosid
CTPT: C21H20O10
2.3. Một số tác dụng dược lý của HĐRM

2.3.1. Tác dụng hạ đường huyết
Theo Almeida E.R., et al (2007), dịch chiết lá tươi của cây HĐRM làm giảm đáng kể
lượng đường trong máu ở chuột mắc bệnh tiểu đường.
Theo Pepato M.T., et al (2003), việc sử dụng lâu dài dịch của lá cây HĐRM ảnh
hưởng đến các biến đổi sinh lý và trao đổi chất của carbohydrat, lipid, protein của
chuột bị bệnh tiểu đường.
5

Theo Viana G.S.B., et al (2004), chỉ ra lợi ích tiềm năng của dịch chiết nước từ cây
HĐRM trong việc làm giảm đường huyết trong máu trên chuột bị bệnh tiểu đường
type 2.
2.3.2. Tác dụng chống dị ứng và chống viêm
Theo Quilez A.M., et al (2004), cho thấy tác dụng chống dị ứng và chống viêm thông
qua thử nghiệm in vitro phóng thích histamin từ tế bào mast của dịch chiết methanol
trong cây HĐRM.
2.4. Nghiên cứu tác dụng chống oxy hóa
2.4.1. Khái niệm về gốc tự do
Các gốc tự do hay nói chính xác hơn là các chất hoạt động chứa oxy và nitơ (ROS và
RNS), là các dẫn xuất dạng khử của oxy và nitơ phân tử. Chúng được chia thành hai
nhóm lớn là các gốc tự do và các dẫn xuất không phải gốc tự do.
Bảng 2.1. Các ROS và RNS trong cơ thể sinh học
O2•–
OH•
ROO•
H2O2

1

Gốc superoxyd
Gốc hydroxyl
Gốc peroxyd
Hydrogenperoxyd

O2
NO•
ONOOHOCl

Oxy đơn
Oxyd nitrid
Peroxynitrid
Acid hypochlorique

Các gốc tự do là các phân tử hoặc nguyên tử có một hoặc nhiều điện tử độc thân. Các
dẫn xuất không phải gốc tự do như oxy đơn, hydroperoxyd, nitroperoxyd là tiền chất
của các gốc tự do. Các ROS và RNS phản ứng rất nhanh với các phân tử quanh nó do
đó gây tổn thương và làm thay đổi giá trị sinh học của các đại phân tử sinh học như
ADN, protein, lipid (Proctor P.H., 1989; Favier A., 2003; Pincemail J., et al, 1998).
Các ROS và RNS được tạo ra một cách tất yếu trong quá trình trao đổi chất và tùy
thuộc vào nồng độ mà chúng có tác động tốt hoặc xấu đến cơ thể. Ở nồng độ thấp, các
ROS và RNS là các tín hiệu làm nhiệm vụ: Điều hòa phân ly tế bào, kích hoạt các yếu
tố phiên mã cho các gen tham gia quá trình miễn dịch, kháng viêm và điều hòa biểu
hiện các gen mã hóa cho các enzym chống oxy hóa. Ở nồng độ cao, các ROS và RNS
oxy hóa các đại phân tử sinh học gây nên: Đột biến ở ADN, biến tính protein, oxy hóa
lipid (Favier A., 2003; Pincemail J., et al, 1998).
Sự phá hủy các đại phân tử sinh học bởi ROS và RNS là nguyên nhân của rất nhiều
bệnh nguy hiểm. Sự oxy hóa của các LDL dẫn đến sự hình thành các vạch lipid trên
thành mạch máu, giai đoạn đầu tiên của bệnh tăng huyết áp và nhiều bệnh tim mạch.
Các ROS và RNS tấn công phospholipid màng tế bào làm thay đổi tính mềm dẻo của
màng, thay đổi chức năng của nhiều thụ thể trên màng do đó ảnh hưởng đến tính thẩm
thấu của màng cũng như việc trao đổi thông tin giữa tế bào và môi trường. Sự oxy hóa
6


các ADN bởi các ROS và RNS gây nên biến dị di truyền là một trong những nguy cơ
phát triển ung thư. Nhiều enzym và protein vận chuyển cũng bị oxy hóa và vô hoạt bởi
ROS và RNS (Favier A., 2003; Gardès – Albert M., et al, 2003; Pincemail J., et al,

1998). Sự tích lũy các sản phẩm của sự oxy hóa các cấu tử tế bào gây nên hiện tượng
lão hóa sớm. Các ROS và RNS cũng tham gia vào quá trình gây các bệnh suy giảm hệ
thần kinh như Alzheimer, trong đó hiện tượng chết của các tế bào thần kinh gắn liền
với hiện tương phân ly tế bào gây nên bởi các ROS và RNS (Gardès – Albert M.,
et al, 2003).
Để bảo vệ cơ thể khỏi tác động xấu của các ROS và RNS, tế bào được trang bị một hệ
thống bảo vệ gồm các chất chống oxy hóa.
2.4.2. Chất chống oxy hóa
Các chất chống oxy hóa là các hợp chất có khả năng làm chậm lại, ngăn cản hoặc đảo
ngược quá trình oxy hóa các hợp chất có trong tế bào của cơ thể (Jovanovic S.V., et al
2000; Lachman J., et al, 2000; Singh N., et al, 2004).
Dựa trên nguyên tắc hoạt động, các chất chống oxy hóa được phân thành hai loại: Các
chất chống oxy hóa bậc một và các chất chống oxy hóa bậc hai. Các chất chống oxy
hóa bậc một khử hoặc kết hợp với các gốc tự do do đó kìm hãm pha khởi phát hoặc bẻ
gãy dây chuyền phản ứng của quá trình oxy hóa. Các chất chống oxy hóa bậc hai kìm
hãm sự tạo thành các gốc tự do (hấp thụ các tia cực tím; tạo phức với các kim loại kích
hoạt sự tạo thành gốc tự do như đồng, sắt; vô hoạt oxy đơn).
Hệ thống các chất chống oxy hóa của cơ thể người được cung cấp bởi hai nguồn: Bên
trong và bên ngoài. Các chất chống oxy hóa bên trong bao gồm các protein (ferritin,
transferrin, albumin, protein sốc nhiệt) và các enzym chống oxy hóa (superoxyd
dismutase, glutathion peroxidase, catalase). Các chống oxy hóa bên ngoài là các cấu tử
nhỏ được đưa vào cơ thể qua con đường thức ăn bao gồm vitamin E, vitamin C, các
carotenoid và các hợp chất phenolic (Niki E., et al, 1995; Lachman J., et al, 2000;
Pincemail J., et al, 1998; Vansant G., et al, 2004). Các chất này có nhiều trong rau và
quả. Chúng được coi là các chất chống oxy hóa tự nhiên. Việc sử dụng nhiều rau quả
là con đường đơn giản và hữu hiệu nhất để tăng cường hoạt động của hệ thống chống
oxy hóa và ngăn ngừa các bệnh có nguồn gốc stress oxy hóa.
2.4.3. Sự hình thành các gốc tự do của oxy trong cơ thể
Trong tế bào, gốc tự do được sinh ra do các phản ứng chuyển nhường điện tử. Những
phản ứng này có thể được thực hiện bởi enzym hoặc không enzym, thông qua sự oxy

hóa khử của các ion kim loại chuyển tiếp (Viện Dược liệu, 2006).

7


2.4.3.1. Sự hình thành gốc tự do trong trao đổi bình thường
Trong sinh học, nguồn quan trọng sinh ra gốc tự do là sự cung cấp điện tử ở chuỗi hô
hấp tế bào trong ty lạp thể cho oxy. Trong ty lạp thể có một hệ thống enzym và các
chất trung gian làm nhiệm vụ vận chuyển hydro và điện tử từ cơ chất tới oxy. Những
hợp chất này tạo ra một loại các phản ứng dây chuyền nối tiếp nhau gọi là chuỗi hô
hấp tế bào (Viện Dược liệu, 2006).

Cơ chất

Quá trình oxy nhận điện tử ở chuỗi hô hấp tế bào thực tế phải xảy ra qua nhiều giai
đoạn. Mỗi giai đoạn oxy chỉ nhận được một điện tử. Oxy nhận điện tử đầu tiên tạo ra
gốc superoxyd (O2•–). Oxy nhận điện tử chủ yếu ở màng ty lạp thể. Khoảng 80 %
lượng O2•– hình thành chuyển vào trong ty lạp thể, còn 20 % thoát ra bào tương. O2•–
có các chức năng như sau: Là nguồn sinh ra H2O2; cùng với NO2 và các chất phóng
thải từ tế bào thành tham gia chi phối trạng thái tĩnh hay hoạt động của tiểu cầu, quyết
định sự bám dính hay kết tụ của tiểu cầu vào thành mạch (Viện Dược liệu, 2006).
Các gốc O2•– hình thành nhanh chóng được enzym SOD chuyển thành H2O2 theo cơ
chế tự oxy hóa khử:

H2O2 là tác nhân oxy hóa và dễ dàng bị phân hủy theo phản ứng:

Như vậy, ở cơ thể bình thường, oxy qua các chuyển hóa trong cơ thể tạo ra O2•–, H2O2
để thực hiện các chức năng sinh lý. Chúng chỉ tồn tại với một nồng độ vô cùng thấp,
dễ dàng bị loại bỏ và không độc hại cho cơ thể (Viện Dược liệu, 2006).
2.4.3.2. Sự hình thành gốc tự do ngẫu nhiên

Rất có thể do chuyển động nhiệt hoàn toàn ngẫu nhiên mà các gốc O2•– và H2O2 va đập
với nhau, không có men đặc hiệu xúc tác tạo ra một số phản ứng phụ sau
(Viện Dược liệu, 2006):
 Sự hình thành gốc tự do không có enzym SOD xúc tác
Các gốc O2•– có khả năng phản ứng với nhau trong điều kiện không có enzym SOD
xúc tác theo phản ứng sau:
O2•– + O2•– + 2H+ → H2O2 + O2
8


Oxy đơn bội (1O2) có tính oxy hóa rất mạnh. Nó có thể phản ứng với bất kỳ một chất
hữu cơ nào khi nó gặp tạo ra các peroxyd.
 Phản ứng Harber – Weiss
Các gốc O2 •– va đập với H2O2:
O2•– + H2O2 → 1O2 + OH• + OHPhản ứng này xảy ra chậm, nhưng có mặt Fe2+, Cu2+ xúc tác thì tốc độ phản ứng xảy ra
rất nhanh (phản ứng Fenton). Hai tiểu phân O2•– và H2O2 không độc có thể tạo ra 1O2,
OH• là những phân tử và gốc có khả năng phản ứng rất cao, dễ dàng phản ứng với các
chất hữu cơ tạo ra các peroxyd và từ đó tạo ra nhiều sản phẩm có hại cho cơ thể.
 Sự hình thành gốc tự do từ các ion kim loại chuyển tiếp
Ion kim loại chuyển tiếp (Fe2+, Cu2+) dễ dàng phân tách H2O2 thành gốc OH•.
H2O2 + Fe2+ → Fe3+ + OH• + OHBình thường phản ứng này trong sinh học ít xảy ra, vì H2O2 ở nồng độ thấp còn Fe2+,
Cu2+ thường bị khóa ở dạng phức, ít ở trạng thái tự do.
Các ion kim loại chuyển tiếp có thể phản ứng với oxy tạo ra gốc O2•–. Phản ứng này
đặc biệt quan trọng vì nó khơi mào cho các phản ứng gốc tự do xảy ra.
Fe2+ + O2 → Fe3+ + O2•–
Cu+1 + O2 → Cu2+ + O2•–
Như vậy, từ 4 tiểu phân O2•–, H2O2, O2 và kim loại chuyển tiếp cùng hợp biến sinh ra
gốc OH• và 1O2 những tác nhân có khả năng phản ứng mạnh. Gốc OH• phản ứng mạnh
với hầu hết các phân tử sinh học ở tốc độ khuếch tán, có khả năng gây tổn thương lớn
trong phạm vi bán kính nhỏ mà nó sinh ra.

2.4.4. Ảnh hưởng của các yếu tố ngoại sinh đến sự hình thành gốc tự do
2.4.4.1. Ảnh hưởng của các xenobiotic
Đây là các chất hóa học, cơ thể không tổng hợp sẵn ra được, ví dụ như các thuốc trừ
sâu, diệt cỏ, các hợp chất nitro hữu cơ, các phẩm nhuộm. Khi xâm nhập vào cơ thể,
các hóa chất này có giai đoạn trung gian tạo ra các gốc tự do (Viện Dược liệu, 2006).
2.4.4.2. Ảnh hưởng của các tác nhân viêm và hoại tử gan
Các hợp chất halogen hữu cơ, điển hình là CCl4 là chất gây viêm hoại tử gan. Khi vào
gan được chuyển hóa như sau:

Chính các dạng gốc trung gian này làm tăng quá trình peroxy hóa lipid. Quá trình
peroxy hóa lipid mãnh liệt sẽ gây phá vỡ màng tế bào, gây viêm và có khả năng gây
hoại tử gan (Viện Dược liệu, 2006).

9


2.4.4.3. Ảnh hưởng của tác nhân tiêu máu và bầm huyết
Điển hình là các diazonaphtol, diphenylhydrazin…, các chất này phản ứng với
oxyhemoglobin tạo ra methemoglobin và gốc phenylhydrazin. Gốc này nhường điện tử
cho oxy tạo ra O2•– (Viện Dược liệu, 2006).

2.4.4.4. Ảnh hưởng của điều kiện sống
 Ảnh hưởng của sự ô nhiễm môi trường
Khí thải của các động cơ dùng xăng, dầu có nhiều chất độc như: CO, NO, carbuahydro
tetraethyl chì. Những chất này phân hủy tạo gốc tự do như sau (Viện Dược liệu, 2006):

 Ảnh hưởng của stress
Cơ thể hoạt động một cách bình thường là do cân bằng nội môi đã được thiết lập. Nếu
có một yếu tố nào phá vỡ cân bằng nội môi thì được gọi là tác động của stress. Khi cơ
thể bị các stress như sự di chuyển và thay đổi môi trường sống, sự thay đổi nhiệt độ

quá nóng hay quá lạnh, môi trường quá ồn hay bị ô nhiễm, áp lực và sự căng thẳng –
lo lắng trong công việc,…thì hàm lượng gốc tự do của oxy thường cao hơn 1,5 đến 2
lần so với đối chứng. Thông qua các dây thần kinh hướng tâm và vùng dưới đồi, cơ thể
có những đáp ứng với các stress. Sự giải phóng ra adrenalin và noradrenalin, khi cơ
thể bị stress tác động sẽ dẫn tới khả năng chuyển hóa tương tác với oxy tạo ra các gốc
O2•. Đồng thời nhiều acid béo chưa no được giải phóng ra từ các lipid. Những yếu tố
đó (gốc O2• tăng, acid béo chưa no tăng,…) thúc đẩy quá trình peroxy hóa tăng khi bị
stress (Viện Dược liệu, 2006).
 Ảnh hưởng của khu vực địa lý
Các bức xạ mặt trời, bức xạ nền ở một miền nào đó có phát ra những tia ảnh hưởng tới
sự hình thành các gốc tự do của oxy theo cơ chế như sau:

10


(hv: Tia cực tím, tia phóng xạ)
Tóm lại, do ảnh hưởng của các điều kiện sống như bị ô nhiễm quá nhiều, nhiều
stress,…thì gốc tự do gia tăng. Nếu sự gia tăng quá mức và kéo dài sẽ dẫn đến tình
trạng mất cân bằng giữa các dạng oxy hoạt động và các chất chống oxy hóa. Lượng
các dạng oxy hoạt động tăng sẽ gây ra nhiều phản ứng bất lợi, tổn thương cho cơ thể
và là nguyên nhân của nhiều bệnh tật (Viện Dược liệu, 2006).
2.4.5. Sự phòng vệ của cơ thể chống lại gốc tự do
2.4.5.1. Hệ thống phòng vệ các gốc tự do trong cơ thể
Do việc sinh ra các gốc tự do trong tế bào là không thể tránh khỏi, nên việc bảo vệ
chống lại những tác hại của gốc tự do là tất yếu. Đó là sự phòng vệ của các chất chống
oxy hóa nội sinh trong cơ thể với hai phương cách tác động sau (Viện Dược liệu,
2006):
 Phòng ngừa sinh ra các gốc
Khả năng phòng ngừa sinh ra các gốc bao gồm hiệu lực vận chuyển điện tử của oxy và
sự khóa các ion kim loại chuyển tiếp vào dạng phức, đặc biệt với các protein như:

Transferrin, lactoferin, ferritin.
 Phòng vệ loại bỏ các gốc đã sinh ra
Ở trong tế bào quan trọng nhất là enzym SOD và hệ thống glutathion. Ở tổ chức màng
thì quan trọng nhất là các chất kiểu vitamin E, ubiquinon, β – caroten loại bỏ các gốc
LOO•, LO• theo phản ứng mỗi phân tử vitamin E này loại bỏ hai gốc LOO•. Ở pha
nước có vai trò của vitamin C và một số chất như acid uric.
Việc sửa chữa loại bỏ các phân tử sinh học đã bị tổn thương trước khi chúng tích tụ lại
hoặc trước khi chúng đủ mức gây ra những biến đổi chuyển hóa và định hướng đến sự
sống của tế bào.
Ví dụ: Các protein đã bị oxy hóa sẽ bị proteinase phân hủy; các lipid màng sẽ bị các
lipase phân hủy, acyl transferase tác động.
2.4.5.2. Hệ thống enzym chống oxy hóa ở gan
Gan là cơ quan có nhiều enzym trong đó có những enzym đóng vai trò quan trọng
trong nhiều việc chống oxy hóa là: Các chất chống peroxyd, enzym SOD, phân hủy
các gốc tự do khác, những ion khóa kim loại chuyển tiếp…, trong đó các chất chống
peroxyd chiếm thành phần chủ yếu ở gan (Viện Dược liệu, 2006).
 Các chất chống peroxyd
11


Đó là các chất glutathion (GSH), enzym glutathion peroxidase (GSH – Px) xúc tác
phân hủy các peroxyd với hằng số tốc độ phản ứng k = 108 mol/giây theo phản ứng
sau:

Như vậy, hàm lượng GSH, hoạt tính enzym GSH – Px liên quan đến việc phân hủy các
peroxyd. Khẩu phần ăn đủ protein và hàm lượng selen liên quan chặt chẽ với GSH và
hoạt tính enzym GSH – Px. Nếu hàm lượng selen không đủ thì GSH giảm, hoạt độ
enzym GSH – Px thấp. Ngoài ra, peroxysom còn có catalase phân hủy H2O2 nồng độ
cao theo phản ứng sau:

 Enzym superoxyd dismutase (SOD)
Enzym này có khả năng phân hủy đặc hiệu các gốc O2•- với hằng số tốc độ rất lớn (k =
109 mol/giây).

Bản chất enzym này là một protein có hai đồng phân là MnSOD (có trong ty lạp thể)
còn có CuZnSOD có ở bào tương. Cả hai đều xúc tác phân hủy gốc O2•-.
 Phân hủy các gốc tự do khác
Vitamin E (α – tocopherol) là chất chống oxy hóa quan trọng ở các tổ chức màng. Mỗi
phân tử vitamin E có khả năng loại bỏ bớt hai gốc LOO• theo phản ứng sau:

Ngoài phản ứng trực tiếp với gốc tự do vitamin E có khả năng loại bỏ oxy đơn bội theo
phản ứng sau:

(vitE•: dạng oxy hóa (dạng kích thích)).
Trong tế bào có nhiều chất có cấu trúc tương tự vitamin E như ubiquinon (coenzym
Q10) cũng có tính chất này.
Các gốc kiểu semiquinon là những gốc bền, có nồng độ khá lớn (10-8 M) so với các
gốc tự do của oxy là những gốc không bền. Vì thế những gốc này có thể phản ứng với
nhau tạo ra các sản phẩm không phải là gốc.

12


Vitamin C là những chất có khả năng loại bỏ các gốc tự do ở pha nước của tế bào.
Ngoài ra, vitamin C còn có khả năng tái tạo vitamin E dạng oxy hóa trở về dạng khử.
Những chất như acid uric huyết tương, GSH ở dịch tế bào cũng có tính chất loại bỏ các
gốc tự do.
Phân tử β – caroten cũng có tính chất chống oxy hóa theo cơ chế nhận năng lượng kích
thích của oxy đơn bội, biến oxy đơn bội thành oxy thường và bản thân β – caroten trở
thành dạng kích thích, sau đó có thể trở về trạng thái bình thường hoàn toàn bằng hiện

tượng vật lý là năng lượng kích thích truyền cho các liên kết nội tạng dưới dạng nhiệt.
2.4.6. Các phương pháp khảo sát hoạt tính chống oxy hóa
2.4.6.1. Phương pháp ức chế gốc tự do DPPH
Đây là phương pháp đơn giản, dễ thực hiện. Phương pháp này dùng để thực hiện phản
ứng mang tính chất sàng lọc tác dụng chống oxy hóa của mẫu nghiên cứu.
Nguyên tắc:
- Các chất có khả năng kháng oxy hóa sẽ dùng hydrogen làm giảm độ hấp thu tại
bước sóng cực đại ở 517 nm và làm tím của DPPH nhạt dần với chất đối chiếu là acid
ascorbic (vitamin C) (Amarowiez R., et al, 2004).
Phản ứng minh họa:

+ AH
Chất kháng oxy hóa

2.4.6.2. Phương pháp đánh giá khả năng đánh bắt gốc superoxyd O2- (Superoxyd
scavenging)
Nguyên tắc:
Đánh giá khả năng phòng vệ loại bỏ các gốc tự do đã sinh ra của chất nghiên cứu qua
việc ngăn chặn sự tạo thành gốc superoxyd O2-. Gốc superoxyd được tạo thành trong
phản ứng giữa xanthin và xanthin oxydase sẽ được định lượng bằng phương pháp khử
sử dụng nitroblue tetrazolium (NBT) cho phức chất có màu tím được đo quang ở bước
13

+ A•


sóng λ = 550 nm. Hoạt tính chống oxy hóa của mẫu thử được thể hiện qua việc làm
giảm sự hình thành phức màu tím (Lee S.M., et al, 2003).
2.4.6.3. Phương pháp xác định hàm lượng MDA
MDA (Malonyl dialdehyd) là sản phẩm cuối cùng của quá trình peroxy hóa lipid màng

tế bào nên được áp dụng rộng rãi trong thực tế để nghiên cứu quá trình peroxy hóa
lipid màng tế bào (Viện Dược liệu, 2006).
Nguyên tắc:
- MDA được sinh ra trong quá trình peroxy hóa lipid màng tế bào. Khi cho phản
ứng với acid thiobarbituric, một phân tử MDA phản ứng với hai phân tử acid
thiobarbituric tạo phức màu hồng hấp thu cực đại ở bước sóng 532 nm. Phản ứng thực
hiện ở môi trường pH bằng 2 – 3, nhiệt độ 90 – 100 OC, thời gian 10 – 15 phút. Dựa
trên sự giảm cường độ hấp thu của phức, ta tính được khả năng kháng oxy hóa của
hoạt chất (Viện Dược liệu, 2006).
Phản ứng minh họa:

2.4.6.4. Phương pháp đánh giá khả năng kết hợp với ion sắt II
Nguyên tắc:
- Ion sắt hay đồng ở trạng thái tự do dễ dàng xúc tác sinh ra gốc tự do. Khi cho
ion Fe2+ phản ứng với thuốc thử Ferrozin tạo phức màu có cực đại hấp thu ở bước sóng
562 nm.
- Mẫu thử sẽ khóa các kim loại vào dạng phức, không cho kim loại tồn tại dưới
dạng tự do, làm mất khả năng xúc tác của kim loại.
- Việc ngăn chặn tạo thành phức có màu giữa ion Fe2+ với thuốc thử Ferrozin thể
hiện hoạt tính chống oxy hóa của hoạt chất (Lapenna D., et al, 2002).
2.4.6.5. Phương pháp đánh giá khả năng đánh bắt peroxyhydro H2O2
Nguyên tắc:
Hai tiểu phân O2- và H2O2 sinh ra từ chuyển hóa trong cơ thể với nồng độ vô cùng
thấp, dễ dàng bị loại bỏ và không độc hại cho cơ thể nhưng nếu hiện diện ở nồng độ
14


cao (do stress oxy hóa) chúng có thể tạo ra 1O2, OH• là những phân tử và gốc có khả
năng phản ứng rất cao, dễ dàng phản ứng với các chất hữu cơ tạo ra các peroxyd và từ
đó tạo ra nhiều sản phẩm độc hại cho tế bào. Hoạt tính chống oxy hóa và mẫu thử

được thể hiện qua việc làm giảm lượng H2O2 đưa đến làm giảm phản ứng màu giữa
H2O2 và đỏ phenol (màu đỏ phenol sẽ chuyển sang màu tím sau phản ứng với H2O2
trong sự hiện diện của enzym peroxydase từ cải gia vị (horseradish)) (Hosoea H., et al,
2002).

15