Bệnh do sán dây moniezia spp gây ra trên dê tại huyện lạng giang và huyện yên thế tỉnh bắc giang, biện pháp phòng trị

J. Egypt Soc Parasitol, 34 (1), pp. 305 - 314.
43. Mckenne P. B. (1981), “The diagnostic valuc and interpretation of faecal
egg counts in sheep”, N, Z, Vet J., 29, pp. 129 - 130.
44. Merijo Eileen Jordan (2001) Population dynamics of oribatid mites (acari:
oribatida) on horse pastures of north central florida. University of Florida
Dissertation
45. Mishareva T. E. (1977), “Special features of the control of helminth
infections on industrial sheep farms”, Veterinaria, Kiev, pp. 45 - 67.
46. Misra

S.

C.,

Swain

G.,

Dash

B.,

Mohanpatra

N.

B.

D.

(1989),

“Anthelmintic, efficacy of Valbazen (SK and F) against natural acquired
Moniezia infection in calves and kids”, Indian veterinary Journal, 66: 6,559 - 561.

Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN




72

47. Munib (2004), “Prevalence of Cestoda and comparative Efficacy
Anthelminthtics in Rambouillet Sheep”,

International Journal of

Agriculture and Biology, Vol(6).
48. Murthy G.S., Rao P.V. (2014), “Prevalence of gastro intestinal parasites in
ruminants and poultry in Telangana region of Andhra Pradesh”, J Parasit
Dis, 38 (2), pp. 190 - 192.
49. Narsapur, V.S. & Prokopic J. (1979) The influence of temperature on the
development of Moniezia expansa (Rudolphi, 1810) in oribatid mites. Folia
Parasitol (Praha).26, 239-243
50. Ndom M., Diop G., Quilichini Y., Yanagida T., Ba C.T., Marchand B. (2016),
“Prevalence and Scanning Electron Microscopic Identification Anoplocephalid
Cestodes among Small Ruminants in Senegal”,Journal of Parasitology
Research.
51. Nwosu, Ogunrinade A.F. và Fagbemi B.O (1996), Prevalence and seasonal
change in the gastrointestinal Helminths of Nigerian goats,

In:

Helminthology, 12/1996, 70(4).
52. Ojeda-Robertos

N.F., Torres-Chablé

O.M., Peralta-Torres

J.A., Luna-

Palomera C., Aguilar-Cabrales A., Chay-Canul A.J., González-Garduño
R., Machain-Williams

C., Cámara-Sarmiento

R.

(2017),

“Study

of

gastrointestinal parasites in water buffalo (Bubalus bubalis) reared under
Mexican humid tropical conditions”, Trop Anim Health Prod, 49 (3), pp.
613 - 618.
53. Ratanapob N., Arunvipas P., Kasemsuwan S., Phimpraphai W., Panneum S.,
(2012), “Prevalence and risk factors for intestinal parasite infection in goats
raised in Nakhon Pathom Province, Thailand”, Trop Anim Health Prod, 44

(4), pp. 741 - 745.
54. Rehbein S1, Visser M, Winter R (1998), “Helminth species of goats in
Germany”, Berl Munch Tierarzit Wochenschr, 111 (11 - 12), pp. 427 - 431.
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN




73

55. Saravanan S. and Palanivel K.M. (2017), “Detection of Gastrointestinal
Helminthic and Protozoan Infections in Diarrhoeic Goats”, International
Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 6(4), pp. 801 - 805.
56. Schuster R., Coetzee L., Putterill J. F. (2000), “Oribatid mites (Acari,
Oribatida)

as

intermediate

hosts

of

tapeworms

of

the

Family

Anoplocephalidae (Cestoda) and the transmission of Moniezia expansa
cysticercoids in South Africa”, Onderstepoort J. Vet. Res, 67 (1), pp. 49 - 55.
57. Singh A.K., Das G., Roy B., Nath S., Naresh R., Kumar S. (2015),
“Prevalence of gastro-intestinal parasitic infections in goat of Madhya
Pradesh, India”, Journal of Parasitic Diseases, 39 (4), pp. 716 - 719.
58. Silvestre A., Chartier C., Sauves C., Cabaret J. (2000), “Relationship
between helminth species diversity, intensity of infection and breeding
management in dairy goats”, Vet Parasitol, 94 (1 - 2), pp. 91 - 105.
59. Sissay M.M., Uggla A., Waller P.J. (2008), “Prevalence and seasonal
incidence of larval and adult cestode infections of sheep and goats in eastern
Ethiopia”, Trop Anim Health Prod, 40 (6), pp. 387 - 394.
60. Soulsby E. J. L. (1982), Helminths, Arthropods and Protozoa of
Domesticated Animal, Lea and Febiger, Philadelphia.
61. Urquhart G. M, Armour J., Duncan J. L., Dunn A. M., Jennings F. W.
(1996), Veterinary Parasitology, Blackwell Science.
62. Xiao

L., Herd

R.

P.

(1992)

“Infectivity

of Moniezia benedeni

and Moniezia expansa to oribatid mites from Ohio and Georgia”, Vet Parasitol,
45 (1 - 2), pp. 101 - 110.
III. Tài liệu internet
63. Hồ Đình Hải (2013), Cây keo giậu, />
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN




74

Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN




75

MỘT SỐ HÌNH ẢNH CỦA ĐỀ TÀI
I. CÁC GIỐNG DÊ ĐƯỢC NUÔI Ở HUYỆN LẠNG GIANG VÀ YÊN THẾ
TỈNH BẮC GIANG

Ảnh 1 và 2: Dê cỏ nuôi tại huyện Lạng Giang và Yên Thế

Ảnh 3: Dê bách thảo
Ảnh 4: Dê boer
II. MỔ KHÁM DÊ PHÁT HIỆN DÊ NHIỄM SÁN DÂY

Hình 5 và 6: Mổ khám dê tìm sán dây

Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN




76

Ảnh 7: Sán dây trong ruột non dê

Ảnh 8: Sán dây Moniezia expansa
thu từ ruột non dê

Ảnh 9: Trứng sán dây Moniezia
expansa

Ảnh 10: Đốt sán dây Moniezia expansa
(dưới kính hiển vi điện tử quét)

Ảnh 11: Tuyến giữa đốt của sán dây Moniezia expansa
(dưới kính hiển vi điện tử quét).
Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN




77

III. CÁC LOÀI NHỆN ĐẤT – KÝ CHỦ TRUNG GIAN CỦA SÁN DÂY
Moniezia expansa

Ảnh 12: Nhện dất phân lập từ đất ở
địa phương nghiên cứu

Ảnh 13: Loài Scheloribates
mahunkai Subias, 2010 (mang ấu
trùng sán dây Moniezia spp).

Ảnh 14: Loài Protoribates
paracapucinus (Mahunka, 1988) mang
ấu trùng sán dây Moniezia spp.

Ảnh 15: Loài Scheloribates
mahunkai Subias, 2010 mang ấu
trùng sán dây Moniezia spp.

Ảnh 16: Loài Lamellobates ocularis
Jeleva et Vu, 1987 mang ấu trùng
sán dây Moniezia spp.

Ảnh 17: Loài Scheloribates
fimbriatus Thor, 1930 mang ấu trùng
sán dây Moniezia spp.

Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN




78

Ảnh 18 và 19: Ấu trùng sán dây Moniezia spp. có sức gây bệnh thu từ nhện
Oribatidae.
IV. BỆNH TÍCH ĐẠI THỂ VÀ VI THỂ

Ảnh 20: Ruột non dê có nốt loét và
xuất huyết

Ảnh 21 : Hồng cầu bị phá hủy trong
mạch quản tại tim dê

Ảnh 22: Thâm nhiễm Bạch cầu ái
toan ở niêm mạc ruột non dê
(độ phóng đại 200 lần)

Ảnh 23: Thoái hóa kính ở tế bào
biểu mô tuyến ruột
(độ phóng đại 200 lần)

Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN




79

Ảnh 24: Lông nhung ruột bị đứt nát

Ảnh 25: Lớp lông nhung ruột bị
bong tróc
(độ phóng đại 100 lần)

Ảnh 26: Niêm mạc ruột dê (độ phóng đại 400 lần)

Số hóa bởi Trung tâm Học liệu và Công nghệ thông tin – ĐHTN