Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố đến khả năng tạo mô sẹo cây gừng Núi đá (Zingiber sp.) trong điều kiện in vitro.

1
I HC THI NGUYấN
TRNG I HC NễNG LM




TRIU MINH HU




Tờn ti:
Nghiên cứu ảnh hởng của một số yếu tố đến khả năng tạo
mô sẹo cây gừng Núi đá (Zingiber sp.) trong điều kiện in vitro


KhóA LUậN TốT NGHIệP ĐạI HọC




H o to : Chớnh quy
Chuyờn ngnh : Cụng ngh sinh hc
Lp : K42 - CNSH
Khoa : CNSH - CNTP
Khoỏ hc : 2010 - 2014
Ging viờn hng dn: ThS. Lõm Mai Tựng
Trung tõm ng dng tin b Khoa hc v Cụng ngh tnh Lng Sn

ThS. Lng Th Thu Hng
Khoa CNSH-CNTP, trng i hc Nụng Lõm Thỏi Nguyờn



Thỏi Nguyờn, nm 2014


2
LỜI CẢM ƠN
Được sự nhất trí của Ban giám hiệu nhà trường, Ban chủ nhịêm Khoa Công
nghệ sinh học và Công nghệ thực phẩm trong thời gian thực tập tốt nghiệp em đã
thực hiện đề tài: “Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố đến khả năng tạo
mô sẹo cây gừng Núi đá (Zingiber sp.) trong điều kiện in vitro”.
Qua 6 tháng thực tập tại phòng Kỹ thuật của Trung tâm Ứng dụng Tiến bộ
Khoa học và Công nghệ tỉnh Lạng Sơn em đã hoàn thành đề tài. Để đạt được kết
quả như ngày hôm nay em xin chân thành cảm ơn Ban giám đốc trung tâm cùng các
thành viên phòng Kỹ thuật đã tạo điều kiện giúp đỡ em trong suốt thời gian thực
hiện đề tài.
Em xin bày tỏ lòng biết ơn sâu sắc tới Ths. Lâm Mai Tùng, Ths. Lương
Thị Thu Hường và KS. Vi Thị Minh Tâm đã tận tình chỉ bảo, hướng dẫn em trong
thời gian thực hiện đề tài.
Cuối cùng, em xin chân thành cảm ơn gia đình, bạn bè đã hết lòng động viên,
giúp đỡ tạo điều kiện về vất chất và tinh thần cho em trong quá trình học tập và
nghiên cứu. Do thời gian thực hiện đề tài có giới hạn nên đề tài không thể tránh
khỏi những sai sót. Em rất mong nhận được sự đóng góp ý kiến của thầy cô và các
bạn để đề tài của em được hoàn thiện hơn.
Em xin chân thành cảm ơn !
Thái Nguyên, ngày 27 tháng 05 năm 2014
Sinh viên thực hiện

Triệu Minh Huệ




3
DANH MỤC CÁC BẢNG
Trang
Bảng 1. Thành phần hóa học trong tinh dầu gừng 6

Bảng 4.1.1. Kết quả nghiên cứu ảnh hưởng của thời gian khử trùng bằng HgCl
2

0,1% đến hiệu quả khử trùng mẫu cây gừng Núi đá trong điều kiện in vitro. 26

Bảng 4.1.2. Kết quả nghiên cứu ảnh hưởng của việc kết hợp khử trùng bằng HgCl2
0,1% và Ca(OCl)2 15% đến hiệu quả khử trùng mẫu cấy cây gừng Núi đá trong
điều kiện in vitro. 28

Bảng 4.2.1. Kết quả nghiên cứu ảnh hưởng của nồng độ 2,4 -D đến khả năng tạo
mô sẹo cây gừng núi đá trong điều kiện in vitro. 30

Bảng 4.2.2. Kết quả nghiên cứu ảnh hưởng của nồng độ NAA và IAA đến khả
năng hình thành mô sẹo cây gừng Núi đá trong điều kiện in vitro. 31

Bảng 4.2.3. Kết quả nghiên cứu ảnh hưởng của nồng độ 2,4 - D kết hợp với BA
đến khả năng hình thành mô sẹo cây gừng Núi đá trong điều kiện in vitro. 33

Bảng 4.3. Kết quả nghiên cứu ảnh hưởng của hàm lượng đường saccharose đến khả
năng hình thành mô sẹo cây gừng Núi đá trong điều kiện in vitro. 35




4
DANH MỤC CÁC HÌNH
Trang
Hình 1. Một số hình ảnh mô tả đặc điểm hình thái cây gừng Núi đá 5

Hình 4.1. Biểu đồ thể hiện ảnh hưởng của thời gian khử trùng bằng HgCl
2
0,1% đến
hiệu quả khử trùng mẫu cấy cây gừng Núi đá trong điều kiện in vitro. 27

Hình 4.1.2. Biểu đồ thể hiện ảnh hưởng của việc kết hợp khử trùng bằng HgCl
2

0,1% với Ca(OCl)
2
15% đến hiệu quả khử trùng mẫu cây gừng Núi đá trong điều
kiện in vitro. 29

Hình 4.2.1. Biểu đồ thể hiện ảnh hưởng của nồng độ 2,4 - D đến khả năng hình
thành mô sẹo cây gừng Núi đá trong điều kiện in vitro. 30

Hình 4.2.3. Biểu đồ thể hiện ảnh hưởng của nồng độ 2,4 - D kết hợp với BA đến
khả năng tạo mô sẹo cây gừng Núi đá trong điều kiện in vitro. 34

Hình 4.3. Biểu đồ thể hiện ảnh hưởng của hàm lượng đường saccharose đến khả
năng tạo mô sẹo cây gừng Núi đá trong điều kiện in vitro 36




5
DANH MỤC TỪ, CỤM TỪ VIẾT TẮT

AND : Acid deoxyribonucleic
B1 : Thiamin
B3 : Nicotinic acid
B6 : Pyridoxine
BA : 6-Benzylaminopurine
CT : Công thức
CV : Coefficient of Variation
Đ/C : Đối chứng
IAA : Indol axetic acid
Kinetin : 6-Furfurylaminopurine
LSD : Least Significant Difference Test
MS : Murashige and Skoog’s
NAA
:
α
- Naphlene axetic acid
TN : Thí nghiệm
2,4-D : 2,4-dichlorophenoxy acetic acid

6
MỤC LỤC
Trang
Phần 1: MỞ ĐẦU 1
1.1. Đặt vấn đề 1
1.2. Mục đích của đề tài 2
1.3. Yêu cầu của đề tài 2
1.4. Ý nghĩa khoa học và thực tiễn của đề tài 2
1.4.1. Ý nghĩa khoa học 2
1.4.2. Ý nghĩa thực tiễn 2
Phần 2: TỔNG QUAN TÀI LIỆU 3
2.1. Tổng quan về gừng núi đá 3
2.1.1. Phân loại 3
2.1.2. Đặc điểm phân bố 3
2.1.3. Đặc tính sinh học 4
2.1.4. Thành phần hóa học 6
2.1.5. Tác dụng 8
2.2. Cơ sở khoa học của nuôi cấy mô tế bào 8
2.2.1. Tính toàn năng di truyền của tế bào 8
2.2.2. Sự phân hóa và phản phân hóa tế bào 9
2.2.3. Nuôi cấy mô sẹo 10
2.2.4. Điều kiện và môi trường nuôi cấy mô tế bào thực vật 12
2.3. Tình hình nghiên cứu cây gừng trong nước và thế giới 17
2.3.1. Tình hình nghiên cứu trên thế giới 17
2.3.2. Tình hình nghiên cứu trong nước 18
Phần 3: ĐỐI TƯỢNG, NỘI DUNG VÀ PHƯƠNG PHÁP NGHIÊN CỨU 19
3.1. Đối tượng và phạm vi nghiên cứu 19
3.1.1. Đối tượng nghiên cứu 19
3.1.2. Phạm vi nghiên cứu 19

3.2. Địa điểm và thời gian nghiên cứu 19
3.2.1. Địa điểm nghiên cứu 19
3.2.2. Thời gian nghiên cứu 19
3.3. Điều kiện nuôi cấy 19
3.4. Hóa chất và thiết bị nghiên cứu 19
3.5. Nội dung nghiên cứu 19


7
3.6. Phương pháp nghiên cứu 20
3.6.1.Chuẩn bị vật liệu nghiên cứu 20
3.6.2. Chuẩn bị môi trường nuôi cấy 20
3.6.3. Nuôi cấy mô sẹo 20
3.6.4. Phương pháp bố trí thí nghiệm 20
3.7. Chỉ tiêu theo dõi 24
3.8. Xử lý số liệu 25
Phần 4: KẾT QUẢ VÀ THẢO LUẬN 26
4.1. Kết quả nghiên cứu ảnh hưởng của phương pháp khử trùng thích hợp tạo vật
liệu sạch phục vụ nuôi cấy cây gừng Núi đá trong điều kiện in vitro 26
4.1.1. Kết quả nghiên cứu ảnh hưởng của thời gian khử trùng bằng HgCl
2
0.1%
đến hiệu quả khử trùng mẫu cây gừng Núi đá trong điều kiện in vitro 26
4.1.2. Kết quả nghiên cứu ảnh hưởng của việc kết hợp khử trùng bằng HgCl
2

0.1% và Ca(OCl)
2
15% đến hiệu quả khử trùng mẫu cấy cây gừng Núi đá. 28
4.2. Kết quả nghiên cứu ảnh hưởng của chất kích thích sinh trưởng đến khả năng

tạo mô sẹo cây gừng Núi đá trong điều kiện in vitro 29
4.2.1. Kết quả nghiên cứu ảnh hưởng của nồng độ 2,4 - D đến khả năng tạo mô
sẹo cây gừng núi đá trong điều kiện in vitro. 29
4.2.2. Kết quả nghiên cứu ảnh hưởng của nồng độ NAA và IAA đến khả năng
hình thành mô sẹo cây gừng Núi đá trong điều kiện in vitro. 31
4.2.3. Kết quả nghiên cứu ảnh hưởng của nồng độ 2,4 - D kết hợp với BA đến
khả năng hình thành mô sẹo cây gừng núi đá trong điều kiện in vitro. 33
4.3. Kết quả nghiên cứu ảnh hưởng của hàm lượng đường saccharose đến khả
năng hình thành mô sẹo cây gừng Núi đá trong điều kiện in vitro. 35
Phần 5: KẾT LUẬN VÀ KIẾN NGHỊ 37
5.1. Kết luận 37
5.2. Kiến nghị 37
TÀI LIỆU THAM KHẢO 38


1
Phần 1
MỞ ĐẦU
1.1. Đặt vấn đề
Gừng (Zingiber officinable Roscoe.) là một loại cây thân thảo, lấy củ, sống
lâu năm được sử dụng nhiều trong công nghiệp thực phẩm và thảo dược [32].
Chúng được trồng phổ biến ở hầu hết các nước nhiệt đới như Ấn Độ, Bangladet,
Jaiwan, Jamaica, Nigieria, Indonesia, Ceylon, Sierraleone, Australia, Trung Quốc
và Nhật Bản [21], gồm hơn 1200 loài cây thuộc 53 chi. Chi Zingiber gồm 85 loài
thảo mộc thơm từ Đông Á và vùng nhiệt đới Australia [19].
Bộ phận chính được sử dụng là củ gừng (thân rễ, rhizome) [17]. Gừng có vị
cay, thơm rất giàu các hợp chất thứ cấp như nhựa dầu, dẫn xuất phenol, zingiberene,
gingerol [33]. Trong các phương pháp chữa bệnh truyền thống thường được sử
dụng để điều trị bệnh đau đầu, buồn nôn, cảm lạnh, viêm khớp, thấp khớp, nhức
mỏi cơ bắp, và viêm [20]. Ở Ấn Độ và Trung Quốc thời cổ xưa đã sử dụng gừng

điều trị bệnh trên người và gia súc [47]. Trong công nghiệp thực phẩm, gừng được
sử dụng để tạo hương vị trong sản xuất một số sản phẩm như bánh kẹo, trà, mứt,
nước giải khát,…[17]
Gừng thường được nhân giống bằng củ, nhưng hệ số nhân rất thấp. Năng suất
gừng không cao do nhiễm vi khuẩn gây héo (Pseudomonas solanacearum), thối rễ
(Pythium aphanidermatum) và tuyến trùng (Meloidgyne spp.). Những bệnh này sẽ truyền
qua củ giống vào năm sau, do vậy sản xuất những dòng sạch bệnh với tỷ lệ nhân giống
cao là cần thiết để có được vụ mùa với năng suất cao [50].
Đã có khá nhiều nghiên cứu về cây gừng trên thế giới như vi nhân giống [31],
nuôi cấy cơ quan [34], phát sinh phôi soma [41], phát sinh cơ quan [38], nuôi cấy tế bào
trần, bảo tồn phôi và một số nghiên cứu khác. Tuy nhiên, chưa có nhiều nghiên cứu về
cây gừng Núi đá – một loại cây bản địa, quý và hiếm.
Theo quyết định 80/2005/QĐ - BNN về danh mục các nguồn gen quý hiếm
cần được bảo tồn do Bộ Nông nghiệp và Phát triển nông thôn ban hành ngày
05/12
/2005,
gừng Núi đá là một trong những loài cây quý hiếm cần bảo tồn.
Vì vậy, chúng tôi tiến hành nghiên cứu đề tài “ Nghiên cứu ảnh hưởng
của một số yếu tố đến khả năng tạo mô sẹo cây gừng Núi đá (Zingiber sp.)
trong điều kiện in vitro”.


2
1.2. Mục đích của đề tài
- Nghiên cứu phương pháp khử trùng thích hợp để tạo vật liệu sạch phục vụ
cho các nghiên cứu tiếp theo.
- Nghiên cứu ảnh hưởng của một số yếu tố đến khả năng tạo mô sẹo cây
gừng Núi đá trong điều kiện in vitro.
1.3. Yêu cầu của đề tài
- Xác định ảnh hưởng của phương pháp khử trùng (thời gian khử trùng,

phương pháp khử trùng) đến khả năng tạo vật liệu sạch phục vụ cho tạo mô sẹo cây
gừng Núi đá.
- Xác định ảnh hưởng của hàm lượng đường saccharose đến khả năng tạo mô
sẹo cây gừng Núi đá trong điều kiện in vitro.
- Xác định ảnh hưởng của chất kích thích sinh trưởng đến khả năng tạo mô
sẹo cây gừng Núi đá trong điều kiện in vitro.
1.4. Ý nghĩa khoa học và thực tiễn của đề tài
1.4.1. Ý nghĩa khoa học
- Sự thành công của đề tài cùng với những nghiên cứu của các tác giả khác sẽ
tạo ra được quy trình nhân giống phù hợp cho cây gừng Núi đá trong điều kiện in
vitro và phục vụ các nghiên cứu chiết xuất các hợp chất hóa học quan trọng của
gừng nói chung và gừng Núi đá nói riêng.
- Là cơ sở cho các nghiên cứu khoa học khác.
1.4.2. Ý nghĩa thực tiễn
- Cung cấp số lượng cây gừng Núi đá trong tự nhiên góp phần bảo tồn nguồn
gen quý hiếm và khai thác triệt để những giá trị kinh tế và dược liệu của chúng.













3

Phần 2
TỔNG QUAN TÀI LIỆU
2.1. Tổng quan về gừng núi đá
2.1.1. Phân loại
Theo hệ thống thực vật học mới nhất cây gừng Núi đá được phân loại như sau [15]:
Giới : Plantae
Ngành : Magnoliophyta
Lớp : Liliopsida
Họ : Zingiberaceae
Bộ : Zingiberales
Chi : Zingiber
Loài : Zingiber sp.
Tên Việt Nam : Gừng Núi đá
Tên khoa học : Zingiber sp.
Tên khác : Gừng đá, gừng Núi đá. Tiếng Tày gọi là khing phia.
2.1.2. Đặc điểm phân bố
Gừng là một trong những loài cây trồng phổ biến khắp thế giới, có nguồn gốc từ
trung tâm Châu Á, được trồng ở các vùng nhiệt đới và cận nhiệt đới. Chúng đã trở thành
cây trồng kinh tế cho nông dân ở Châu Mỹ La - tinh, Châu Phi và Đông Nam Á. Gần
50% sản lượng gừng thu hoạch xuất xứ từ Ấn Độ, một phần từ Châu Phi, Brazil, Jamica.
Trong vùng Đông Nam Á, Trung Quốc là nước có diện tích trồng gừng cao nhất (50.000
đến 80.000 ha), kế đến là Thái Lan, Hàn Quốc và Việt Nam [47].
Ở Việt Nam, gừng được trồng từ rất lâu đời, ở khắp mọi nơi trên khắp các địa
phương từ Bắc vào Nam [9]. Tuy nhiên, gừng chỉ được trồng rải rác ở trong các vườn hộ
gia đình [2].
Gừng Núi đá phân bố ở một số tỉnh như Lạng Sơn, Nà Rì, Bắc Cạn, Cao
Bằng, Hà Giang, Tây Bắc và miền Trung Tây Nguyên, Khánh Hòa, Gia Lai, Đắc
Lắc, cây mọc tự nhiên trên các vùng núi đá, mọc xen trong đá, ở các bờ suối nơi ẩm
mát - dưới tán rừng già , cây thường phát triển theo cụm (5,6 thân). Tên gừng Núi
đá bắt nguồn từ nơi chúng có khả năng sống và phát triển tốt nhất. Loại gừng này

thường mọc ở những dãy núi đá cao khoảng trên 1m, củ bằng đốt ngón tay, có mùi
vị thơm rất lạ lùng giống mùi bọ xít.


4
2.1.3. Đặc tính sinh học
Gừng là cây thân thảo, đa niên, cao từ 50 - 100 cm tùy theo đất, có nơi cao
hơn 150 cm. Chúng phát triển thân ngầm dưới đất, có nhiều đốt, mỗi đốt có mầm
ngủ, khi gặp điều kiện thuận lợi sẽ đâm chồi thành cây. Bẹ lá ôm sát nhau phát triển
thành thân giả trên mặt đất. Lá đơn mọc cách (so le), lá trơn, không có cuống, hình
lưỡi mác, mặt bóng nhẵn, mép lá phẳng, gân giữa hơi trắng nhạt. Trục hoa mọc từ
gốc (củ gừng), dài khoảng 20cm, hoa tự tạo thành bông, mọc sát nhau, hoa dài
khoảng 5 cm, rộng khoảng 2 - 3cm, lá bắc hình trứng, mép lá màu vàng. Ðài hoa dài
khoảng 1cm, có 3 rãnh ngắn, có 3 cánh hoa, màu vàng hơi nhạt, mép cánh hoa màu
tím, nhị hoa cũng màu tím [18].
Tuy nhiên, ở nước ta gừng trồng ít khi ra hoa hoặc chưa ra hoa đã thu hoạch
củ để bán [12].
Gừng là một loại cây ưa ấm. Sinh trưởng thích hợp ở những vùng nhiệt đới
và cận nhiệt đới,… Nhiệt độ thích hợp là 25 - 30
0
C, khả năng sinh trưởng giảm nếu
nhiệt độ thấp hơn 24
0
C và cao hơn 30
0
C. Gừng phát triển tốt trong điều kiện đầy đủ
ánh sáng, nhưng cũng có thể thích nghi với kỹ thuật trồng xen [21].
Môi trường tốt nhất cho chúng sinh trưởng là pH = 5,5 – 6,5. Gừng thường
được trồng vào khoảng tháng 3 hằng năm, có thể thu hoạch từ tháng 12 đến tháng 5
năm sau. Tuy nhiên chất lượng gừng giảm nếu như thu hoạch quá muộn vào khoảng

tháng 5. Sẽ làm giảm thẩm mĩ của gừng so với gừng thu sớm. Sau khi trồng phải
mất khoảng 6 tuần thì chúng mới bắt đầu nảy mầm. Từ đó chúng bắt đầu sinh
trưởng tối đa cho đến khi ra hoa. Sự hình thành hoa đánh dấu sự trưởng thành của
củ và bắt đầu tăng hàm lượng chất xơ trong củ [21].
Về đặc điểm sinh học của gừng Núi đá hiện này vẫn chưa có những nghiên
cứu chính thức về chúng. Dưới đây là một số hình ảnh mô tả :


5







Hình 1. Một số hình ảnh mô tả đặc điểm hình thái cây gừng Núi đá


6
2.1.4. Thành phần hóa học
Trong gừng có chứa hơn 400 chất khác nhau gồm 2 - 3% tinh dầu
(Zingerberen, D -camphen), 3 - 5% chất nhựa cay như zingerol, Shogaol, chất béo,
vitamin, khoáng (K, Ca, Fe, Zn,…).
Những hợp chất hóa học quan trọng quyết định khả năng chữa bệnh của
gừng được chia làm hai nhóm là nhóm dễ bay hơi và không bay hơi. Nhóm hợp
chất dễ bay hơi gồm oleoresin (nhựa dầu). Đây là yếu tố quyết định cho gừng có
khả năng làm gia vị, trong đó chủ yếu là gingerol [46].
Những hợp chất hóa học có trong tinh dầu gừng được thể hiện trong bảng 1.
Bảng 1. Thành phần hóa học trong tinh dầu gừng

Thành phần RI
Tinh dầu gừng
tươi (%)
Tinh dầu gừng khô
(%)
Hexanal
770 0,1 T
Hexanol
858 0,0 T
Ο – xylene
884 <0,1 -
Amyl acetate
895 <0,1 -
α – pinene
943 0,1 0,3
Camphene
954 4,0 1,0
Heptanol
957 0,2 -
Sabinene
976 3,0 0,8
β – pinene
981 1,6 0,6
Myrcene
986 0,0 2,1
6-methyl-5-hepten-2-one
994 0,9 -
1,8-cineol
1027 2,4 1,7
Limonene

1030 1,9 1,0
(E)-β-ocimene
1038 1,3 -
γ-terpinene
1057 0,8 -
Trans-linalool oxide
(furanoid)
1092 0,1 -
Undecane
1100 0,4 0,2
Camphor
1136 0,2 -
Menthone
1143 0,2 -
Borneol
1157 1,2 0,5
Terpinen-4-ol
1170 0,2 0,1
Menthol
1171 <0,1 T
γ-terpineol
1185 1,3 0,5
Decanal
1188 0,3 T
Nerol
1218 0,4 0,2
Neral
1227 1,8 T
Geraniol
1243 1,8 0,5

Geranial
1252 8,5 4,4
Trans-carvone oxide
1260 0,6 0,4


7
Bornyl acetate
1268 0,2 Tr
2-undecanote
1276 0,1 Tr
Undecanal
1284 0,2 -
β- cubebene
1359 - 240
α- copaene
1373 - 1,50
Geranyl acetate
1367 0,1 -
γ- elemene
1382 0,5 1,30
β- elemene
1403 0,4 1,00
β- caryophyllene
1418 - 1,40
Α- bergamotene
1436 1,3 1,90
β- farnesene
1448 0,1 1,50
Germacrene-D

1469 1,3 4,20
γ- muurolene
1477 1,2 3,40
Ar- curcurmene
1474 5,6 11,0
α- muurolene
1490 1,0- 2,20
Zingiberene
1487 28,6 30,3
β- bisabolene
1504 5,8 7,20
β- sesquiphellandrene
1516
2,5 6,60
γ- cadinene
1523 2,2 3,50
(Z)- nerolidol
1524 1,5 0,20
Elemol
1540 1,2 0,20
(E)- nerolidol
1553 1,4 1,20
Eudesma- 3,7(11)diene
1542 - 0,20
Cubernol
1560 - 0,20
β- guiacol
1598 - T
Epi- α- cedrenol
1609 - T

Sesquisabinene hydrate
1605 0,1 -
Zingibernol
1620 0,1 -
Zingernone
1625 0,6 -
α- murrolol
1630 0,2 T
β- eusdesmol
1650 0,1 -
β- bisabolol
1659 0,3 0,30
β- eudesmol
1660 0,5 -
Z- α- bergamotol
1692 0,0 0,10
(Z,Z)farnesol
1693 0,1 0,10
(Z,E)farnesol
1699 0,6 -
α- eusdesmol
1701 1,4 -
(E,Z)- farnesol
1718 0,2 -
(E,E)- farnesol
1749 <0,1 0,10
(Z)- lanceol
1763 - 0,10
Tổng
92,2 92,3

Tổng các thành phần oxygenase
29,2 14,4
Tổng các thành phần hydrate
63 77,9
Nguồn: Sasid tharan et al. (2010)



8
2.1.5. Tác dụng
Gừng (Zingiber officinale Roscoe.) đã được sử dụng làm dược phẩm từ thời
cổ xưa. Trong y học thực nghiệm ở Đông Nam Á, gừng khô được sử dụng trong
điều trị chứng khó tiêu, tiêu chảy và buồn nôn. Cả chống oxy hóa và hoạt động
androgenic của Z. Officinale đã được báo cáo trên các mô hình động vật. Những
hoạt động này được phản ánh bởi sự tăng lượng tinh hoàn và mức độ cholesterol
trong huyết thanh, các thành phần chính của Z. Officinale như gingeron, gingidiol,
Zingiberene và đặc biệt là gingerol và shogarol có hoạt tính chống oxy hóa. Z.
Officinale được biết đến là có tác động đến tim mạch như hạ huyết áp, nhịp tim và
hàm lượng đường máu. Có hai hợp chất được tìm thấy là chịu trách nhiệm về hoạt
tính giảm đau, chống nôn, hạ sốt và ức chế tổng hợp prostaglandin. Trong điều trị
ung thư, gừng có thể sản xuất những hợp chất kháng u hiệu quả bằng cách gây
appotosis. Chúng còn được biết đến với gingerol có hoạt tính chống khuẩn mạnh cả
in vivo và in vitro. Ngoài ra còn có tác dụng chống viêm và chống lại sự chết theo
chu trình [46].
Theo tài liệu cổ: Sinh khương vị cay, tính hơi ôn, vào ba kinh phế, tỳ và vị.
Có tác dụng phát biểu tính hàn, ôn trung, làm hết nôn, tiêu đờm, hành thủy giải độc.
Dùng chữa ngoại cảm, biểu chứng, bụng đầy trướng, giải độc bán hạ, chống nôn
mửa, nam tinh, cua cá, đờm ẩm sinh ho. Can khương vị cay, tinh ôn, bào khương
(can khương bào chế rồi) vị cay đắng tính đại nhiệt. Vào sáu kinh tâm, phế, tỳ, vị,
thận và đại tràng. Có tác dụng ôn trung tán hàn, hồi dương thông mạch, dùng chữa

thổ tả, bụn đau, chân tay lạnh, mạch nhỏ, hàn ẩm xuyễn ho, phong hàn thấp tỳ [7].
2.2. Cơ sở khoa học của nuôi cấy mô tế bào
2.2.1. Tính toàn năng di truyền của tế bào
Nguyên lý cơ bản của nhân giống nuôi cấy mô tế bào là tính toàn năng di
truyền của tế bào thực vật. Hanberlandt (1902) là người đầu tiên đưa ra quan điểm
rằng mỗi tế bào bất kì của cơ thể sinh vật đa bào đều có khả năng tiềm tàng để phát
triển thành một cá thể hoàn chỉnh [3].
Theo quan điểm của sinh học hiện đại thì mỗi tế bào riêng rẽ đã phân hóa
đều có mang toàn bộ thông tin di truyền cần thiết và đầy đủ của hệ gen (genome)
của thực vật đó. Do đó, khi gặp điều kiện thuận lợi cơ quan, mô, tế bào đều có thể
phát triển thành một cơ thể mới mang hoàn chỉnh những đặc tính di truyền giống
như cây mẹ [3].


9
2.2.2. Sự phân hóa và phản phân hóa tế bào
Cơ thể thực vật hình thành là một chính thể thống nhất bao gồm nhiều cơ quan
chức năng khác nhau, được hình thành từ nhiều loại tế bào khác nhau. Tuy nhiên ở tất
cả các loại tế bào đều có nguồn gốc từ một tế bào đầu tiên (tế bào hợp tử). Ở giai
đoạn đầu, tế bào tiếp tục phân chia thành nhiều tế bào phôi sinh mang chức năng
chuyên biệt (chưa chuyên hóa). Sau đó, từ các tế bào phôi sinh này chúng tiếp tục
được biến đổi thành các tế bào chuyên hóa đặc hiệu cho các mô, cơ quan có chức năng
khác nhau [5].
Sự phân hóa tế bào là sự chuyển các tế bào phôi sinh thành các tế bào mô
chuyên hóa, đảm bảo các chức năng khác nhau. Quá trình phân hóa tế bào có thể
biểu thị:
Tế bào phôi sinh → Tế bào dãn → Tế bào phân hoá có chức năng riêng biệt
Tuy nhiên, khi tế bào đã phân hóa thành các tế bào có chức năng chuyên,
chúng không hoàn toàn mất khả năng biến đổi của mình. Trong trường hợp cần
thiết, ở điều kiện thích hợp, chúng có thể trở về dạng tế bào phôi sinh và phân

chia mạnh mẽ. Quá trình đó gọi là phản phân hóa tế bào, ngược lại với sự phân
hóa tế bào.

Phân hóa tế bào

Tế bào phôi sinh Tế bào dãn Tế bào chuyên hóa

Phản phân hóa tế bào
Về bản chất thì sự phân hóa và phản phân hóa là một quá trình hoạt hóa, ức
chế các gen. Tại một thời điểm nào đó trong quá trình phát triển cá thể, có một số
gen được hoạt hóa (mà vốn trước bị ức chế) để cho ta tính trạng mới, còn một số
gen khác lại bị đình chỉ hoạt động. Điều này xảy ra theo một chương trình đã được
mã hóa trong cấu trúc của phân tử DNA của mỗi tế bào khiến cho quá trình sinh
trưởng phát triển của cơ thể thực vật luôn được hài hòa [3].
Mặt khác, khi tế bào nằm trong một khối mô của cơ thể thường bị ức chế bởi
các tế bào xung quanh. Khi tách riêng từng tế bào hoặc giảm kích thước của khối
mô sẽ tạo điều kiện cho sự hoạt hóa các gen của tế bào [5].


10
2.2.3. Nuôi cấy mô sẹo
2.2.3.1. Sự hình thành mô sẹo
Mô sẹo là một khối tế bào phát sinh vô tổ chức, không có hình dạng nhất định,
do không có lớp nhu mô. Mô sẹo được hình thành từ mặt cắt của thân hay rễ, bao
gồm tế bào nhu mô và thành phần tế bào rây. Mô sẹo hình thành ở hầu hết các bộ
phận của cây (thân, lá, rễ), khi nơi đó có vết cắt. Điều quan trọng được nhận thấy ở
đặc tính của mô sẹo là mô sẹo phát triển không theo quy luật nhưng có khả năng biệt
hóa thành rễ, chồi hoặc phôi để có thể hình thành cây hoàn chỉnh.
Đặc điểm sinh trưởng của mô sẹo có quan hệ với cơ quan hình thành mô sẹo,
thành phần môi trường nuôi cấy và điều kiện nuôi cấy. Sự hình thành mô sẹo được

chia ra làm 3 giai đoạn: phát sinh mô sẹo, phân chia tế bào và biệt hóa.
- Trong pha phát sinh mô sẹo, sự trao đổi chất kích thích tế bào chuẩn bị phân
chia, giai đoạn này dài hay ngắn phụ thuộc vào tình trạng sinh lý của mô được đưa
vào nuôi cấy và điều kiện nuôi cấy.
-Tế bào đi vào giai đoạn phân chia tăng sinh khối.
- Tế bào đi vào quá trình biệt hóa, xuất hiện sự biệt hóa tế bào và sự xuất hiện con
đường trao đổi chất dẫn đến sự sản xuất các hợp chất thứ cấp có hoạt tính sinh học [8].
Mô sẹo thường có màu vàng trắng, xanh hay màu sắc tố anthocyanin. Sự biệt hóa tế bào
hình thành những chất liệu cấu tạo nhu mô các loại, tế bào rây,… hơn nữa hình thành
vùng mô phân sinh, trung tâm của sự tạo nên chồi hay rễ.
Nhiều nhà khoa học cho rằng, mô sẹo được tạo ra từ những cơ quan có chứa
diệp lục có khả năng quang tự dưỡng. Theo Hilderbrandt và cs. (1963) [30] cho rằng,
mô sẹo có chứa diệp lục phụ thuộc vào lượng đường bổ sung trong môi trường và
cường độ ánh sáng. Có nhiều yếu tố ảnh hưởng đến khả năng quang tự dưỡng của
những tế bào có chứa diệp lục (tế bào màu xanh) như: cường độ ánh sáng mạnh, ánh
sáng màu xanh cần thiết cho sự biệt hóa diệp lục và sự hình thành các enzyme, đường
thấp, auxin thấp, CO
2
cao và tăng hàm lượng photphate, và những tế bào quang tự
dưỡng này có khả năng cố định CO
2
bằng chu trình Calvin mặc dù có sự xuất hiện
của các acid hữu cơ 4 cacbon. Một vấn đề cần quan tâm trong nuôi cấy mô sẹo là sự
biến tính tế bào. Sự biến tính này sảy ra do: độ già của mẫu, sự thay đổi tế bào chất
của nhân, tế bào đa bội thể có số lượng DNA cao, thời gian duy trì nuôi cấy mô sẹo,
điều kiện nuôi cấy, thành phần môi trường nhất là hoormon [8].


11
Để tạo mô sẹo trong môi trường có bổ sung chất kích thích sinh trưởng, đôi

khi có dịch chiết [8]. Phụ thuộc vào từng loại mô nuôi cấy mà chất kích thích sinh
trưởng bổ sung vào có khác nhau [8]. Chất hoormon thường tổ hợp thành 4 nhóm:
- Auxin
- Cytokinine
- Auxin + Cytokinine
- Dịch chiết
Sau khi mô sẹo hình thành, mô sẹo được cấy chuyển. Môi trưởng cấy chuyển
cũng giống như môi trường tạo mô sẹo những giảm nồng độ chất kích thích sinh
trưởng. Kích thước tách mô sẹo nhỏ vừa phải để tế bào phát triển mạnh nhất, thường
cụm mô sẹo có trọng lượng 20 - 100g, thời gian giữa hai lần cấy chuyển là 20 - 30
ngày phụ thuộc vào từng loại mô sẹo. Theo Vũ Văn Vụ (1993) [13], mô sẹo hình
thành có hai loại tế bào:
- Loại tế bào xốp, có không bào to, nhân nhỏ và tế bào chất loãng.
- Loại tế bào chặt, có không bào nhỏ, nhân to và tế bào chất đậm đặc.
Dạng mô sẹo cũng ảnh hưởng đến khả năng tái sinh cơ quan của khối mô. Khả
năng tái sinh chồi sớm mất đi ở mô sẹo xốp những vẫn duy trì ở mô sẹo cứng.
Nguyên nhân có thể do các tế bào mô sẹo sẽ mất đi khả năng sinh ra một số chất
thiết yếu cho sự tái sinh của nó khi số lần cấy chuyển tăng lên. Vì vậy, khi nuôi cấy
mô sẹo nhằm mục đích tái sinh chồi, phải cố gắng tìm điều kiện nuôi cấy thích hợp
cho sự hình thành các khối mô sẹo cứng, chắc; các mô sẹo xốp cần được loại bỏ
trong các lần cấy chuyển vì đôi khi dạng mô sẹo này phát triển rất nhanh và lấn át
các mô sẹo cứng có khả năng sinh phôi. Mô sẹo cấy chuyển càng nhiều lần thì khả
năng tái sinh càng giảm. Ngoài ra, nếu thời gian dài không cấy chuyển thì mô sẹo sẽ
hóa nâu và chết.
2.2.3.2. Sự phát triển của tế bào mô sẹo
Giống thực vật cổ điển được sử dụng trong nghiên cứu phát sinh cơ quan là cây
thuốc lá [40]. Bước đầu tiên trong nghiên cứu tái sinh là tạo mô sẹo. Mô nuôi cấy cho
thấy tiêu biểu của sự phân chia tế bào, những chức năng đặc biệt của tế bào và sự hình
thành cơ quan như cấu trúc của hệ thống mạch dẫn. Sự hình thành mô sẹo từ mô nuôi
cấy cho thấy sự phân chia tế bào, những tế bào ít có tính chuyên biệt và mất khả năng

hình thành cấu trúc cơ quan [8].
Khi cấy chuyển mô sẹo trên môi trường có agar, tế bào mô sẹo phát triển theo
hình chữ S. Có 5 pha trong sự phát triển của mô sẹo:


12
- Pha lag: Tế bào chuẩn bị phân chia
- Pha Exponetial: Tốc độ phân chia tế bào cao nhất
- Pha Linear: tế bào phân chia chậm lại và phát triển kích thước
- Pha Deceleration: tốc độ phân chia tế bào và phát triển kích thước giảm
- Pha Stationary: Số lượng và kích thước tế bào ổn định.
Sự phát triển của mô sẹo có thể đo được trọng lượng tươi. Đo trọng lượng khô
cho thấy chính xác hơn trọng lượng tươi nhưng đòi hỏi mẫu phải đồng nhất. Đo đếm
sự phân bào nguyên nhiễm.
2.2.4. Điều kiện và môi trường nuôi cấy mô tế bào thực vật
Môi trường nuôi cấy là điều kiện tối cần thiết, yếu tố quyết định cho sự phân
hoá tế bào và cơ quan nuôi cấy.
2.2.4.1. Điều kiện nuôi cấy mô tế bào thực vật
- Điều kiện vô trùng
Nuôi cấy in vitro là nuôi cấy trong điều kiện vô trùng. Nếu không đảm bảo điều
kiện vô trùng mẫu nuôi cấy, môi trường hoặc thao tác nuôi cấy sẽ bị nhiễm. Điều kiện vô
trùng có ý nghĩa quyết định đến sự thành bại của nuôi cấy mô in vitro.
Phương pháp vô trùng vật liệu thông dụng nhất hiện nay là dùng các chất hoá
học, đèn tím có khả năng diệt nấm và vi khuẩn.
Vô trùng ban đầu là một thao tác khó và là khâu đầu tiên có ý nghĩa quyết
định. Việc lựa chọn chất khử trùng, thời gian khử trùng, nồng độ chất khử trùng
thích hợp sẽ mang lại hiệu quả vô trùng mẫu tốt, tỷ lệ sống cao. Thông thường hay
sử dụng một số hoá chất như: HgCl
2
0,1%, nước Clofox, cồn 70

0
, Ca(ClO)
2
…để
khử trùng [5].
- Điều kiện ánh sáng và nhiệt độ
+ Ánh sáng
Sự phát sinh hình thái của mô nuôi cấy chịu ảnh hưởng từ các yếu tố như:
Thời gian chiếu sáng, cường độ ánh sáng và chất lượng ánh sáng. Thời gian chiếu
sáng tác động đến quá trình phát triển của mô nuôi cấy. Thời gian chiếu sáng thích
hợp với đa số các loài cây là 12-18 h/ngày.
Cường độ ánh sáng tác động đến sự phát sinh hình thái của mô nuôi cấy.
Cường độ ánh sáng cao kích thích sự sinh trưởng của mô sẹo. Ngược lại, cường
độ ánh sáng thấp kích thích sự tạo chồi. Nhìn chung cường độ ánh sáng thích
hợp cho mô nuôi cấy là 1000 - 7000 lux, ngoài ra chất lượng ánh sáng cũng ảnh
hưởng tới sự phát sinh hình thái của mô thực vật in vitro: Ánh sáng đỏ làm tăng


13
chiều cao của thân chồi hơn so với ánh sáng trắng. Nếu mô nuôi cấy trong ánh
sáng xanh thì sẽ ức chế vươn cao nhưng lại có ảnh hưởng tốt tới sự sinh trưởng
của mô sẹo. Hiện nay trong các phòng thí nghiệm nuôi cấy mô để cung cấp
nguồn ánh sáng có cường độ 2000 - 2500 lux người ta sử dụng các đèn huỳnh
quang đặt cách bình nuôi cấy từ 35 - 40 cm [3].
+ Nhiệt độ
Trong nuôi cấy mô tế bào thực vật, nhiệt độ là nhân tố quan trọng ảnh hưởng tới
sự phân chia tế bào và các quá trình sinh hoá trong cây. Tuỳ thuộc vào nguồn gốc của
mẫu nuôi cấy mà điều chỉnh nhiệt độ cho phù hợp. Nhìn chung nhiệt độ thích hợp nhất
cho sự sinh trưởng tốt ở nhiều loài cây là 25±2
0

C [3].
2.2.4.2. Môi trường nuôi cấy mô tế bào thực vật
Môi trường dinh dưỡng phải có đầy đủ các chất dinh dưỡng, các chất cần thiết
cho sự phân chia, phân hoá tế bào cũng như sự sinh trưởng bình thường của cây.
Thành phần hoá học của môi trường đóng vai trò quyết định đến sự thành
công hay thất bại của nuôi cấy tế bào và mô thực vật. Mỗi một loại vật liệu khác
nhau có những đòi hỏi khác nhau về thành phần môi trường, khi bắt đầu nghiên cứu
một số loài mới hoặc giống mới cần phải chọn lựa cho đối tượng nghiên cứu một
loại môi trường cơ bản phù hợp.
Từ những năm 1933, Tukey đã nghiên cứu tạo ra môi trường nuôi cấy thực vật,
cho đến nay đã có rất nhiều loại môi trường khác nhau được sử dụng cho mục đích này,
trong đó có một số môi trường cơ bản được sử dụng rất phổ biến như MS, B5, WPM.
Tuy có nhiều loại môi trường nuôi cấy mô tế bào thực vật nhưng đều gồm
một số thành phần cơ bản sau [3]:
+ Các muối khoáng đa lượng và vi lượng.
+ Nguồn cacbon.
+ Các vitamin và amino acid.
+ Chất bổ sung, chất làm thay đổi trạng thái môi trường.
+ Các chất điều hoà sinh trưởng.
- Các muối khoáng đa lượng và vi lượng
Đối với cây trồng, các chất khoáng đa lượng và vi lượng đóng vai trò rất
quan trọng. Ví dụ Mg là một phần của phân tử diệp lục, Ca cấu tạo màng tế bào,
nitơ là thành phần quan trọng của vitamin, amino acid và protein. Ngoài ra, các
nguyên tố vi lượng như Fe, Zn, Mo, Mn là thành phần của một số enzym cần thiết
cho hoạt động sống của tế bào.


14
Muối khoáng là thành phần không thể thiếu trong các môi trường nuôi cấy tế
bào thực vật, làm vật liệu cho sự tổng hợp các chất hữu cơ, enzym.

Các ion của các muối hoà tan giúp ổn định áp suất thẩm thấu của môi trường
trong tế bào, duy trì điện thế hoá của thực vật. Các yếu tố như: K, Ca rất quan trọng
trong điều hoà tính thấm lọc của tế bào [13].
- Nguồn cacbon
Khi nuôi cấy in vitro, các tế bào thực vật thường không có khả năng quang hợp,
do đó đòi hỏi phải cung cấp nguồn cacbon cho các hoạt động dinh dưỡng của tế bào.
Nguồn cacbon được sử dụng nhiều nhất hiện nay trong nuôi cấy là đường
saccarose, một số trường hợp sử dụng glucose và fructose thay thế cho saccarose
nhưng chúng thường nghèo hydrat cacbon so với nhu cầu của thực vật.
Ngoài ra, khi khử trùng môi trường, cần chú ý không nên kéo dài thời gian
để tránh xảy ra hiện tượng caramen hoá, làm cho môi trường chuyển sang màu vàng
dẫn đến ức chế sự sinh trưởng và phát triển của tế bào [13].
- Các vitamin và axit amin
Ảnh hưởng của các vitamin đến sự phát triển của tế bào nuôi cấy in vitro ở
các loài khác nhau là khác nhau.
Hầu hết tế bào nuôi cấy đều có khả năng tổng hợp tất cả các loại vitamin cơ
bản nhưng với số lượng dưới mức yêu cầu. Để mô có thể sinh trưởng, tốt nhất phải
bổ sung thêm vào môi trường một hay nhiều loại vitamin và amino acid. Trong các
loại vitamin, B1 được xem là vitamin quan trọng nhất cho sự phát triển của thực
vật. Axit nicotinic (B3) và pyridoxin (B6) cũng có thể được bổ sung vào môi trường
nuôi cấy nhằm tăng cường sức sống cho mô [3].
- Các chất bổ sung
+ Agarose
Trong môi trường nuôi cấy đặc, người ta thường sử dụng agar để làm rắn hoá
môi trường. Hàm lượng agar sử dụng thường là 0,6 - 1% đây là loại tinh bột đặc chế
từ rong biển để tránh hiện tượng mô chìm trong môi trường hoặc bị chết vì thiếu O
2

nếu nuôi trong môi trường lỏng và tĩnh [5].
+ pH môi trường

Với mỗi loại cây trồng yêu cầu một loại môi trường khác nhau nhưng pH của
môi trường thường là 5,6 - 6,0 [14]. pH ảnh hưởng đến sự chuyển của các ion, sự hấp
thụ chất dinh dưỡng giữa các mô tế bào thực vật với môi trường. Dougall (1980) [27]
đã thông qua các tài liệu liên quan đến sự thay đổi pH in vitro và tác giả cho rằng, sự


15
thay đổi này là do hấp thụ amoniac và nitrate từ môi trường nuôi cấy. Dougall đã
chứng minh pH ban đầu của môi trường nuôi cấy có thể ảnh hưởng đến pH của môi
trường sau khi nuôi cấy do ảnh hưởng đến tốc độ hấp thụ amoni và nitrate. Khi tế bào
hấp thụ amoni, một ion H
+
được giải phóng làm cho pH môi trường giảm. Sự thay đổi
pH môi trường rắn và môi trường lỏng cũng khác nhau. Môi trường rắn và môi trường
lỏng có pH ở 5,7 thì sau khi hấp 1 tuần, pH có giá trị lần lượt là 4,6 và 4,4 Sau 6 tuần
thì giảm còn 4,4 đối với môi trường rắn và 4,1 với môi trường lỏng [51]. Do vậy, sau
khi hấp giá trị pH thay đổi nhiều hơn trong môi trường lỏng, môi trường rắn trở nên
acid hơn. Sự thay đổi pH cũng có khả năng gây ra sự xâm nhập tự do của ion H
+
vào
thành tế bào, tạo pH tối ưu cho hoạt động của enzyme nới lỏng thành tế bào [51], ion
H
+
trong môi trường sẽ thâm nhập vào thành tế bào hoạt hóa enzyme phân hủy các liên
kết polysaccharide liên kết giữa các sợi cellulose làm cho chúng lỏng lẻo và tạo điều
kiện cho thành tế bào giãn dưới tác động của áp suất thẩm thấu của không bào trung
tâm, kích thích sự sinh trưởng của tế bào.
pH môi trường quá cao hoặc quá thấp làm giảm khả năng hấp thụ chất dinh
dưỡng của tế bào từ môi trường, dẫn tới tế bào sinh trưởng chậm.
Nếu pH của môi trường thấp hơn 5 hay cao hơn 6 đều có ảnh hưởng đến

trạng thái của môi trường nuôi cấy và sự hòa tan các chất dinh dưỡng.
- Các chất điều tiết sinh trưởng
Các chất điều tiết sinh trưởng gồm chất kích thích và ức chế. Trong nhân
giống cây trồng, người ta thường sử dụng chất kích thích sinh trưởng để kích thích
sự phát sinh cơ quan.
+ Auxin
Chất auxin tự nhiên được tìm thấy nhiều ở thực vật là indol axetic acid (IAA).
IAA có tác dụng kích thích sinh trưởng kéo dài tế bào và điều khiển sự
hình thành rễ. Ngoài IAA còn có các dẫn xuất của nó là napthyl axetic acid
(NAA) và 2,4 - dichlorophenoxy acetic acid (2,4 - D). Các chất này cũng đóng
vai trò quan trọng trong sự phân chia của mô và trong quá trình hình thành rễ.
NAA có tác dụng tăng hô hấp của tế bào và mô nuôi cấy, tăng hoạt tính
enzym và ảnh hưởng mạnh đến trao đổi chất của nitơ, tăng khả năng tiếp nhận và sử
dụng đường trong môi trường. NAA là auxin nhân tạo, có hoạt tính mạnh hơn
auxin tự nhiên IAA, NAA có vai trò quan trọng đối với phân chia tế bào và tạo rễ.
NAA tác động ở mức độ phân tử trong tế bào theo ba cơ chế đó là cơ chế thứ nhất:


16
NAA gắn với phân tử enzym và kích thích enzym hoạt động. Tác dụng của auxin
là kích thích hoạt tính của ATPase, cơ chế thứ hai: auxin tác động vào gen và các
enzym phân giải acid nucleic, cơ chế thứ ba: auxin tác động thông qua sự thay đổi
tính thẩm thấu của màng. Dùng phương pháp đánh dấu phân tử có thể thấy NAA
dính kết vào màng tế bào làm cho màng hoạt động như một bơm proton và bơm ra
ngoài ion H
+
làm màng tế bào mềm và kéo dài ra, do đó tế bào lớn lên và sinh
trưởng. Trong tế bào, NAA có tác dụng lên sự tổng hợp acid nucleic [14].
Trong cây auxin được tổng hợp ở các mô non đặc biệt là lá đang phát triển và vùng
đỉnh chồi. Từ những vùng này auxin được chuyển xuống các phần phía dưới của cây.

- Cytokinin
Cytokinin là chất điều hoà sinh trưởng có tác dụng làm tăng sự phân chia tế
bào do chúng hoạt hóa mạnh mẽ sự tổng hợp acid nucleic và protein. Các cytokinin
thường gặp là kinetine, BAP.
Kinetine được Skoog phát hiện ngẫu nhiên trong chiết xuất acid nucleic.
Kinetine thực chất là một dẫn xuất của bazơ nitơ adenine. BAP là cytokinin tổng
hợp nhân tạo nhưng có hoạt tính mạnh hơn nhiều kinetine. Kinetine và BAP cùng
có tác dụng kích thích phân chia tế bào kéo dài thời gian hoạt động của tế bào phân
sinh và làm hạn chế sự già hoá của tế bào. Ngoài ra các chất này có tác dụng lên quá
trình trao đổi chất, quá trình tổng hợp DNA, tổng hợp protein và làm tăng cường
hoạt tính của một số enzym. Cơ chế tác dụng của auxin ở mức độ phân tử trong tế
bào thể hiện bằng tác dụng tương hỗ của cytokinin với các nucleoprotein làm yếu mối
liên kết của histon với DNA, tạo điều kiện cho sự tổng hợp DNA [14].
Những nghiên cứu của Miller và Skoog (1963) [40] đã cho thấy không phải
các chất kích thích sinh trưởng ngoại sinh tác dụng độc lập với hoocmon sinh trưởng
nội sinh. Phân chia tế bào, phân hoá và biệt hoá được điều khiển bằng sự tác động
tương hỗ giữa các hoocmon ngoại sinh và nội sinh. Tác động phối hợp của auxin và
cytokinin có tác dụng quyết định đến sự phát triển và phát sinh hình thái của tế bào
và mô. Những nghiên cứu của Skoog [40] cho thấy tỷ lệ auxin/cytokinin cao thì
thích hợp cho sự hình thành rễ, và thấp thì thích hợp cho quá trình phát sinh chồi.
Nếu tỷ lệ này ở mức độ cân bằng thì thuận lợi cho phát triển mô sẹo (callus).
Giai đoạn đầu của quá trình phân bào được cảm ứng bởi auxin còn giai đoạn
tiếp theo thì cần tác động tổng hợp của cả hai chất kích thích sinh trưởng. Skoog và
Miller (1957) [40], đã khẳng định vai trò của cytokinin trong quá trình phân chia tế


17
bào cụ thể là cytokinin điều khiển quá trình chuyển pha trong mitos và giữ cho quá
trình này diễn ra một cách bình thường. Cytokinin được tổng hợp bởi rễ và hạt đang
phát triển [14].

2.3. Tình hình nghiên cứu cây gừng trong nước và thế giới
2.3.1. Tình hình nghiên cứu trên thế giới
Gừng Núi đá là một loại cây mới mang tính địa phương do vậy hiện nay
chưa có nhiều nghiên cứu về chúng. Tuy nhiên, các nghiên cứu về gừng nói chung
đã được rất nhiều tác giả trong và ngoài nước nghiên cứu.
K.Nirmal Babu và cs (1991) [47] đã nghiên cứu tái sinh cây gừng (Zingiber
officinale Rose.) từ mô sẹo có nguồn gốc từ lá. Mảnh lá non của gừng được nuôi
cấy trên môi trường MS với nồng độ khác nhau của chất kích thích sinh trưởng. Sự
có mặt của 2,4 - D trong môi trường từ 9,0 - 22,6 µM kết quả thu được mô sẹo sinh
trưởng tốt. Sự hình thành cây và cơ quan xảy ra khi nồng độ của 2,4 - D giảm xuống
0,9 µM và với sự tăng thêm 44,4 µM BA vào môi trường. Tỷ lệ tái sinh cây tăng
chất điều hòa sinh trưởng loại bỏ hoàn toàn môi trường nuôi cấy trong những lần
nuôi cấy tiếp theo. Cây con kéo dài rễ khi đặt trong môi trường MS lỏng với 5,4 µM
NAA. Khả năng phát triển của những cây con này trong đất là khoảng 80%.
Faridah và cs (2011) [28], đã nghiên cứu thành công hiệu quả tái sinh in vitro
loài gừng Gió - Zingiber zerumbet từ thân rễ. Môi trường thích hợp nhân nhanh chồi
gừng Gió là môi trường MS bổ sung kết hợp BAP 3,0 mg/l và IAA 0,5 mg/l cho số
lượng chồi trung bình cao nhất (5,6 chồi) cho mỗi mẫu cấy so với các nồng độ khác.
Các chồi tốt nhất chiều dài (9,44 cm) thu được trên môi trường có chứa BAP 1,0mg/l
và IAA 2,0 mg/l. Như vậy, tác động tổng hợp của BAP và IAA cải thiện đáng kể sự
phát triển chồi. Môi trường thích hợp ra rễ là môi trường MS bổ sung kết hợp với BAP
5,0mg/l và IAA 2,0mg/l cho số lượng rễ cao nhất (17 rễ). Tuy nhiên, rễ dài nhất mỗi
mẫu cấy thu được trong môi trường MS bổ sung BAP 1,0mg/l riêng rẽ. Các chồi nở rộ
là màu xanh lá cây và trông khỏe. Cuối cùng, cây khỏe mạnh và hoàn chỉnh với rễ phát
triển tốt, cứng và được ra cây thành công với tỷ lệ sống sót là 80%.
Tamil.C.M.Sundram và cs (2012) [52] đã nghiên cứu tối ưu hóa các điều
kiện nuôi cấy cảm ứng tạo mô sẹo từ mầm chồi phục vụ cho thiết lập hệ thống nuôi
cấy dịch huyền phù tế bào của Mango Ginger (Curcuma Mangga). Các phản ứng
khác nhau thu được từ chồi mầm nuôi cấy trên môi trường MS cơ bản có bổ sung
2,4 - D, NAA, IAA riêng lẻ hoặc kết hợp với nồng độ khác nhau. Nồng độ succrose

cũng được thử nghiệm. Mô sẹo xốp sinh trưởng nhanh từ chồi mầm nuôi cấy trên


18
môi trường MS với 1mg/l 2,4 - D + 30 g/l succrose + 2 g/l gelite được chọn lọc để
bắt đầu nuôi cấy huyền phù tế bào. Với những môi trường nuôi cấy khác nhau, nuôi
cấy dịch huyền phù được thành lập từ môi trường MS lỏng bổ sung 0,3 mg/l 2,4 - D
+ 0,1mg/l NAA + 30 g/l succrose + 0,1 g/l chiết xuất của malt + 0,5 mg/l biotin +
100 mg /l glutamine + 5mg/l acid ascorbic và acid citric tương ứng. Các hợp chất
phenolic sản xuất ra được kiểm soát một cách chặt chẽ bởi sự kết hợp của ascorbic
và acid citric là chất chống oxy hóa .
2.3.2. Tình hình nghiên cứu trong nước
Đặng Ngọc Phúc và cs (2011) [11], đã nghiên cứu nhân giống in vitro cây sa
nhân tím (Amomum longiligulare T.L.Wu) thuộc họ gừng (Zingiberacae) từ đỉnh sinh
trưởng và đoạn thân mang chồi nách từ thân rễ của cây tự nhiên. Kết quả nghiên cứu cho
thấy thời gian khử trùng bằng HgCl
2
0,1% là 12 phút cho tỷ lệ mẫu sống cao nhất, đạt
91,11% đối với đỉnh sinh trưởng và 86,67% đối với đoạn thân. Mẫu được nuôi cấy trên
môi trường MS bổ sung riêng lẻ chất kích thích sinh trưởng BAP, kinetine. Sau 8 tuần
nuôi cấy, khả năng tái sinh chồi tốt nhất đạt được trên môi trường bổ sung BAP 1,0 mg/l
(1,36 chồi/đỉnh sinh trưởng, 1,40 chồi/đỉnh sinh trưởng bổ đôi, 1,04 chồi/đoạn thân).
Đoạn thân in vitro được cấy lên môi trường nhân nhanh bổ sung riêng lẻ hay kết hợp các
chất kích thích sinh trưởng BAP, kinetine và NAA. Sau 10 tuần nuôi cấy, môi trường bổ
sung BAP 1,5mg/l kết hợp NAA 0,25mg/l cho số chồi lớn nhất đạt 7,40 chồi/mẫu. Chồi
in vitro được cảm ứng rễ trên môi trường MS có bổ sung riêng rẽ NAA và IBA. Rễ được
cảm ứng tốt nhất trên môi trường MS có bổ sung 0,5mg/l NAA (18,42 rễ/chồi). Cây con
in vitro được huấn luyện thích nghi và trồng ở vườn ươm với tỷ lệ sống sót 93,14%.
Võ Châu Tuấn (2014) [17], đã trình bày phương thức nuôi cấy mô sẹo và tế bào
huyền phù của cây nghệ đen (Curcuma zedoaria Roscoe). Môi trường MS bổ sung 2%

sucrose; 1,0 mg/l 2,4 - D và 1,0 mg/l BA thích hợp cho nuôi cấy mô sẹo từ bẹ lá của cây
nghệ đen in vitro. Trong quá trình nuôi cấy, các mô sẹo thứ cấp được tạo thành từ mô sẹo
sơ cấp trên môi trường MS có bổ sung 0,5 mg/l 2,4 - D và 0,5 mg/l BA. Các mô sẹo này
có màu vàng, rắn và rời rạc. Nuôi cấy tế bào huyền phù được thiết lập với 3 g sinh khối
mô sẹo tươi nuôi trong bình tam giác thể tích 250 ml, chứa 50 ml môi trường MS có bổ
sung 3% sucrose; 1,5 mg/l 2,4 - D và 0,5 mg/l BA với tốc độ lắc 120 vòng/phút. Sinh
khối cao nhất đạt 10,44 g trọng lượng tươi (0,66 g trọng lượng khô) sau 14 ngày nuôi
cấy. Các kết quả này là cơ sở cho những nghiên cứu sâu hơn về cây nghệ đen nhằm
cung cấp nguồn nguyên liệu tế bào để sản xuất các hợp chất thứ cấp ở qui mô lớn.